Summary

Kvantitativ Multispectral Analyse Etter Fluorescent Tissue Transplant for visualisering av Cell Origins, Typer, og interaksjoner

Published: September 22, 2013
doi:

Summary

Komplekse vev massene, av organer til tumorer, er sammensatt av forskjellige cellulære elementer. Vi belyst bidrag av cellulære fenotyper i en vev utnytte multi-merket fluorescerende transgene mus i kombinasjon med multiparameter immunofluorescent flekker etterfulgt av spektral unmixing å dechiffrere celle opprinnelse samt celleegenskaper basert på protein uttrykk.

Abstract

Med ønske om å forstå bidragene fra flere cellulære elementer til å utvikle et sammensatt vev, slik som de tallrike celletyper som deltar i regenererende vev, tumordannelse, eller vaskulogenese, har vi utviklet en flerfarget celletransplantasjonsmodell for tumorutvikling som cellepopulasjoner stammer fra forskjellige fluorescently fargede reporter gen mus og er transplantert, innpodet eller injiseres i og rundt et utviklings svulst. Disse fargede cellene blir deretter rekruttert og inkorporert inn i svulsten stroma. For å kvantitativt vurdere benmarg avledet stromale tumorceller, transplantert vi GFP uttrykker transgene hele benmarg inn lethally bestrålt RFP uttrykke mus som er godkjent av IACUC. 0ovarian svulster som ble orthotopically injisert i de transplanterte musene ble skåret i 6-8 uker etter engraftment og analysert for benmargs markør utstedt (GFP), så vel som antistoff-markører for å påvise tumor assosiertstroma bruker multispektrale bildeteknikker. Vi deretter tilpasset en metode vi kaller MIMicc-Multispectral Avhør av multiplekskanaler cellulære komposisjoner, ved hjelp av multispektrale unmixing av fluoroprobes til kvantitativt vurdere hvilke merket celle kom fra hvilke start populasjoner (basert på originale reporter gen etiketter), og som vår evne til å unmix 4, 5 , 6 eller flere spektra per lysbilde øker, har vi lagt ekstra immunhistokjemi forbundet med celle linjene eller differensiering for å øke presisjonen. Utnytte programvare for å oppdage samlokalisert multipleksede-fluorescerende signaler, svulst stromal populasjoner kan spores, oppregnet og preget basert på markør farging. 1

Introduction

Forstå vev utvikling og reparasjon er viktig å belyse deltar cellulære komponenter i sårheling, 2,3 regenerativ medisin, utviklingsbiologi og tumorbiologi. Under omstendighetene reparasjon, mange celletyper infiltrere omkringliggende mikromiljøet til hjelp i vascularization, ECM deponering, spredning og vev restrukturering. Cellulære faktorer og fenotyper kan identifiseres basert på multiparameter, multipleksede markører som kan identifisere lokalisering, differensiering status og samhandling mellom cellulære komponenter innenfor undersøkt mikromiljøet. Heri beskriver vi tumor utvikling som en prototypisk eksempel på dette flerfarget-flercellet transplantasjon modellen etterfulgt av multispektrale bildebehandling og spektral unmixing metodikk.

Tumorprogresjon er en flertrinns prosess som er preget av flere oppkjøpte funksjoner som omfatter økt spredning, enntiapoptotic, invasive og angiogenetiske egenskaper. 4 Tumor utvikling er tilrettelagt av ikke-neoplastiske celler som er rekruttert inn i det omkringliggende miljø for å gi vekstfaktorer, strukturelle matriser, vaskulære nettverk og immunmodulering. 1,5,6 Denne mikrohabitat består av celler som stammer fra lokale, nabo vev som adipose, og blodårer og fjerne kilder som for eksempel benmarg avledet celler en. Graden av ikke-neoplastisk celle inkorporering avhenger av etterspørselen fra tumoren, noe som ofte er den samme som fasen / karakteren av svulsten. For å forstå rollen av svulsten støttende mikromiljøet, må man forstå opprinnelsen og differensiering potensial av de ikke-neoplastiske cellepopulasjoner.

