Summary

Murine Model of Wound Healing

Published: May 28, 2013
doi:

Summary

En murin modell av kutan sårheling som kan brukes til å vurdere terapeutiske forbindelser i fysiologiske og patofysiologiske innstillinger.

Abstract

Sårtilheling og reparasjon er de mest komplekse biologiske prosesser som skjer i menneskers liv. Etter skade, flere biologiske mekanismer aktiveres. Svekket sårheling, som oppstår hos diabetespasienter for eksempel, kan føre til alvorlige ugunstige utfall for eksempel amputasjon. Det er derfor en økende drivkraft til å utvikle nye legemidler som fremmer sår reparasjon. Testingen av disse har vært begrenset til store dyremodeller slik som svin, som ofte er upraktisk. Mus representerer den ideelle preklinisk modell, som de er økonomiske og mottagelig for genetisk manipulasjon, som åpner for mekanistisk etterforskning. Men sårheling i en mus er fundamentalt forskjellig fra mennesker som det oppstår hovedsakelig via sammentrekning. Vår murine modell overvinner dette ved å innlemme en splint rundt såret. Ved splinting såret, er reparasjonsprosessen da avhengig av epithelialization, celleproliferasjonstest og angiogenese, som tett speilebiologiske prosesser av menneskelig sårtilheling. Mens krever konsistens og pleie, betyr dette murine modell ikke medføre kompliserte kirurgiske teknikker, og gjør det mulig for den robuste testing av lovende midler som kan, for eksempel, for å fremme angiogenese eller hemme inflammasjon. Videre virker hver mus som sin egen kontroll som to sårene er forberedt, det mulig å anvende både testforbindelsen og kjøretøyet kontroll på samme dyr. I konklusjonen, viser vi en praktisk, lett å lære, og robust modell av sårtilheling, som kan sammenlignes med det av mennesker.

Introduction

Svekket sårheling er ansvarlig for betydelig sykelighet og dødelighet over hele verden, og dette gjelder særlig for lider av diabetes mellitus 1,2. Hos mennesker er sårheling et kontinuum av prosesser, hvor det er betydelig overlapping 3. Umiddelbart følgende såret, inflammatoriske prosesser er igangsatt. Betennelsesceller slipper faktorer som oppfordrer prosesser av celleproliferasjon, migrasjon og angiogenese. Etter re-epithelialization og nytt vev formasjon er det en fase av ombygging som innebærer både apoptose og re-organisering av matrix proteiner som kollagen.

Kompleksiteten i sårtilheling kan for øyeblikket ikke kopiert in vitro og dette nødvendiggjør bruk av dyremodeller. Hittil har sårhelende studier blitt begrenset til store dyremodeller, slik som svin, for å sikre at helbredelsesprosessene er ekvivalente og kan sammenlignes med mennesker. Men ved å bruke store animals for slike studier kan være vanskelig å huset og er ikke alltid praktisk 4.. Laboratoriet mus representerer en økonomisk dyremodell som lett kan genetisk manipulert for mekanistisk etterforskning 5-7. Men murine sår leges ulikt på menneskekroppen, hovedsakelig på grunn av prosessen med sammentrekning åtte. Dette er delvis på grunn av en omfattende underhudsfett tverrstripet muskel laget kalles panniculus carnosus som er i stor grad fraværende hos mennesker. Hos mus, gjør denne muskelen laget huden til å bevege seg uavhengig av de dypere musklene og er ansvarlig for den raske nedgangen i huden følgende såret.

For å overvinne denne begrensningen ved murin sårheling være tilpasset til å replikere human sårheling ved bruk av en skinne (fig. 1) 8,9. I denne videoen demonstrerer vi splinted murine såret modell som eliminerer såret sammentrekning og tettere tilnærmet de menneskelige prosesser av re-epithelializasjon og nytt vev formasjon. I denne modellen to av full tykkelse excisions som inkluderer panniculus carnosus er opprettet på fotens rygg, en på hver side av midtlinjen av mus. En silikon skinne er plassert rundt såret med hjelp av lim og splint deretter sikret med avbrutte suturer. Hver mus fungerer som sin egen kontroll, med en såret som behandles, og den andre kjøretøy-kontroll, og dermed redusere dyrenummer. Etter aktuelle programmer, er en gjennomsiktig okklusjonstape brukt. Bandasjen kan fjernes når det er nødvendig for videre topiske applikasjoner og / eller målingen av sårområdet 10,11. Ved ferdigstillelse av eksperimenter, lukking av sår, morfologisk arkitektur og grad av neovascularization kan vurderes ved immunhistokjemi. Denne økonomiske og enkle å utføre modellen kan også benyttes til å vurdere sårheling i sammenheng med diabetes mellitus eller andre pathophysiologies.

