Summary

Undersökning av thymus Positiv och negativ selektion genom flödescytometri

Published: October 08, 2012
doi:

Summary

Vi presenterar ett flödescytometri-baserad metod för att undersöka T-cell-utveckling<em> In vivo</em> Använda genetiskt manipulerade möss på en vildtyp eller T-cell receptor transgena bakgrund.

Abstract

Ett friskt immunsystem kräver att T-celler svarar på främmande antigener samtidigt som den är tolerant mot själv-antigener. Slumpvis omlagring av T-cell receptorn (TCR) α och β loci genererar en T-cell repertoar med stor mångfald i antigenspecificitet, både för sig själv och utländska. Val av repertoaren under utveckling i tymus är kritisk för att generera säkra och användbara T-celler. Defekter i tymus val bidra till utvecklingen av autoimmuna och immunbristsjukdomar 1-4.

T-cell stamfäder in tymus som dubbla negativa (DN) tymocyter som inte uttrycker CD4 eller CD8 co-receptorer. Redovisning av αβTCR och båda co-receptorer sker vid dubbla positiva (DP) steg. Interaktion av αβTCR med själv-peptid-MHC (pMHC) presenteras av tymusceller bestämmer ödet för DP tymocyt. Hög affinitet interaktioner leder till negativ selektion och elimineringning av självreaktiva tymocyter. Låg affinitet interaktioner resulterar i positiv selektion och utveckling av CD4 eller CD8 enda positiv (SP) T-celler kan känna igen främmande antigener presenteras av själv-MHC 5.

Positiv selektion kan studeras i möss med en polyklonal (vildtyp) TCR repertoar genom att observera alstring av mogna T-celler. Emellertid, är de inte ideala för studier av negativ selektion, som involverar deletion av små antigenspecifika populationer. Många modellsystem har använts för att studera negativ selektion men varierar i sin förmåga att rekapitulera fysiologiska händelser 6. Till exempel, in vitro-stimulering av tymocyter saknar tymus miljö som är intimt inblandad i valet, medan administrering av exogent antigen kan leda till icke-specifik deletion av tymocyter 7-9. För närvarande är de bästa verktygen för att studera in vivo negativ selektering är möss som uttrycker en transgENIC TCR specifik för endogen själv-antigen. Men många klassiska TCR transgena modeller som kännetecknas av tidig expression av den transgena TCRα kedjan vid DN stadiet, vilket resulterar i för tidig negativ selektion. Vårt laboratorium har utvecklat HY CD4-modellen, där transgena HY TCRα är villkorligt uttryck i DP stadiet, vilket negativt urval ske under DP SP övergång som sker i vildtyp möss 10.

Här beskriver vi ett flödescytometri-baserat protokoll för att undersöka tymus positiv och negativ selektion i HY CD4 musmodellen. Medan negativ selektion i HY CD4 möss är mycket fysiologisk, kan dessa metoder även tillämpas på andra TCR transgena modeller. Vi kommer också att presentera övergripande strategier för att analysera positiv selektion i en polyklonal repertoar som gäller för alla genetiskt manipulerade möss.

Protocol

Se figur 1 för en övergripande ordning av den experimentella protokollet. 1. Dissektion Placera steril stålnät skärmen i 60 x 15 mm petriskål. En enhet behövs per vävnadsprov. Tillsätt 5 ml av Hanks balanserade saltlösning (HBSS) till varje skål. Håll rätter på is. Euthanize möss med CO 2. Säker musen för att dissektion yta, ventrala sidan uppåt. Sprej mus med 70% etanol för sterilisering och för att sä…

Representative Results

I fysiologiska TCR transgena modeller och WT möss, börjar positiv selektion på DP ljusa stadiet innan du flyttar in i DP tråkig steget efter antigen möter. DP tråkig tymocyter in sedan en övergångsperiod CD4 + CD8 Lo skede innan han blev CD4SP eller CD8SP tymocyter (Figur 2B). Mogna SP tymocyter kännetecknas av hög TCR expression och förlust av CD24 (figur 2C). Medan CD8 av CD4 profil kan avslöja brister i positiv selekt…