Denne protokoll er blitt utviklet for å hjelpe til med forståelsen av tumor progresjon gjennom visualisering av både benmarg avledet cellulære komponenter, og det lokale vevet derived celler. Utnytte fluorescerende reporter gen-uttrykke transgene mus, transplantert vi GFP (green-fluorescerende protein) benmarg til en lethally bestrålt RFP (red-fluorescerende protein) mus. Etter vellykket benmarg engraftment, er en syngene tumor cellelinje injisert orthotopically og lov til å innpode i 4-8 uker. Den resulterende tumor er fjernet fra musen og behandlet for immunofluorescent (IF) farging for å visualisere de stromale komponenter. Multipleksing IF markører er en vanlig brukt teknikk som innebærer betydelig optimalisering 7-9, men ved hjelp av en multispektrale avbildning / unmixing plattformen øker potensialet for fluoriserende fargestoff kombinasjoner som besitter spektral overlapping. Heri vi presentere en teknikk vi kaller MIMicc-multispektrale avhør av multiplekskanaler cellulære komposisjoner å farge og analysere opptil åtte markører innenfor en svulst seksjon på et enkelt lysbilde for å analysere de cellulære opprinnelse, cellulær differensiering stAtus og celle-celle interaksjoner av komponenter innenfor tumormikromiljøet. Dette forenklet eksempel har potensial til å bli utvidet på for å analysere fem, seks eller flere markører utnytte antistoffer eller intracellulær promoter-drevet fluorescerende uttrykk. Tabell 1 lister potensielle fluorescerende antistoffarging kombinert med egnede arter tatt i betraktning.

Protocol

Syngene Murine benmargstransplantasjon (BMT) som er godkjent av institusjonelle IACUC protokoller (Merk: Suksess for denne protokollen krever utnyttelse av eventuelle merket celletype (r) som mål for multispektrale analyse, og å legge til rette for nedstrøms analyse, kan man utnytte noen genetiske eller stabil cellemerking. Vi foreslår at en hvilken som helst celle, vev eller organ-å-være kan påføres på et transplantat modell og at transplantatet kan inneholde så mange unike merkede populasjon…

Representative Results

Ved hjelp av en multispektrale avbildningsteknikk å analysere svulster innpodet i vår transgen BMT mus modell, er vi i stand til å skjelne stromal tumor komponenter som er av benmargen opprinnelse. Den innledende BMT ble bekreftet tre uker etter transplantasjonen ved strømningscytometri (figur 1). Orthotopically injisert umerkede ovarietumorer følgende BMT engraftment bekreftelser ble skåret ut og formalinfiksert seks uker etter innledende svulst injeksjon. Parafin innebygd tumor delene ble seksjo…