Protocol

En. Utarbeidelse av splinter og okklusjon Skissere 10 mm sirkler på 0,5 mm tykk silikon plater og bruke saks eller en biopsipunch å lage silikon disker. Senter et 5 mm biopsipunch i midten av den 10 mm sirkel og trykk fast for å lage et hull for å danne en "smultring"-lignende plate som vil bli brukt som en splint. Skissere 10 mm sirkler på en gjennomsiktig okklusiv bandasje som Opsite og bruke saks for å lage sirkulære bandasjer. 2. Forsø…

Representative Results

En lukking av sår kurve bestemmes ved å beregne gjennomsnittlig diameter på såret og uttrykke resultatene i prosent, dvs. 100 – (Dag 0 diameter / Dag X diameter). I dette eksperiment ble en terapeutisk forbindelse (eller vehikkel-kontroll) ble daglig påført såret. Den terapeutiske forbindelsen sterkt akselerert sårlukking (figur 3). Det er viktig å merke seg at de splinter må opprettholdes for varigheten av forsøket, som fjerning av splinter vil føre til rask sår kontraksjon <stron…

Discussion

Dette er en eksperimentell murin modell av kutan sårheling. Et vesentlig trekk ved denne modellen er bruken av silikon splinter for å hindre sår sammentrekning, slik at re-epithelialization og ny vevsdannelse kan oppstå, slik at det ligner på den prosess som skjer hos mennesker. Denne modellen er allsidig og kan brukes til å vurdere sårtilheling i både fysiologiske og patofysiologiske (f.eks diabetes mellitus) innstillingene. Modellen kan også brukes til å vurdere potensiell sårheling eller angiogene…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke finansiering støtte fra National Health and Medical Research Council (NHMRC) i Australia (Prosjekt Grant ID: 632512). Louise Dunn ble støttet av en NHMRC Early Career Fellowship og Christina Bursill av en National Heart Foundation Career Development Fellowship.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Press-to-seal silicone sheeting 0.5 mm thick Invitrogen P18178 Cut into “donuts” with external diameter of 1cm external, 0.5 cm internal diameter
Biopsy punch 5 mm Steifel BC-B1-0500 To outline wound area to be excised
Vannas scissors 8.5 cm curved World Precision Instruments 501232 For wound incision and excision
Dumonte #7b forceps, 11 cm World Precision Instruments 501302 To grip skin when creating incision and excising skin
Graefe forceps, serrated 10cm World Precision Instruments 14142 To help attach silicone splint to skin
Needle holder, smooth jaws, curved, 12.5 cm World Precision Instruments 14132
Malis forceps, smooth, straight, 12 cm Codman and Shurtleff, Inc (J&J) 80-1500 To suture the silicon rings to the skin
Ruler, 0.5 mm gradation n/a
Calipers 0.25 mm gradation Duckworth and Kent 9-653 To measure wound area
Opsite FlexiFix transparent adhesive film. 10 cm x 1 m Smith & Nephew 66030570
Rimadyl (Carprofen) Pfizer 462986

References

  1. Sen, C. K., et al. Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair. 17, 763-771 (2009).
  2. Sen, C. K. Wound healing essentials: let there be oxygen. Wound Repair Regen. 17, 1-18 (2009).
  3. Gurtner, G. C., Werner, S., Barrandon, Y. Wound repair and regeneration. Nature. 453, 314-321 (2008).
  4. Lindblad, W. J. Considerations for selecting the correct animal model for dermal wound-healing studies. J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 19, 1087-1096 (2008).
  5. Grose, R., Werner, S. Wound-healing studies in transgenic and knockout mice. Mol. Biotechnol. 28, 147-166 (2004).
  6. Reid, R. R., Said, H. K., Mogford, J. E., Mustoe, T. A. The future of wound healing: pursuing surgical models in transgenic and knockout mice. J. Am. Coll. Surg. 199, 578-585 (2004).
  7. Fang, R. C., Mustoe, T. A. Animal models of wound healing: utility in transgenic mice. J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 19, 989-1005 (2008).
  8. Wong, V. W., Sorkin, M., Glotzbach, J. P., Longaker, M. T., Gurtner, G. C. Surgical approaches to create murine models of human wound healing. J. Biomed. Biotechnol. 2011, 969618 (2011).
  9. Galiano, R. D., Michaels, J. t., Dobryansky, M., Levine, J. P., Gurtner, G. C. Quantitative and reproducible murine model of excisional wound healing. Wound Repair. 12, 485-492 (2004).
  10. Galiano, R. D., et al. Topical vascular endothelial growth factor accelerates diabetic wound healing through increased angiogenesis and by mobilizing and recruiting bone marrow-derived cells. The American Journal of Pathology. 164, 1935-1947 (2004).
  11. Thangarajah, H., et al. The molecular basis for impaired hypoxia-induced VEGF expression in diabetic tissues. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 13505-13510 (2009).
  12. Raza, A., Bayles, C., Biebel, D. Investigation of Bacterial Growth and Moisture Handling Properties of Transparent Dressings: 3M Tegaderm Transparent Dressing, 3M Tegaderm HP Transparent Dressing, and Opsite IV3000 Transparent Dressing. Smith and Nephew Report. , (1998).
  13. Chung, T. Y., Peplow, P. V., Baxter, G. D. Testing photobiomodulatory effects of laser irradiation on wound healing: development of an improved model for dressing wounds in mice. Photomed. Laser Surg. 28, 589-596 (2010).
check_url/50265?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dunn, L., Prosser, H. C. G., Tan, J. T. M., Vanags, L. Z., Ng, M. K. C., Bursill, C. A. Murine Model of Wound Healing. J. Vis. Exp. (75), e50265, doi:10.3791/50265 (2013).

View Video