Summary

ETT<em> Caenorhabditis elegans</em> Modellsystem för Amylopathy Study

Published: May 17, 2013
doi:

Summary

Vi beskriver metoder för att studera aspekter av amylopathies i masken<em> C. elegans</em>. Vi visar hur man konstruerar maskar uttrycker humant Ap<sub> 42</sub> I nervceller och hur man testar deras funktion i beteendemässiga analyser. Vi visar vidare hur man erhålla primära neuronala kulturer som kan användas för farmakologisk testning.

Abstract

Amylopathy är en term som beskriver onormal syntes och ackumulation av amyloid beta (beta) i vävnader med tiden. Ap är ett kännetecken för Alzheimers sjukdom (AD) och finns i Lewy body demens, inklusionskroppsmyosit och cerebral amyloid angiopati 1-4. Amylopathies utvecklas gradvis med tiden. Av denna anledning enkla organismer med korta livslängder kan bidra till att belysa molekylära aspekter av dessa villkor. Här beskriver vi experimentella protokoll för att studera Ap-medierad neurodegeneration använder Caenorhabditis elegans. Därför konstruerar vi transgena maskarna genom att injicera DNA som kodar för humant Ap 42 in i syncytiala könskörtlarna av vuxna hermafroditer. Transformantlinjer stabiliseras genom en mutagenes-inducerad integration. Har åldern synkroniseras genom att samla och sådd sina ägg Nematoder. Funktionen av nervceller som uttrycker Ap 42 testas i opportuna beteendemässiga analyser (kemotaxianalyss). Primära neuronala kulturer erhållna från embryon utgör komplement beteendemässiga data och för att testa de nervskyddande effekterna av anti-apoptotiska föreningar.

Introduction

Amyloid beta (A-beta) är en peptid med 36-43 aminosyror som bildas efter sekventiell klyvning av amyloid prekursorprotein (APP) genom β och sekretaser γ 1. Den γ secretase bearbetar C-terminala änden av Ap-peptid och ansvarar för dess olika längd 5. De vanligaste formerna av Ap är AP 40 och AP 42, den senare vanligen förknippas med patologiska tillstånd såsom AD 5. Vid höga koncentrationer Ap bildar β-ark som samlas för att skapa amyloidfibriller 6. Fibriller insättningar är den viktigaste komponenten i senila plack omgivande nervceller. Både plack och diffunderbara, icke-plack oligomerer Ap, tros vara underliggande patogena former av Ap.

Laboratory studie av neuronala amylopathies kompliceras av det faktum att dessa villkor framsteg med tiden. Därför är det important för att utveckla genetiskt foglig djurmodeller-komplementär till möss-med kort livslängd. Dessa modeller kan användas för att belysa specifika aspekter av amylopathies-typisk cell-och molekylär-och i kraft av sin enkelhet, hjälpa till att fånga essensen av problemet. Masken Caenorhabditis elegans falls är denna kategori. Den har en kort livslängd, ~ 20 dagar och dessutom grundläggande cellulära processer, inklusive reglering av genuttryck, protein trafficking, nervkopplingar, synaptogenes, cellsignalering, och döden liknar däggdjurs 7. Unika egenskaper för masken inkluderar kraftfulla genetik och brist på ett fartyg, som gör det möjligt att studera neuronal skada oberoende av kärlskador. Å andra sidan, begränsar bristen på en hjärna användningen av C. elegans för att studera många aspekter av neurodegeneration. Dessutom kan reproduktionen och identifiering av anatomiska fördelningar av lesioner inte utföras i denna organism. Övriga gränsvärdensamheten inkluderar svårigheten att bedöma både skillnader i genuttrycksprofilerna och nedskrivning av komplexa beteende och minnesfunktion. Här beskriver vi metoder för att generera C. elegans modeller av amylopathies.

Protocol

Ett. Konstruktion av transgena maskarna Transformation. Förbered injektion pads. Placera en droppe av varm, 2% agaros löst i vatten, på ett täckglas. Placera snabbt ett andra täckglas på drop och knacka lätt det. Efter att agarosen stelnat, slide täckglas isär, och baka täckglas-pad i en vakuumugn vid 80 ° CO / N. Dra pipetter. Vi använder en Sutter P-97 avdragare för att dra 1/0.5 mm YD / ID borosilikatglas kapillärer med glödtråd. Pipetter är smidda med stängd spets som …

Representative Results

Med våra protokoll vi studera effekterna av humant Ap 42 oligomer på neuronal funktion 8. Ett fragment som kodar för humant Ap 42 och den artificiella signalpeptiden kodande sekvensen av Fire vektor pPD50.52 amplifierades från konstrukt PCL12 9 med användning av primrar som introducerade ett Smal ett restriktionsendonukleasställe i ändarna. Fragmentet infogades sedan i en konstruktion innehållande en 2481-bp flp-6 promotorsekvensen i pPD95.75 Fire vektorn mell…

