Summary

Estudar proteólise de ciclina B no nível da célula individual em populações de células inteiras

Published: September 17, 2012
doi:

Summary

Metáfase para anáfase transição é disparada através anáfase-promover complexo (APC / C) dependente de ubiquitinação e subsequente destruição da ciclina B. Aqui, nós estabelecemos um sistema que, na sequência de pulso-caça, rotulagem permite monitorar proteólise ciclina B em populações de células inteiras e facilita a detecção de interferência do checkpoint mitótico.

Abstract

Distribuição igual dos cromossomas entre duas células filhas durante a divisão celular é um pré-requisito para garantir a estabilidade genética 1. Imprecisões durante a separação de cromossomos são uma marca registrada de malignidade e associada com doença progressiva 2-4. O posto de controle conjunto do eixo (SAC) é um mecanismo de vigilância mitótico que traz de volta as células em metáfase até que cada único cromossomo estabeleceu uma ligação bipolar estável ao fuso mitótico 1. O SAC exerce a sua função através da interferência com a activação da APC / C subunidade CDC20 para bloquear a proteólise de ciclina securin e B e, assim, a separação dos cromossomas e de saída mitótico. Penhora incorreta de cromossomos impede o silenciamento de SAC sinalização e provoca a inibição continuou da APC / C CDC20 até o problema ser resolvido para evitar missegregation cromossômica, a aneuploidia e tumores malignos 1.

A maioria dos estudos que tratam da influence cromossômica de apego indevido sobre a APC / C-dependente proteólise aproveitou a interrupção eixo usando despolimerizando ou microtúbulos drogas estabilizadoras de interferir com apego cromossômica aos microtúbulos. Uma vez que a interferência com a cinética de microtúbulos pode afectar o transporte e localização de reguladores críticos, estes procedimentos de suportar o risco de induzir efeitos artificiais 5.

Para estudar como o SAC interfere com a APC / C-dependente proteólise da ciclina B durante a mitose em imperturbável populações de células, foi estabelecido um sistema de histona H2-GFP-base que permitiu o monitoramento simultâneo de alinhamento metáfase de cromossomos mitóticos e proteólise da ciclina B 6 .

Para descrever os perfis proteolíticos, geramos um quimérico ciclina B molécula repórter com uma porção C-terminal de SNAP 6 (Figura 1). Em uma reacção de auto-rotulagem, o SNAP-porção é capaz de formar ligações covalentes comalquilguanina-transportadores (substrato SNAP) 7,8 (Figura 1). Moléculas de substrato SNAP estão prontamente disponíveis e realizar um amplo espectro de diferentes fluorocromos. Quiméricos ciclina B SNAP-moléculas tornam-se rotuladas por adição do substrato de SNAP-membrana permeável ao meio de crescimento de 7 (Figura 1). Seguindo a reacção de marcação, a intensidade de ciclina B-SNAP fluorescência cai numa reacção do tipo de pulso-caça forma e intensidades de fluorescência reflectem os níveis de degradação da ciclina B 6 (Figura 1). O nosso sistema facilita o controlo da proteólise mitótico APC / C-dependente em grande número de células (ou várias populações de células) em paralelo. Desse modo, o sistema pode ser uma ferramenta valiosa para a identificação de agentes / moléculas pequenas que são capazes de interferir com a actividade proteolítica na metafase para a anafase transição. Além disso, como a síntese de ciclina B durante a mitose foi recentemente sugerida como uma mechanis importantesm na promoção de um bloco mitótica em camundongos e humanos, mantendo os níveis de ciclina expressão B estáveis ​​9,10, este sistema permitiu-nos analisar ciclina proteólise B como um elemento de um equilíbrio harmonioso 6.

