Summary

Isolering og kultur neural crest Celler fra Embryonic murin Neural Tube

Published: June 02, 2012
doi:

Summary

Isolering av embryonale neural crest fra nevralrøret forenkler bruken av<em> In vitro</em> Metoder for å studere migrasjon, selvfornyelse, og multipotency av neural crest.

Abstract

Den embryonale neural crest (NC) er en multipotent stamfar befolkning som stammer ved dorsal del av nevralrøret, gjennomgår en epitelial til mesenchymale overgang (EMT) og vandrer hele embryoet, som gir opphav til ulike celletyper 1-3. NC har også en unik evne til å påvirke differensiering og modning av målorganer 4-6. Når eksplantert in vitro, NC stamfedre gjennomgå selvfornyelse, vandrer og skille ut en rekke vevstyper inkludert nerveceller og gliaceller, glatte muskelceller, brusk og bein.

NC multipotency ble først beskrevet fra explants av luftfarten nevralrøret 7-9. In vitro isolering av NC celler letter studiet av NC dynamikk, inkludert spredning, migrasjon, og multipotency. Videre arbeid i luftfarten og rotte systemer vist at eksplanterte NC cellene beholder sin NC potensial når transplantert tilbake til fosteret 10-13. Fordi disse iboende cellulære egenskapene er bevart i eksplanterte NC stamfedre, gir nevralrøret eksplantering analysen et attraktivt alternativ for å studere NC in vitro.

For å oppnå en bedre forståelse av pattedyr NC har mange metoder blitt ansatt for å isolere NC populasjoner. NC-deriverte stamfedre kan dyrkes fra post-trekkende steder i både embryo og voksne til å studere dynamikken i post-trekkende NC stamfedre 11,14-20 imidlertid isolering av NC stamfedre som de emigrere fra nevralrøret gir optimal bevaring av NC celle potensiale og trekkende egenskaper 13,21,22. Enkelte protokoller benytter fluorescens aktivert celle sortering (FACS) å isolere en NC befolkning beriket for bestemte stamfedre 11,13,14,17. Men når du starter med tidlig stadium embryoer, celle tall tilstrekkelige for analyser er vanskelig å få med FACS, kompliserer isolering av tidlig NC populations fra individuelle embryo. Her beskriver vi en tilnærming som ikke er avhengig FACS og resultater i en ca 96% ren NC befolkningen basert på en Wnt1-Cre aktivert avstamning reporter 23.

Metoden som presenteres her er tilpasset fra protokoller optimalisert for kulturen i rotte NC 11,13. Fordelene med denne protokollen i forhold til tidligere metoder er at 1) cellene ikke er dyrket på en mater lag, 2) FACS er ikke påkrevd for å oppnå en relativt ren NC befolkning, 3) premigratory NC cellene er isolert og 4) resultatene er lett kvantifisert. Videre kan denne protokollen brukes til isolering av NC fra noen mutant mus modell, tilrettelegge studiet av NC egenskaper med ulike genetiske manipulasjoner. Begrensningen av denne tilnærmingen er at NC er fjernet fra rammen av embryo, som er kjent for å påvirke overlevelse, migrasjon og differensiering av NC 2,24-28.

Protocol

1. Forbereder Plater Bruk steril teknikk til alle tider. Forbered fibronectin (FN) ved å fortynne 100 mL av humant plasma FN lager til en endelig volum på 3,3 ml i Dulbecco sin PBS (dPBS). Endelig konsentrasjon er 30 mikrogram / ml og dette kan lagres ved 4 ° C i 1 uke. Dekk bunnen av hver brønn av en steril vevskultur fire godt plate med FN-løsning og la sitte i 15 minutter. Sørg for at hele overflaten er dekket. Gjør media i løpet av denne tiden (trinn 2 og 3). Fjern Fn…

