Summary

Bruk av LysoTracker å oppdage programmert celledød i Embryoer og Skille Embryonic Stem Cells

Published: October 11, 2012
doi:

Summary

Vi presenterer en enkel protokoll å visualisere regioner av programmert celledød (PCD) i mus embryoer og differensierende embryonale stamceller (ES) cellekulturer ved hjelp av en svært løselig fargestoff kalt LysoTracker.

Abstract

Programmert celledød (PCD) oppstår hos voksne til å opprettholde normal vev homeostase og under embryologiske utvikling for å forme vev og organer 1,2,6,7. Under utviklingen kan giftige kjemikalier eller genetiske endringer føre til en økning i PCD eller endre PCD mønstre som resulterer i utviklingsavvik og fødselsskader 3-5. For å forstå etiologien av disse defektene kan utredningen av embryoene suppleres med di vitro analyser som bruker differensierende embryonale stamceller (ES) celler.

Apoptose er en godt studert form av PCD som involverer både indre og ytre signalering for å aktivere caspase enzymet kaskade. Karakteristiske celleforandringer inkluderer membran blebbing, kjernekraft krymper, og DNA-fragmentering. Andre former for PCD ikke involverer caspase aktivering og kan være slutten-resultat av langvarig autophagy. Uavhengig av PCD sti, døende celler må fjernes. Hos voksne, immunceller perfOrm denne funksjon, mens i embryoer, hvor immunsystemet ennå ikke har utviklet, oppstår fjerning ved en alternativ mekanisme. Denne mekanismen innebærer nabocellene (kalt "ikke-profesjonelle fagocytter") tar på en phagocytic rolle-de anerkjenner "spise meg" signal på overflaten av den døende celle og sluker det 8-10. Etter engulfment blir rusk brakt til lysosomer for degradering. Således uavhengig av PCD mekanisme, kan en økning i lysosomal aktiviteten bli korrelert med økt celledød.

Å studere PCD, en enkel analyse for å visualisere lysosomer i tykke vev og flerlags differensierende kulturer kan være nyttig. LysoTracker fargestoff er et svært løselig lite molekyl som er beholdt i sure subcellulære avdelinger som lysosomer 11-13. Fargestoffet er tatt opp ved diffusjon og gjennom sirkulasjonen. Siden penetrasjon er ikke en hindring, visualisering av PCD i tykke vev og multi-layer kulturer er mulig 12,13 </sup>. I kontrast er tunel (Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick slutten merking) analyse 14, begrenset til små prøver, histologiske seksjoner, og monolagskulturer fordi prosedyren krever inntasting / permeabilitet av en terminal transferase.

I motsetning til Aniline blått, som diffunderer og er oppløst av løsemidler, er LysoTracker Red DND-99 fixable, lyse og stabil. Farging kan visualiseres med standard fluorescerende eller konfokalmikroskopi i hel-mount eller seksjon med vandig eller løsemiddel-baserte montering media 12,13. Her beskriver vi protokoller som bruker denne fargen å se på PCD i normal og sonic hedgehog null mus embryoer. I tillegg viser vi analyse av PCD i differensiere ES cellekulturer og presentere en enkel kvantifisering metode. Oppsummert kan LysoTracker flekker være et flott supplement til andre metoder for å oppdage PCD.

Protocol

1. LysoTracker Farging av mus embryo Generere mus embryoer ved å plassere unge (5-6 uker gamle) kvinner i mannlige stud bur. Skjerm på følgende morgen for utseendet av en vaginal plugg indikerer at parring har oppstått. Hvis kvinnen er gravid, er middag på den dagen som heter 0.5 DPC (dager etter samleie). Prosedyren som presenteres her er ideelt for embryo 7-13 DPC. På den embryonale dag av interesse, avlive den kvinnelige henhold til godkjente protokoller og fjerne livmoren. Fjerne fostre fr…