Discussion

Heri beskriver vi anvendelse av multispektrale avbildning vi beskrive som MIMicc-multispektrale utspørring av Multiplexed cellulære sammensetninger, for å analysere de benmarg avledet stromale komponenter i tumor mikromiljøet, men denne metodikk og konsept kan benyttes til å tolke andre cellulære elementer som utgjør et komplekst vev som de sett under sårtilheling reaksjoner eller under en regenerativ vev. I disse forsøk benytter vi transgene mus for å fluorescensmerket skille de benmargceller avledet fra vert…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er takknemlige til diskusjoner, veiledning og støtte fra legene. Michael Andreeff MD, PhD., Og Jared Burks PhD. fra MD Anderson flowcytometri og Cellular Imaging Core Facility. Dette arbeidet ble støttet delvis med tilskudd fra National Cancer Institute (RC1-CA146381, CA-083 639, R01NS06994, CA116199 og CA109451 for FCM. ELS er også støttet av hæren Department of Defense (BC083397).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
.2 μm filter Fisher 09-740-35A
10 ml lure lock BD 309604
25 G needle Cardinal BF305122
40nm filter BD 352340
50 ml conical tube Fisher 1495949A
Alexafluor 488-ms1 invitrogen A21121
Alexafluor 594-Rb invitrogen A21207
Alexafluor 647-ch Invitrogen A21449
BSA Sigma A7906-500G
Cover slips Corning 2940-243
CRI-Nuance Caliper Life Sciences
Dapi Invitrogen D1306
DMEM CellGro 10-017-CV
Ethanol Dharmacon 4004-DV
FBS invitrogen 16000-044
GFP-ms1 Abcam ab38689
Insulin needle BD 329424
Maleic acid Acros 100-16-7
Moisture chamber box Evergreen 240-9020-Z10
Mounting media dako S3023
Nail hardener Sally Hansen 2103
Pap pen Abcam Ab2601
Pen/Strep L Glut invitrogen 10378016
Steril PBS invitrogen 14040-182
Trypsin invitrogen 252000-56
Blocking Buffer
maleic acid 14.51 g
NaCl 10.95 g
NaOH pellets (to 7.5pH) 9+g
Distilled water 250 ml
*add 0.2% Tween-20 to 1x solution for blocking buffer with 2%BSA/2%FBS. Stir and filter.
Antigen retrieval buffers:
Tris-EDTA Buffer
(10 mM Tris Base, 1 mM EDTA Solution, 0.05% Tween 20, pH 9.0)
Tris Base 1.21 g
EDTA 0.37 g
Distilled water 1000 ml (100 ml to make 10x, 50 ml to make 20x)
Tween 20 0.5 ml
*Store at RT for 3 months or at 4 ° C for longer
Sodium Citrate Buffer
(10 mM Sodium Citrate, 0.05% Tween 20, pH 6.0)
Tri-sodium citrate (dihydrate) 2.94 g
Distilled water 1000 ml
HCl (adjust pH to 6.0) 1N
Tween 20 0.5 ml

Riferimenti

  1. Kidd, S., et al. Origins of the tumor microenvironment: quantitative assessment of adipose-derived and bone marrow-derived stroma. PLoS ONE. 7, e30563 (2012).
  2. Quintavalla, J., et al. Fluorescently labeled mesenchymal stem cells (MSCs) maintain multilineage potential and can be detected following implantation into articular cartilage defects. Biomaterials. 23, 109-119 (2002).
  3. Sasaki, M. Mesenchymal stem cells are recruited into wounded skin and contribute to wound repair by transdifferentiation into multiple skin cell type. Journal of immunology. 180, 2581-2587 (2008).
  4. Spaeth, E. L. Mesenchymal stem cell transition to tumor-associated fibroblasts contributes to fibrovascular network expansion and tumor progression. PLoS ONE. 4, e4992 (2009).
  5. Wels, J., Kaplan, R. N., Rafii, S., Lyden, D. Migratory neighbors and distant invaders: Tumor-associated niche cells. Genes and Development. 22, 559-574 (2008).
  6. Weis, S. M., Cheresh, D. A. Tumor angiogenesis: molecular pathways and therapeutic targets. Nat. Med. 17, 1359-1370 (2011).
  7. Bataille, F. Multiparameter immunofluorescence on paraffin-embedded tissue sections. Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 14, 225-228 (1097).
  8. van Vlierberghe, R. L., et al. Four-color staining combining fluorescence and brightfield microscopy for simultaneous immune cell phenotyping and localization in tumor tissue sections. Microscopy research and technique. 67, 15-21 (2005).
  9. Robertson, D., Savage, K., Reis-Filho, J. S., Isacke, C. M. Multiple immunofluorescence labelling of formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissue. BMC cell biology. 9, 13 (2008).
  10. Qiu, P., et al. Extracting a cellular hierarchy from high-dimensional cytometry data with SPADE. Nat Biotechnol. 29, 886-891 (2011).
  11. Belizario, J. E., Akamini, P., Wolf, P., Strauss, B., Xavier-Neto, J. New routes for transgenesis of the mouse. Journal of applied. 53, 295-315 (2012).
check_url/it/50385?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Spaeth, E. L., Booth, C. M., Marini, F. C. Quantitative Multispectral Analysis Following Fluorescent Tissue Transplant for Visualization of Cell Origins, Types, and Interactions. J. Vis. Exp. (79), e50385, doi:10.3791/50385 (2013).

View Video