Discussion

Protokollet som presenteras här kan användas för att undersöka positiv och negativ selektion i icke-TCR transgena och TCR-transgena möss. Detta protokoll beskriver färgning av ytantigener. För ytterligare analys av molekylära mekanismer, är det ofta nödvändigt att utföra intracellulär färgning. Vi använder BD Biosciences Cytofix / Cytoperm Kit för de flesta intracellulära proteiner och BD Biosciences Foxp3 färgningskit för transkriptionsfaktorer. Vi förvärvar brukar våra prover direkt efter färgni…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Bing Zhang för hans tekniskt bistånd. Detta arbete har finansierats av den kanadensiska Institutes for Health Research (MOP-86.595). TAB är en CIHR ny utredare och AHFMR Scholar. QH stöds av en CIHR Canada Graduate Scholarship – Utbildning och AIHS Heltid STUDENTTILLVARO. SAN stöds av en drottning Elizabeth II Graduate Scholarship. AYWS stöds av en NSERC Utbildningsbidrag – Utbildning.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
HyClone Hank’s balanced salt solution Thermo Scientific SH30030.02
Metal mesh screens Cedarlane CX-0080-E-01
Petri dishes (60 x 15 mm) Fisher Scientific 877221
Syringes (3 ml) BD Biosciences 309657
Conical tubes (15 ml) Sarstedt 62.554.205
Microscope Zeiss – Primo Star 415500-00XX-000
Hemocytometer Hausser Scientific 3110
96-well plate Sarstedt 82.1582.001
Multichannel pipette Fisherbrand 21-377-829
Fetal calf serum PAA A15-701
Phosphate buffered saline Fisher Scientific SH3025802
Sodium azide IT Baker Chemical Co. V015-05
FcR blocking reagent Clone 2.4G2
Anti-mouse HY TCR eBioscience XX-9930-YY* Clone T3.70
Anti-mouse CD4 eBioscience XX-0042-YY* Clone RM4-5
Anti-mouse CD8α eBioscience XX-0081-YY* Clone 53-6.7
Anti-mouse CD24 eBioscience XX-0242-YY* Clone M1/69
Anti-mouse TCRβ eBioscience XX-5961-YY* Clone H57-597
Anti-mouse CD69 Biotinylated eBioscience 13-0691-YY* Clone H1.2F3
Anti-mouse CD5 Biotinylated eBioscience 13-0051-YY* Clone 53-7.3
Streptavidin eBioscience XX-4217-YY*
Flow cytometer BD Biosciences – FACS Canto 338962
FACS tubes BD Biosciences 352052
Flow cytometry analysis software TreeStar – Flowjo FlowJo v7/9
HyClone RPMI – 1640 medium Thermo Scientific SH30027.01

*XX varies by fluorochrome and YY varies by vial size.

