Summary

माइक्रो पैमाने पर सेल उत्तेजना प्रयोगों के लिए एक बहुमुखी स्वचालित प्लेटफार्म

Published: August 06, 2013
doi:

Summary

हम सूक्ष्म पैमाने पर सेल उत्तेजना प्रयोगों के लिए एक स्वचालित सेल संस्कृति और पूछताछ के प्लेटफार्म विकसित किया है. मंच की खेती और कोशिकाओं की छोटी आबादी उत्तेजक, और आणविक विश्लेषण के लिए lysates उबरने में सरल, बहुमुखी, और सटीक नियंत्रण प्रदान करता है. मंच अच्छी तरह से कीमती कोशिकाओं और / या अभिकर्मकों उपयोग कि पढ़ाई के लिए अनुकूल है.

Abstract

Study of cells in culture (in vitro analysis) has provided important insight into complex biological systems. Conventional methods and equipment for in vitro analysis are well suited to study of large numbers of cells (≥105) in milliliter-scale volumes (≥0.1 ml). However, there are many instances in which it is necessary or desirable to scale down culture size to reduce consumption of the cells of interest and/or reagents required for their culture, stimulation, or processing. Unfortunately, conventional approaches do not support precise and reproducible manipulation of micro-scale cultures, and the microfluidics-based automated systems currently available are too complex and specialized for routine use by most laboratories. To address this problem, we have developed a simple and versatile technology platform for automated culture, stimulation, and recovery of small populations of cells (100 – 2,000 cells) in micro-scale volumes (1 – 20 μl). The platform consists of a set of fibronectin-coated microcapillaries (“cell perfusion chambers”), within which micro-scale cultures are established, maintained, and stimulated; a digital microfluidics (DMF) device outfitted with “transfer” microcapillaries (“central hub”), which routes cells and reagents to and from the perfusion chambers; a high-precision syringe pump, which powers transport of materials between the perfusion chambers and the central hub; and an electronic interface that provides control over transport of materials, which is coordinated and automated via pre-determined scripts. As an example, we used the platform to facilitate study of transcriptional responses elicited in immune cells upon challenge with bacteria. Use of the platform enabled us to reduce consumption of cells and reagents, minimize experiment-to-experiment variability, and re-direct hands-on labor. Given the advantages that it confers, as well as its accessibility and versatility, our platform should find use in a wide variety of laboratories and applications, and prove especially useful in facilitating analysis of cells and stimuli that are available in only limited quantities.

Introduction

(इन विट्रो विश्लेषण में) संस्कृति में बनाए रखा कोशिकाओं का अध्ययन जटिल जैविक प्रणालियों और मानव स्वास्थ्य गवर्निंग मौलिक सिद्धांतों और आणविक तंत्र में अमूल्य अंतर्दृष्टि प्रदान की है. संस्कृति, उत्तेजना, और पेट्री डिश और microtiter प्लेट का उपयोग जो विश्लेषण के लिए कोशिकाओं, के संग्रह के लिए पारंपरिक तरीकों मिली लीटर पैमाने संस्कृति मात्रा में कोशिकाओं (≥ 10 5) (≥ 0.1 मिलीलीटर) की बड़ी आबादी के अध्ययन के लिए डिजाइन किए गए थे. हालांकि, वहाँ की कोशिकाओं के केवल सीमित मात्रा में उपलब्ध हैं, जिनमें कई मामलों (जैसे प्राथमिक कोशिकाओं) कर रहे हैं, या कोशिकाओं की छोटी आबादी (जैसे जनसंख्या भर में सेल करने वाली सेल परिवर्तनशीलता को कम करने के लिए) वांछनीय हैं, या आवश्यक अभिकर्मकों प्राप्त करना कठिन है या बेहद महंगा (जैसे शुद्ध सेल secreted कारकों). इस तरह के मुद्दों को सफलतापूर्वक संस्कृति आकार नीचे स्केलिंग द्वारा संबोधित किया जा सकता है, जो सभी की खपत को कम करने के अतिरिक्त लाभ हैअभिकर्मकों इन विट्रो विश्लेषण 1,2 में के लिए आवश्यक है. दुर्भाग्य से, परंपरागत उपकरणों और तरीकों सूक्ष्म पैमाने संस्कृतियों और 3-11 बहुत जटिल और सबसे प्रयोगशालाओं द्वारा नियमित प्रयोग के लिए विशेष कर रहे हैं वर्तमान में उपलब्ध microfluidics आधारित स्वचालित प्रणाली के सटीक और प्रतिलिपि प्रस्तुत करने में गड़बड़ी का समर्थन नहीं करते.