Discussion

Här beskriver vi en kombinerad metod för att studera cellulära och molekylära aspekter av amylopathies med C. elegans. Fördelarna med detta tillvägagångssätt är:. 1) låg kostnad C.elegans bibehålls i normal Petriskål ympades med bakterier, vid rumstemperatur. 2) Kraftfulla genetik. Transgena djur kan erhållas på några månader och ett brett spektrum av promotorsekvenser är tillgänglig för att driva uttryck av den önskade genen i specifika neuroner. 3) Enkel, väldefinierad, nervsyste…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Vi tackar Dr Shuang Liu för kritisk läsning av manuskriptet. Den PCL12 konstruktionen var en gåva formulär Dr Christopher D. Link. Detta arbete stöddes av två National Science Foundation (0842708 och 1026958) och en AHA bidrag (09GRNT2250529) till FS.</p>

Materials

Name of Reagent Company Catalog Number Comments
      1. NGM
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 3 g
Bacteriological agar AMRESCO J637 17 g
Bacto-peptone AMRESCO J636 2.5 g
Distilled Water     Bring to 975 ml
      Sterilized by autoclaving, then add the following items and mix well
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M2643 1 ml of 1 M stock
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C5670 1 ml of 1 M stock
Cholesterol Sigma-Aldrich C3045 1 ml of 5 mg/ml stock( in ethanol)
Potassium phosphate buffer     25 ml of 1M stock
      2. Potassium phosphate buffer
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655 108.3 g
Potassium phosphate dibasic Sigma-Aldrich P3786 35.6 g
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      3. M9 buffer
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655 3 g
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich S5136 6 g
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 5 g
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M2643 1 ml of 1 M stock
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      4. Egg buffer (pH 7.3, 340 mOsm)
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 118 mM
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P5405 48 mM
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C5670 2 mM
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M4880 2 mM
HEPES Fisher Scientific BP310 25 mM
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      5. CM-15
L-15 culture medium Gibco 11415 450 ml
Fetal Bovine Serum Gibco 10437-028 50 ml
Penicillin Gibco 15140 50 units/ml
Streptomycin Gibco 15140 50 g/ml
      Adjust to 340 mOsm with sucrose then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C
      6. Other Reagents
Halocarbon 700 oil Halocarbon Products 9002-83-9  
5 μm Acrodisc Syringe Filter PALL Co. 4199  
Chitinase Sigma-Aldrich C6137-5UN  
Lectin (peanut) Sigma-Aldrich L0881-10MG  
Sodium hydroxide Fisher Scientific S320  
Lysine Sigma-Aldrich L5501  
Biotin Sigma-Aldrich B4639  
Sodium hypochlorite solution Sigma-Aldrich 425044  
Sodium azide Sigma-Aldrich 71289  
Sucrose Sigma-Aldrich S0389  

Riferimenti

  1. Hardy, J., Allsop, D. Amyloid deposition as the central event in the aetiology of Alzheimer’s disease. Trends in Pharmacological Sciences. 12 (10), 383-388 (1991).
  2. Kotzbauer, P. T., Trojanowsk, J. Q., Lee, V. M. Lewy body pathology in Alzheimer’s disease. Journal of Molecular Neuroscience. 17 (2), 225-232 (2001).
  3. Greenberg, S. A. Inclusion body myositis: review of recent literature. Current Neurology and Neuroscience Reports. 9 (1), 83-89 (2009).
  4. Revesz, T., et al. Sporadic and familial cerebral amyloid angiopathies. Brain Pathology. 12 (3), 343-357 (2002).
  5. Hartmann, T., et al. Distinct sites of intracellular production for Alzheimer’s disease A beta40/42 amyloid peptides. Nature Medicine. 3 (9), 1016-1020 (1997).
  6. Ohnishi, S., Takano, K. Amyloid fibrils from the viewpoint of protein folding. Cellular and Molecular Life sciences: CMLS. 61 (5), 511-524 (2004).
  7. DL, R. i. d. d. l. e., et al. C. elegans II. Cold Spring Harbor Monograph. 1, 1222 (1997).
  8. Cotella, D., et al. Toxic role of k+ channel oxidation in Mammalian brain. The Journal of Neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 32 (12), 4133-4144 (2012).
  9. Link, C. D. Expression of human beta-amyloid peptide in transgenic Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (20), 9368-9372 (1995).
  10. Cai, S. Q., Sesti, F. Oxidation of a potassium channel causes progressive sensory function loss during aging. Nature Neuroscience. 12 (5), 611-617 (2009).
  11. Yu, S., et al. Guanylyl cyclase expression in specific sensory neurons: a new family of chemosensory receptors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 3384-3387 (1997).
  12. Bargmann, C. I., Horvitz, H. R. Chemosensory neurons with overlapping functions direct chemotaxis to multiple chemicals in C. elegans. Neuron. 7 (5), 729-742 (1991).
  13. Caserta, T. M., et al. Q-VD-OPh, a broad spectrum caspase inhibitor with potent antiapoptotic properties. Apoptosis : an international journal on programmed cell death. 8 (4), 345-352 (2003).
  14. Christensen, M., et al. A primary culture system for functional analysis of C. elegans neurons and muscle cells. Neuron. 33 (4), 503-514 (2002).
check_url/it/50435?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Duan, Z., Sesti, F. A Caenorhabditis elegans Model System for Amylopathy Study. J. Vis. Exp. (75), e50435, doi:10.3791/50435 (2013).

View Video