Protocol

1. Semeadura de U2OS baseados em células ciclina B SNAP-Repórter (Clone 11 Células 6) em lâminas de microscopia Câmara Tripsinizar as células subconfluentes SNAP repórter que foram deixadas a crescer de forma assíncrona em fase log durante pelo menos 48 h. Trabalhando com 8 poços (câmaras de microscópio distribuição constante de células). Para propagação de células em câmaras de 8 poços a microscópio uma distribuição constante por t…

Discussion

Apresentamos aqui uma abordagem live-célula de imagem baseada em facilitar o monitoramento simultâneo de ciclina B proteólise e alinhamento de cromossomas. Esta abordagem permite o estudo de controlo mitótico em populações de células não perturbados ao nível da célula individual. As curvas de degradação de ciclina B facilitar percepções directas para a actividade do APC / C e assim, indirectamente, reflectem o estado do SAC 6.

Esta abordagem, apesar de estabelecidos …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Somos gratos a S. Taylor para fornecer o pLPCX-histona H2-GFP plasmídeo. Agradecemos R. Mertelsmann de apoio contínuo. Este trabalho foi financiado pelo Deutsche Forschungsgemeinschaft.

Materials

Name of product Company Catalogue number Comments (optional)
Reporter cell line generated in-house as described 6 clone 11 reporter cells
(U2Os-based cyclin B-SNAP expressing cells)
 
Retroviral cyclin B-SNAP expression vector generated in-house as described 6 pLNCX2-cyclin B mut5-SNAP  
Phenolred-free DMEM Gibco 21063-029 Supplementation with FCS, sodium pyruvate, penicillin/strepto-mycin required
SNAP-Cell TMR-Star New England Biolabs S9105S Stock solution 400 μM in DMSO
Special Opstics Plate, 96 well Costar 3720  
μ-Slide 8 well, ibiTreat Ibidi 80826  
Microscopy unit Olympus IX-81 inverse microscope with climate chamber  
Objective Olympus UPLSAPO 20x objective (N.A. 0.75)  
Acquisition software Olympus Scan^R Acquisition software (v.2.2.09)  
Analysis software Olympus Scan^R Analysis software (v.1.2.0.6)  

Riferimenti

  1. Musacchio, A., Salmon, E. D. The spindle-assembly checkpoint in space and time. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 8, 379-393 (2007).
  2. Nasmyth, K. Segregating sister genomes: the molecular biology of chromosome separation. Science. 297, 559-565 (2002).
  3. Cahill, D. P. Mutations of mitotic checkpoint genes in human cancers. Nature. 392, 300-303 (1998).
  4. Lengauer, C., Kinzler, K. W., Vogelstein, B. Genetic instabilities in human cancers. Nature. 396, 643-649 (1998).
  5. Fletcher, D. A., Mullins, R. D. Cell mechanics and the cytoskeleton. Nature. 463, 485-4892 (2010).
  6. Schnerch, D. Monitoring APC/C activity in the presence of chromosomal misalignment in unperturbed cell populations. Cell Cycle. 11, (2012).
  7. Keppler, A. A general method for the covalent labeling of fusion proteins with small molecules in vivo. Nat. Biotechnol. 21, 86-869 (2003).
  8. Jansen, L. E., Black, B. E., Foltz, D. R., Cleveland, D. W. Propagation of centromeric chromatin requires exit from mitosis. J. Cell. Biol. 176, 795-805 (2007).
  9. Malureanu, L. Cdc20 hypomorphic mice fail to counteract de novo synthesis of cyclin B1 in mitosis. J. Cell Biol. 191, 313-329 (2010).
  10. Mena, A. L., Lam, E. W., Chatterjee, S. Sustained spindle-assembly checkpoint response requires de novo transcription and translation of cyclin B1. PLoS One. 5, (2010).
  11. Wolthuis, R. Cdc20 and Cks direct the spindle checkpoint-independent destruction of cyclin. A. Mol. Cell. 30, 290-302 (2008).
check_url/it/4239?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Schnerch, D., Follo, M., Felthaus, J., Engelhardt, M., Wäsch, R. Studying Proteolysis of Cyclin B at the Single Cell Level in Whole Cell Populations. J. Vis. Exp. (67), e4239, doi:10.3791/4239 (2012).

View Video