सूक्ष्म पैमाने संस्करणों में (1 – 20 μl) – इस रिपोर्ट में, हम स्वचालित संस्कृति, उत्तेजना, और कोशिकाओं की छोटी आबादी (2,000 कोशिकाओं 100) की वसूली के लिए एक सरल और बहुमुखी प्रौद्योगिकी मंच के विधानसभा और उपयोग का वर्णन. fibronectin लेपित microcapillaries ("सेल छिड़काव कक्षों" मॉड्यूल) सूक्ष्म पैमाने संस्कृतियों की स्थापना, रखरखाव, और उत्तेजना के लिए साइट के रूप में कार्य करता है का एक सेट है, और एक डिजिटल microfluidics (DMF: मंच वास्तुकला (चित्रा 1) के डिजाइन में मॉड्यूलर है "स्थानांतरण" microcapillaries ("केंद्रीय हब" मॉड्यूल) 14,15 मार्गों कोशिकाओं के साथ outfitted) 12,13 डिवाइसऔर करने के लिए और छिड़काव कक्षों से अभिकर्मकों. DMF उपयोगकर्ता को व्यक्तिगत रूप से एक साथ कई बूंदों को संबोधित करने और डिवाइस हार्डवेयर बदलने के बिना जोड़तोड़ (यानी पुन: कॉन्फ़िगर नमूना प्रसंस्करण गाड़ियों) बदलने के लिए या फिर से ऑर्डर करने के लिए सक्षम बनाता है. अपनी जबरदस्त लचीलापन सेल संस्कृति 16,17, एंजाइम assays के 18,19, immunoassays 20,21, डीएनए विश्लेषण 22,23, प्रोटीन प्रसंस्करण, 24,25 सहित आवेदन की एक विस्तृत श्रृंखला में एक प्रमुख प्रौद्योगिकी के रूप में अपने हाल के उद्भव में स्पष्ट है और नैदानिक ​​नमूना प्रसंस्करण. 26,27 हमारे केंद्रीय हब DMF के उपकरणों के लिए निहित लचीलेपन का लाभ लेता है, और आगे विशेष परिधीय में जोड़तोड़ की एक सबसेट (जैसे सेल संस्कृति) से बाहर ले जाने का अवसर प्रदान करता है जो microcapillary इंटरफेस, के अलावा के माध्यम से यह बढ़ाता है बल्कि DMF डिवाइस पर ही से मॉड्यूल. इस तरह से प्रसंस्करण गाड़ियों की compartmentalization भी पीएलए के डिजाइन सरलtform वास्तुकला (सभी प्रसंस्करण कदम बाहर ले जा सकता है कि एक DMF उपकरण का निर्माण करने की जरूरत नहीं) और नए कार्य के रूप में इसके विकास की सुविधा (केवल आवश्यक के रूप में नए परिधीय मॉड्यूल को एकीकृत) के लिए आवश्यक हैं. केंद्रीय हब के भीतर कोशिकाओं और अभिकर्मकों के परिवहन DMF डिवाइस 13,28 भीतर इलेक्ट्रोड की अनुक्रमिक सक्रियण द्वारा उत्पन्न बलों electrowetting से प्रेरित है, से, परिवहन के लिए, और छिड़काव कक्षों के भीतर एक उच्च परिशुद्धता सिरिंज से उत्पन्न दबाव में परिवर्तन द्वारा संचालित है पंप. इन द्रव आंदोलनों के सभी एक सरल इलेक्ट्रॉनिक इंटरफेस के माध्यम से नियंत्रित और पूर्व निर्धारित स्क्रिप्ट के उपयोग के माध्यम से स्वचालित रहे हैं.

