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Articolo metodologico

Enumerazione delle popolazioni dei leucociti del sangue periferico per le principali studi clinici multicentrici utilizzando un intero saggio Fenotipizzazione Sangue

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DOI:

10.3791/4302

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16 settembre 2012

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In questo articolo

Sommario

In questo rapporto, dimostriamo la procedura di colorazione e l'analisi di un test di fenotipizzazione effettuato su sangue intero fresco per enumerare le principali popolazioni innata e adattiva dei leucociti. Sottolineiamo considerazioni per l'esecuzione di queste procedure nel contesto di uno studio clinico multicentrico.

Abstract

Crioconservazione dei leucociti del sangue periferico è ampiamente usato per conservare le cellule per la valutazione della risposta immunitaria negli studi clinici e offre molti vantaggi per la facilità e la standardizzazione delle valutazioni immunologiche, ma gli effetti negativi di questo processo sono stati osservati in alcuni sottogruppi di cellule, come i granulociti, cellule B , e cellule dendritiche 1-3. Saggiare leucociti freschi fornisce un quadro più preciso della stato in vivo delle cellule, ma è spesso difficile da eseguire nel contesto di ampi studi clinici. Saggi su cellule fresche sono dipendenti da impegni di volontariato e tempi e, se in termini di tempo, la loro applicazione può essere poco pratico a causa delle ore di lavoro richieste del personale di laboratorio. Inoltre, quando le sperimentazioni sono condotte a molteplici centri, laboratori con le risorse e la formazione necessarie per eseguire i saggi non può essere situato in prossimità sufficiente a siti clinici. Per risolvere questi problemi, abbiamo sviluppatopato un 11-colore del pannello colorazione anticorpo che può essere utilizzato con tubi Trucount (Becton Dickinson, San Jose, CA) e al fenotipo enumerare le popolazioni principali leucociti nel sangue periferico, producendo più robusto tipo cellulare informazioni specifiche di saggi come un emocromocitometrico completo (CBC), o con saggi disponibili in commercio pannelli progettati per tubi Trucount che macchiano solo per alcuni tipi di cellule. La procedura di colorazione è semplice, richiede solo 100 ml di sangue intero fresco, e dura circa 45 minuti, rendendo così possibile la standard di sangue laboratori di trasformazione da eseguire. Si è adattato dal tubo BD scheda tecnica Trucount ( versione 8/2010 ). Il cocktail di anticorpi colorazione può essere preparata in anticipo in massa a un laboratorio saggio centrale e spediti a laboratori di lavorazione del sito. Tubi colorati possono essere fissatie congelati per la spedizione al laboratorio analisi centrale per l'analisi di citometria a flusso multicolore. I dati generati da questo pannello colorazione può essere utilizzato per monitorare variazioni di concentrazione dei leucociti nel tempo in relazione all'intervento e potrebbe facilmente essere ulteriormente sviluppato per valutare gli stati di attivazione di specifici tipi cellulari di interesse. In questo rapporto, dimostriamo la procedura utilizzata dal sangue di elaborazione tecnici di laboratorio per eseguire la colorazione di sangue intero fresco e la procedura per analizzare questi campioni macchiati in un laboratorio analisi centrale di supporto di uno studio clinico multicentrico. I dettagli del video la procedura in quanto viene eseguito nel contesto di un progetto di sperimentazione clinica del sangue nel HIV Vaccine Trials Network (HVTN).

Protocollo

Nota: per proteggere i fluoroforo anticorpi coniugati dalla luce, eseguire tutte le fasi di un bio-Armadio di sicurezza con la luce spenta.

1. Antibody colorazione Preparazione del pannello

  1. Il pannello colorazione anticorpo può essere trovato in Tabella 1. Concentrazione di anticorpi dovrebbe essere definita mediante titolazione con sangue intero e utilizzando la stessa attrezzatura citometria di flusso e le procedure che saranno utilizzati per acquisire i campioni fenotipizzazione macchiati.
  2. Una volta che i titoli di colorazione adeguati sono determinati, unire tutti gli anticorpi in una mis....

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Discussione

In questo rapporto, presentiamo una perlina metodo basato per l'enumerazione di popolazioni leucocitarie in sangue fresco intero mediante citometria di flusso e coprire i parametri necessari per il suo utilizzo in uno studio clinico multicentrico, con l'analisi del campione centralizzata. Questo metodo si basa su e ottimizza il protocollo BD Trucount e consente il suo utilizzo affidabile in un ambiente clinico multicentrico. Il saggio colorazione è semplice e richiede circa 45 minuti per eseguire, rendendo così .......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Ringraziamo Jessica Jones, Erica Clark, Costanza Ducar, Donna Smith, Roy Lewis, Lily Apedaile, Joanne Wiesner, Devin Adams, Corey McBain e Stephen Voght per la loro assistenza nello sviluppo di questo manoscritto metodo, e video.

Questo lavoro è stato sostenuto dalla Fondazione Bill e Melinda Gates Foundation CAVD concessione 38645 (MJM) e National Institutes of concede Salute UM1 AI068618 e U01 AI069481 (MJM). EA-N. è sostenuto da NIH Grant T32 AI007140. Ringraziamo il James B. Charitable Trust Pendleton per la loro donazione generoso equipaggiamento.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Reagente Nome Azienda Numero di catalogo
Trucount assoluti Tubi di conteggio BD Biosciences 340334
FACS 10X Soluzione di Lisi BD Biosciences 349202
Categoria B & Sistema spedizione Esente, isolato Saf-T-Pak STP-320
AmCyan CD45 anticorpo monoclonale BD Biosciences 339192
CD3 FITC anticorpo monoclonale BD Biosciences 349201
CD8 PerCP-Cy 5,5 anticorpo monoclonale BD Biosciences 341051
CD4 Alexa Fluor 700 anticorpi monoclonalidy BD Biosciences 557922
HLA-DR ECD anticorpo monoclonale Beckman Coulter IM3636
V450 CD14 anticorpo monoclonale BD Biosciences 560349
CD19 PE anticorpo monoclonale BD Biosciences 555413
CD16 APC-H7 anticorpo monoclonale BD Biosciences 560195
CD56-PE Cy7 anticorpo monoclonale BD Biosciences 335791
CD11c APC anticorpo monoclonale BD Biosciences 559877
CD123 PE-Cy5 anticorpo monoclonale BD Biosciences 551065

Riferimenti

  1. Taylor, M. J., London, N. J., Thirdborough, S. M., Lake, S. P., James, R. F. The cryobiology of rat and human dendritic cells: preservation and destruction of membrane integrity by freezing. Cryobiology. 27, 269-278 (1990).
  2. Reimann, K. A., Chernoff, M., Wilkening, C. L., Nickerson, C. E., Landay, A. L.

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Ristampe e permessi

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