Discussion

Nøye oppmerksomhet bør rettes mot utviklingsstadiet av embryo for å sikre suksess for denne tilnærmingen. Telle somites av tidlige mus embryoer er kritisk både for scene matching embryo innenfor et kull og bestemme de riktige delene av nevralrøret for isolasjon. En variant av en eller to somites mellom embryoer er innen rimelig rekkevidde av utviklingsmessige timing, avhengig av oppløsningen av forsøket gjennomført. Et embryo mellom 9 og 9,5 DPC vil ha mellom 17 og 25 somites. Hvis fosteret har mer enn 25 somit…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å takke Marc Wozniak for video hjelp. Vi ønsker også å erkjenne Sean Morrison ved UT Southwestern for den opprinnelige protokollen for dyrkning rotte NC celler. Dette arbeidet ble støttet Vanderbilt University Medical Center Academic Program Support og med tilskudd fra NIH (HD36720 og HD036720-11S109) og AHA 11GRNT7690040 til PAL, predoctoral stipend fra AHA (0615209B) og NIH (NS065604) til NAM, og ERP var støttet av en NIH trening stipend T32HD007502.

Materials

Reagent Company Catalogue number Comments
DMEM (low glucose) Gibco/Invitrogen 11885  
Neurobasal Medium Gibco 21103  
BSA Sigma A3912-10G  
dPBS Gibco 14190-144  
IGF1 BD Biosciences 354037 Store in 50 μg/mL aliquots at -20°C.
bFGF BD Biosciences 354060 Store in 25 μg/mL aliquots at -20°C.
Fibronectin Gibco 33016-015 Stored in 1mg/mL aliquots at -20°C.
Retinoic acid Sigma R2625 Store in 35 μg/ml aliquots after reconstituting in ethanol at -20°C.
2-mercaptoethanol Sigma D-5637  
N2 supplement Gibco 17502-048  
B27 supplement Gibco 17504-044  
Steriflip 0.22 μm filters Millipore SCGP00525  
Penicillin-streptomycin Invitrogen 15140122  
0.20 μm filters Corning 431219  
Syringes (for filtration) BD Biosciences 301604  
Four well plates Thermo Fisher Scientific 176740  
Collagenase/Dispase Roche 269 638 Activity varies by batch. Store in 100 mg/mL aliquots at -20°C.
Insulin needles
(29½ gage)
Becton Dickson 309306  
Hypoxia Chamber Billups-Rothenberg    
Oxygen Analyzer Billups-Rothenberg    
Forceps #5 Fine Science Tools   For removing uterus and decidua.
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25200  