Riferimenti

  1. Liston, A., Lesage, S., Wilson, J., Peltonen, L., Goodnow, C. C. Aire regulates negative selection of organ-specific T cells. Nat. Immunol. 4, 350-354 (2003).
  2. Liston, A. Gene dosage–limiting role of Aire in thymic expression, clonal deletion, and organ-specific autoimmunity. J. Exp. Med. 200, 1015-1026 (2004).
  3. Hogquist, K. A., Baldwin, T. A., Jameson, S. C. Central tolerance: learning self-control in the thymus. Nat. Rev. Immunol. 5, 772-782 (2005).
  4. Liston, A., Enders, A., Siggs, O. M. Unravelling the association of partial T-cell immunodeficiency and immune dysregulation. Nat. Rev. Immunol. 8, 545-558 (2008).
  5. Starr, T. K., Jameson, S. C., Hogquist, K. A. Positive and negative selection of T cells. Annu. Rev. Immunol. 21, 139-176 (2003).
  6. McCaughtry, T. M., Hogquist, K. A. Central tolerance: what have we learned from mice. Seminars in immunopathology. 30, 399-409 (2008).
  7. Zhan, Y. Without peripheral interference, thymic deletion is mediated in a cohort of double-positive cells without classical activation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100, 1197-1202 (2003).
  8. Brewer, J. A., Kanagawa, O., Sleckman, B. P., Muglia, L. J. Thymocyte apoptosis induced by T cell activation is mediated by glucocorticoids in vivo. J. Immunol. 169, 1837-1843 (2002).
  9. Martin, S., Bevan, M. J. Antigen-specific and nonspecific deletion of immature cortical thymocytes caused by antigen injection. European journal of immunology. 27, 2726-2736 (1997).
  10. Baldwin, T. A., Sandau, M. M., Jameson, S. C., Hogquist, K. A. The timing of TCR alpha expression critically influences T cell development and selection. J. Exp. Med. 202, 111-121 (2005).
  11. Tung, J. W. Modern flow cytometry: a practical approach. Clinics in laboratory medicine. 27, 453-468 (2007).
  12. Aliahmad, P., Kaye, J. Development of all CD4 T lineages requires nuclear factor TOX. J. Exp. Med. 205, 245-256 (2008).
  13. Kastner, P. Bcl11b represses a mature T-cell gene expression program in immature CD4(+)CD8(+) thymocytes. Eur. J. Immunol. 40, 2143-2154 (2010).
  14. Albu, D. I. BCL11B is required for positive selection and survival of double-positive thymocytes. J. Exp. Med. 204, 3003-3015 (2007).
  15. Van De Wiele, C. J. Thymocytes between the beta-selection and positive selection checkpoints are nonresponsive to IL-7 as assessed by STAT-5 phosphorylation. J. Immunol. 172, 4235-4244 (2004).
  16. Ueno, T. CCR7 signals are essential for cortex-medulla migration of developing thymocytes. J. Exp. Med. 200, 493-505 (2004).
  17. Saini, M. Regulation of Zap70 expression during thymocyte development enables temporal separation of CD4 and CD8 repertoire selection at different signaling thresholds. Science signaling. 3, ra23 (2010).
  18. Hu, Q., Sader, A., Parkman, J. C., Baldwin, T. A. Bim-mediated apoptosis is not necessary for thymic negative selection to ubiquitous self-antigens. J. Immunol. 183, 7761-7767 (2009).
  19. Kisielow, P., Bluthmann, H., Staerz, U. D., Steinmetz, M., von Boehmer, H. Tolerance in T-cell-receptor transgenic mice involves deletion of nonmature CD4+8+ thymocytes. Nature. 333, 742-746 (1988).
  20. McCaughtry, T. M., Baldwin, T. A., Wilken, M. S., Hogquist, K. A. Clonal deletion of thymocytes can occur in the cortex with no involvement of the medulla. J. Exp. Med. 205, 2575-2584 (2008).
  21. Derbinski, J., Schulte, A., Kyewski, B., Klein, L. Promiscuous gene expression in medullary thymic epithelial cells mirrors the peripheral self. Nat. Immunol. 2, 1032-1039 (2001).
  22. Anderson, M. S. Projection of an immunological self shadow within the thymus by the aire protein. Science. 298, 1395-1401 (2002).
  23. Kurts, C. Constitutive class I-restricted exogenous presentation of self antigens in vivo. J. Exp. Med. 184, 923-930 (1996).
  24. Nitta, T., Nitta, S., Lei, Y., Lipp, M., Takahama, Y. CCR7-mediated migration of developing thymocytes to the medulla is essential for negative selection to tissue-restricted antigens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 17129-17133 (2009).
  25. Bouneaud, C., Kourilsky, P., Bousso, P. Impact of negative selection on the T cell repertoire reactive to a self-peptide: a large fraction of T cell clones escapes clonal deletion. Immunity. 13, 829-840 (2000).
  26. Gallegos, A. M., Bevan, M. J. Central tolerance to tissue-specific antigens mediated by direct and indirect antigen presentation. J. Exp. Med. 200, 1039-1049 (2004).
  27. Moon, J. J. Naive CD4(+) T cell frequency varies for different epitopes and predicts repertoire diversity and response magnitude. Immunity. 27, 203-213 (2007).
  28. Bouillet, P. BH3-only Bcl-2 family member Bim is required for apoptosis of autoreactive thymocytes. Nature. 415, 922-926 (2002).
  29. Suen, A. Y., Baldwin, T. A. Proapoptotic protein Bim is differentially required during thymic clonal deletion to ubiquitous versus tissue-restricted antigens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2012).
  30. Calnan, B. J., Szychowski, S., Chan, F. K., Cado, D., Winoto, A. A role for the orphan steroid receptor Nur77 in apoptosis accompanying antigen-induced negative selection. Immunity. 3, 273-282 (1995).
  31. Zhou, T. Inhibition of Nur77/Nurr1 leads to inefficient clonal deletion of self-reactive T cells. J. Exp. Med. 183, 1879-1892 (1996).
  32. Baldwin, T. A., Hogquist, K. A. Transcriptional analysis of clonal deletion in vivo. J. Immunol. 179, 837-844 (2007).
check_url/it/4269?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Hu, Q., Nicol, S. A., Suen, A. Y., Baldwin, T. A. Examination of Thymic Positive and Negative Selection by Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (68), e4269, doi:10.3791/4269 (2012).

View Video