Discussion

Viktige kjennemerkene apoptose inkluderer påvisning av DNA-skade med Tunel analysen sammen med påvisning av kaspase-aktivitet (påvist med mAbs eller bindingsmolekyl som ZVAD-FMK), observasjon av cellulære endringer, og presentasjonen av fosfatidylserin (PS ) på membranoverflaten (detektert av Annexin V binding). Det er noen ulemper med hver av disse analysene. For eksempel gjelder terminalen transferase brukt i tunel analysen ikke trenge utover noen få cellelagene. Også Annexin V kan markere celler som ikke gjenn…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker medlemmer av Mariani lab for å få hjelp med å redigere protokollen. Dette arbeidet ble finansiert av en CIRM Postdoktor Training Grant (JLF), en CIRM BRIDGES internship (TZTT), Robert E. og mai R. Wright Foundation (fvm), og University of Southern California (fvm).

Materials

Name of the reagent Company   Catalogue number
LysoTracker Red DND-99 Invitrogen #L-7528  
Hanks BSS Invitrogen 14025-076  
Paraformaldehyde EMD EM-PX0055-3  
Vectashield VECTOR H-1200  
DMEM Cellgro 10-013-CV  
Non-essential amino acids Cellgro 25-025-CI  
Sodium pyruvate Cellgro 25-000-CI  
FBS Hyclone SH30071.02  
Pen-Strep Invitrogen 15140-122  
b-Mercaptoethanol, 50 mM Invitrogen 21985-023  
LabTek-II Chamber slides
(8-well)
Nalge Nunc International 154534  
0.1% Gelatin Millipore ES-006-B  
Dulbecco’s PBS (D-PBS) Cellgro 21-031-CV  
     

Solution Recipes

4% Paraformaldehyde

For 100 ml:

  1. Mix 4 g paraformaldehyde, 90 ml H2O, and NaOH (a drop of 2N NaOH). The paraformaldehyde will not go into solution until you have added some NaOH to increase the pH.
  2. Stir and heat at 60 °C until all the powder is in solution (~10-20 min). Do not overheat.
  3. Add ~10 ml 10x PBS to achieve a final volume of 100 ml.
  4. Store at -20 °C in convenient (~10 ml or ~40 ml) aliquots.

WARNING: Paraformaldehyde in ‘frill’ form (compressed small pellets) is less powdery and can therefore be measured outside of a hood. However you should still wear a protective dust mask (N95 at least) during handling.

EB Culture Media

For 500 ml EB Media:

DMEM: 404.5 ml
FBS: 75.0 ml
L-Glutamine: 5.0 ml
Penicillin/Streptomycin: 5.0 ml
Non-essential amino acids: 5.0 ml
Sodium pyruvate: 5.0 ml
β-Mercaptoethanol: 500 μl