एक प्रतिनिधि उदाहरण के रूप में, हम बैक्टीरिया के साथ चुनौती (चित्रा 2) पर प्रतिरक्षा कोशिकाओं में हासिल transcriptional प्रतिक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए मंच के उपयोग के प्रदर्शन. मंच पर इन प्रयोगों से बाहर ले जाने के लिए हमें कोशिकाओं की कम संख्या (experimen प्रति ~ 1000 के साथ काम करने के लिए सक्षमताल हालत), प्रयोग करने के लिए प्रयोग परिवर्तनशीलता, संरक्षण अभिकर्मकों, और श्रम हाथों पर फिर से प्रत्यक्ष कम से कम. यह प्रदान करता है कि लाभ, साथ ही इसकी पहुंच और बहुमुखी प्रतिभा को देखते हुए, इस मंच प्रयोगशालाओं और अनुप्रयोगों की एक विस्तृत विविधता में इस्तेमाल पाते हैं और केवल सीमित मात्रा में उपलब्ध हैं कि कोशिकाओं और उत्तेजनाओं के विश्लेषण की सुविधा में विशेष रूप से उपयोगी साबित करना चाहिए.

Protocol

यह सामान्य प्रोटोकॉल के अध्ययन की एक विस्तृत विविधता के लिए मंच के आवेदन का समर्थन करने के लिए बनाया गया है, इस रिपोर्ट में वर्णित प्रतिनिधि अध्ययन के विशिष्ट पहलुओं कोष्ठक में बाहर अलग हो रहे हैं च?…

Representative Results

स्वचालित मंच के एक प्रदर्शन के रूप में, हम यह जीवाणु के साथ चुनौती दी प्रतिरक्षा कोशिकाओं की छोटी आबादी सूक्ष्म पैमाने संस्कृतियों में बड़े हो रहे थे, जिसमें एक अध्ययन से बाहर ले जाने के लिए प्रयोग किय?…

Discussion

हम सूक्ष्म पैमाने पर सेल संस्कृति और उत्तेजना प्रयोगों के लिए एक सरल और बहुमुखी स्वचालित प्लेटफार्म विकसित किया है. संस्कृति आकार के आगे छोटे व्यास की microcapillaries के उपयोग के माध्यम से कम किया जा सकता है, मं?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखकों DMF उपकरणों और DMF हब का डिजाइन और विकास में उनके योगदान के लिए रोनाल्ड एफ Renzi और माइकल एस BARTSCH धन्यवाद. इस शोध पूरी तरह से Sandia राष्ट्रीय प्रयोगशालाओं में निर्देशित अनुसंधान प्रयोगशाला और विकास कार्यक्रम द्वारा समर्थित किया गया था. Sandia के अनुबंध de-AC04-94AL85000 तहत ऊर्जा के राष्ट्रीय परमाणु सुरक्षा प्रशासन के अमेरिकी विभाग के लिए Sandia निगम, लॉकहीड मार्टिन निगम की एक पूर्ण स्वामित्व वाली सहायक कंपनी, द्वारा प्रबंधित और संचालित एक बहु कार्यक्रम प्रयोगशाला है.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Prelude Direct Lysis Module NuGEN 1400-24
Trypan Blue (0.4% w/v) GIBCO 15250-061
Cell Stripper Cellgro 25-056-C1
Ovation PicoSL WTA NuGEN 3310-048
Agencourt RNAClean XP Beckman Coulter Genomics A63987
pHrodo BioParticles Invitrogen P35361
CCL4 TaqMan qRT-PCR assay Applied Biosystems Mm00443111_m1
CCL5 TaqMan qRT-PCR assay Applied Biosystems Mm01302428_m1
PTGS2 TaqMan qRT-PCR assay Applied Biosystems Mm00478374_m1
TNF TaqMan qRT-PCR assay Applied Biosystems Mm00443258_m1
GAPDH TaqMan qRT-PCR assay Applied Biosystems Mm99999915_g1
Pluronic F127 Sigma Chemical 2594628
Fluorinert FC-40 Sigma Chemical 51142-49-5
Parylene C dimer Specialty Coating Systems 28804-46-8
Teflon-AF DuPont AF1600
Polyimide tape ULINE S-11928
Indium tin oxide (ITO) coated glass substrates Delta Technologies CB-40IN-1107
DMF hub Teflon-coated fused-silica microcapillaries Polymicro Technologies TSU100375
Perfusion chamber microcapillaries Polymicro Technologies TSP530700
Tubing and microcapillary fittings Sandia National Laboratories  
Polycarbonate tubing Paradigm Optics CTPC100-500-5
8-port precision syringe pump equipped with 30 mm (500 μl capacity) syringes Hamilton Company 54848-01
Parylene-C vapor deposition instrument Specialty Coating Systems PDS 2010 Labcoter 2
High-voltage function generator Trek 615A-1 615-3
MVX10 microscope Olympus Optional (facilitates tracking of droplets on DMF hub)
QIClick digital CCD camera QImaging QIClick-F-CLR-12 Optional (facilitates tracking of droplets on DMF hub)