Riferimenti

  1. Le Douarin, N., Kalcheim, C. . The neural crest. , (1999).
  2. Kulesa, P. M., Gammill, L. S. Neural crest migration: patterns, phases and signals. Developmental biology. 344, 566-568 (2010).
  3. Saint-Jeannet, J. -. P. . Neural crest induction and differentiation. , (2006).
  4. Plank, J. L. Influence and timing of arrival of murine neural crest on pancreatic beta cell development and maturation. Developmental biology. 349, 321-330 (2011).
  5. Nekrep, N., Wang, J., Miyatsuka, T., German, M. S. Signals from the neural crest regulate beta-cell mass in the pancreas. Development. 135, 2151-2160 (2008).
  6. Freem, L. J. The intrinsic innervation of the lung is derived from neural crest cells as shown by optical projection tomography in Wnt1-Cre;YFP reporter mice. J. Anat. 217, 651-664 (2010).
  7. Cohen, A. M., Konigsberg, I. R. A clonal approach to the problem of neural crest determination. Developmental biology. 46, 262-280 (1975).
  8. Sieber-Blum, M., Cohen, A. M. Clonal analysis of quail neural crest cells: they are pluripotent and differentiate in vitro in the absence of noncrest cells. Developmental biology. 80, 96-106 (1980).
  9. Baroffio, A., Dupin, E., Douarin, N. M. L. e. Common precursors for neural and mesectodermal derivatives in the cephalic neural crest. Development. 112, 301-305 (1991).
  10. White, P. M. Neural crest stem cells undergo cell-intrinsic developmental changes in sensitivity to instructive differentiation signals. Neuron. 29, 57-71 (2001).
  11. Morrison, S. J., White, P. M., Zock, C., Anderson, D. J. Prospective identification, isolation by flow cytometry, and in vivo self-renewal of multipotent mammalian neural crest stem cells. Cell. 96, 737-749 (1999).
  12. Bronner-Fraser, M., Sieber-Blum, M., Cohen, A. M. Clonal analysis of the avian neural crest: migration and maturation of mixed neural crest clones injected into host chicken embryos. J. Comp. Neurol. 193, 423-434 (1980).
  13. Stemple, D. L., Anderson, D. J. Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest. Cell. 71, 973-985 (1992).
  14. Corpening, J. C. Isolation and live imaging of enteric progenitors based on Sox10-Histone2BVenus transgene expression. Genesis. 49, 599-618 (2011).
  15. Biernaskie, J. A., McKenzie, I. A., Toma, J. G., Miller, F. D. Isolation of skin-derived precursors (SKPs) and differentiation and enrichment of their Schwann cell progeny. Nat. Protoc. 1, 2803-2812 (2006).
  16. Chung, I. H. Stem cell property of postmigratory cranial neural crest cells and their utility in alveolar bone regeneration and tooth development. Stem Cells. 27, 866-877 (2009).
  17. Biernaskie, J. SKPs derive from hair follicle precursors and exhibit properties of adult dermal stem cells. Cell Stem Cell. 5, 610-623 (2009).
  18. Hagedorn, L., Suter, U., Sommer, L. P0 and PMP22 mark a multipotent neural crest-derived cell type that displays community effects in response to TGF-beta family factors. Development. , 126-3781 (1999).
  19. Heanue, T. A., Pachnis, V. Prospective identification and isolation of enteric nervous system progenitors using Sox2. Stem Cells. 29, 128-140 (2011).
  20. Morrison, S. J. Culture in reduced levels of oxygen promotes clonogenic sympathoadrenal differentiation by isolated neural crest stem cells. J. Neurosci. 20, 7370-7376 (2000).
  21. Ito, K., Morita, T., Sieber-Blum, M. In vitro clonal analysis of mouse neural crest development. Developmental biology. 157, 517-525 (1993).
  22. Etchevers, H. Primary culture of chick, mouse or human neural crest cells. Nat. Protoc. 6, 1568-1577 (2011).
  23. Mundell, N. A., Labosky, P. A. Neural crest stem cell multipotency requires Foxd3 to maintain neural potential and repress mesenchymal fates. Development. 138, 641-652 (2011).
  24. Gammill, L. S., Gonzalez, C., Gu, C., Bronner-Fraser, M. Guidance of trunk neural crest migration requires neuropilin 2/semaphorin 3F signaling. Development. 133, 99-106 (2006).
  25. Gammill, L. S., Gonzalez, C., Bronner-Fraser, M. Neuropilin 2/semaphorin 3F signaling is essential for cranial neural crest migration and trigeminal ganglion condensation. Dev. Neurobiol. 67, 47-56 (2007).
  26. Kasemeier-Kulesa, J. C., Bradley, R., Pasquale, E. B., Lefcort, F., Kulesa, P. M. Eph/ephrins and N-cadherin coordinate to control the pattern of sympathetic ganglia. Development. 133, 4839-4847 (2006).
  27. Osborne, N. J., Begbie, J., Chilton, J. K., Schmidt, H., Eickholt, B. J. Semaphorin/neuropilin signaling influences the positioning of migratory neural crest cells within the hindbrain region of the the chick. Dev. Dyn. 232, 939-949 (2005).
  28. Schwarz, Q., Maden, C. H., Vieira, J. M., Ruhrberg, C. Neuropilin 1 signaling guides neural crest cells to coordinate pathway choice with cell specification. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 6164-6169 (2009).
  29. Simon, M. C., Keith, B. The role of oxygen availability in embryonic development and stem cell function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 9, 285-296 (2008).
  30. Ivanovic, Z. Hypoxia or in situ normoxia: The stem cell paradigm. J. Cell Physiol. 219, 271-275 (2009).
check_url/it/4134?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Pfaltzgraff, E. R., Mundell, N. A., Labosky, P. A. Isolation and Culture of Neural Crest Cells from Embryonic Murine Neural Tube. J. Vis. Exp. (64), e4134, doi:10.3791/4134 (2012).

View Video