Riferimenti

  1. Baehrecke, E. H. How death shapes life during development. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 779-787 (2002).
  2. Meier, P., Finch, A., Evan, G. Apoptosis in development. Nature. 407, 796-801 (2000).
  3. Ikonomidou, C. Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome. Science. 287, 1056-1060 (2000).
  4. Dunty, W. C., Chen, S. Y., Zucker, R. M., Dehart, D. B., Sulik, K. K. Selective vulnerability of embryonic cell populations to ethanol-induced apoptosis: implications for alcohol-related birth defects and neurodevelopmental disorder. Alcohol Clin. Exp. Res. 25, 1523-1535 (2001).
  5. Price, O. T., Lau, C., Zucker, R. M. Quantitative fluorescence of 5-FU-treated fetal rat limbs using confocal laser scanning microscopy and Lysotracker. Cytometry A. 53, 9-21 (2003).
  6. Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. Programmed cell death in animal development. Cell. 88, 347-354 (1997).
  7. Fuchs, Y., Steller, H. Programmed cell death in animal development and disease. Cell. 147, 742-758 (2011).
  8. Qu, X. Autophagy gene-dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development. Cell. 128, 931-946 (2007).
  9. Grimsley, C., Ravichandran, K. S. Cues for apoptotic cell engulfment: eat-me, don’t eat-me and come-get-me signals. Trends Cell Biol. 13, 648-656 (2003).
  10. Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses. Mol. Cell. 14, 277-287 (2004).
  11. Haller, T., Dietl, P., Deetjen, P., Volkl, H. The lysosomal compartment as intracellular calcium store in MDCK cells: a possible involvement in InsP3-mediated Ca2+ release. Cell Calcium. 19, 157-165 (1996).
  12. Zucker, R. M., Hunter, S., Rogers, J. M. Confocal laser scanning microscopy of apoptosis in organogenesis-stage mouse embryos. Cytometry. 33, 348-354 (1998).
  13. Zucker, R. M., Hunter, E. S., Rogers, J. M. Apoptosis and morphology in mouse embryos by confocal laser scanning microscopy. Methods. 18, 473-480 (1999).
  14. Gavrieli, Y., Sherman, Y., Ben-Sasson, S. A. Identification of programmed cell death in situ via specific labeling of nuclear DNA fragmentation. J. Cell Biol. 119, 493-501 (1992).
  15. Foty, R. A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids. J. Vis. Exp. (51), e2720 (2011).
  16. Chiang, C. Manifestation of the limb prepattern: limb development in the absence of sonic hedgehog function. Dev. Biol. 236, 421-435 (2001).
  17. Ishibashi, M., McMahon, A. P. A sonic hedgehog-dependent signaling relay regulates growth of diencephalic and mesencephalic primordia in the early mouse embryo. Development. 129, 4807-4819 (2002).
  18. Schuldiner, M. Induced neuronal differentiation of human embryonic stem cells. Brain Res. 913, 201-205 (2001).
  19. Bain, G., Kitchens, D., Yao, M., Huettner, J. E., Gottlieb, D. I. Embryonic stem cells express neuronal properties in vitro. Dev. Biol. 168, 342-357 (1995).
  20. Dumont, A. Hydrogen peroxide-induced apoptosis is CD95-independent, requires the release of mitochondria-derived reactive oxygen species and the activation of NF-kappaB. Oncogene. 18, 747-757 (1999).
  21. Hampton, M. B., Orrenius, S. Dual regulation of caspase activity by hydrogen peroxide: implications for apoptosis. FEBS Lett. 414, 552-556 (1997).
  22. Wood, W. Mesenchymal cells engulf and clear apoptotic footplate cells in macrophageless PU.1 null mouse embryos. Development. 127, 5245-5252 (2000).
  23. Scott, R. C., Juhasz, G., Neufeld, T. P. Direct induction of autophagy by Atg1 inhibits cell growth and induces apoptotic cell death. Curr. Biol. 17, 1-11 (2007).
  24. Rodriguez-Enriquez, S., Kim, I., Currin, R. T., Lemasters, J. J. Tracker dyes to probe mitochondrial autophagy (mitophagy) in rat hepatocytes. Autophagy. 2, 39-46 (2006).
  25. Bampton, E. T., Goemans, C. G., Niranjan, D., Mizushima, N., Tolkovsky, A. M. The dynamics of autophagy visualized in live cells: from autophagosome formation to fusion with endo/lysosomes. Autophagy. 1, 23-36 (2005).
  26. Boya, P., Mellen, M. A., de la Rosa, E. J. How autophagy is related to programmed cell death during the development of the nervous system. Biochem. Soc. Trans. 36, 813-817 (2008).
  27. Galluzzi, L. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring cell death in higher eukaryotes. Cell Death Differ. 16, 1093-1107 (2009).
  28. Klionsky, D. J. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy in higher eukaryotes. Autophagy. 4, 151-175 (2008).
check_url/it/4254?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Fogel, J. L., Thein, T. Z. T., Mariani, F. V. Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (68), e4254, doi:10.3791/4254 (2012).

View Video