Riferimenti

  1. Young, E. W. K., Beebe, D. J. Fundamentals of microfluidic cell culture in controlled microenvironments. Chemical Society Reviews. 39, 1036-1048 (2010).
  2. Yeo, L. Y., Chang, H. C., Chan, P. P. Y., Friend, J. R. Microfluidic devices for bioapplications. Small. 7, 12-48 (2011).
  3. Zhang, B., Kim, M. C., Thorsen, T., Wang, Z. A self-contained microfluidic cell culture system. Biomedical Microdevices. 11, 1233-1237 (2009).
  4. Skafte-Pedersen, P., et al. A self-contained, programmable microfluidic cell culture system with real-time microscopy access. Biomedical Microdevices. 14, 385-399 (2012).
  5. Barbulovic-Nad, I., Au, S. H., Wheeler, A. R. A microfluidic platform for complete mammalian cell culture. Lab Chip. 10, 1536-1542 (2010).
  6. Zhou, Y., Pang, Y., Huang, Y. Openly Accessible Microfluidic Liquid Handlers for Automated High-Throughput Nanoliter Cell Culture. Analytical Chemistry. 84, 2576-2584 (2012).
  7. Wang, H. Y., Bao, N., Lu, C. A microfluidic cell array with individually addressable culture chambers. Biosensors and Bioelectronics. 24, 613-617 (2008).
  8. Cimetta, E., Cagnin, S., Volpatti, A., Lanfranchi, G., Elvassore, N. Dynamic culture of droplet-confined cell arrays. Biotechnology Progress. 26, 220-231 (2010).
  9. Hung, P. J., Lee, P. J., Sabounchi, P., Lin, R., Lee, L. P. Continuous perfusion microfluidic cell culture array for high-throughput cell-based assays. Biotechnology and Bioengineering. 89, 1-8 (2005).
  10. King, K. R., et al. A high-throughput microfluidic real-time gene expression living cell array. Lab on a Chip. 7, 77-85 (2007).
  11. Gómez-Sjöberg, R., Leyrat, A. A., Pirone, D. M., Chen, C. S., Quake, S. R. Versatile, fully automated, microfluidic cell culture system. Analytical Chemistry. 79, 8557-8563 (2007).
  12. Wheeler, A. R. Chemistry – Putting electrowetting to work. Science. 322, 539-540 (2008).
  13. Gong, J., Kim, C. J. All-electronic droplet generation on-chip with real-time feedback control for EWOD digital microfluidics. Lab Chip. 8, 898-906 (2008).
  14. Choi, K., et al. Integration of field effect transistor-based biosensors with a digital microfluidic device for a lab-on-a-chip application. Lab Chip. 12, 1533-1536 (2012).
  15. Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. Digital microfluidics for cell-based assays. Lab Chip. 8, 519-526 (2008).
  16. Gentilucci, L., de Marco, R., Cerisoli, L. Chemical modifications designed to improve peptide stability: incorporation of non-natural amino acids, pseudo-peptide. 16, 3185-3203 (2010).
  17. Miller, E. M., Wheeler, A. R. A digital microfluidic approach to homogeneous enzyme assays. Anal. Chem. 80, 1614-1619 (2008).
  18. Jebrail, M. J., Bartsch, M. S., Patel, K. D. Digital microfluidics: a versatile tool for applications in chemistry, biology. 12, 2452-2463 (2012).
  19. Ng, A. H. C., Choi, K., Luoma, R. P., Robinson, J. M., Wheeler, A. R. Digital Microfluidic Magnetic Separation for Particle-Based Immunoassays. Analytical Chemistry. 84, 8805-8812 (2012).
  20. Sista, R. S., et al. Heterogeneous immunoassays using magnetic beads on a digital microfluidic platform. Lab Chip. 8, 2188-2196 (2008).
  21. Malic, L., Veres, T., Tabrizian, M. Biochip functionalization using electrowetting-on-dielectric digital microfluidics for surface plasmon resonance imaging detection of DNA hybridization. Biosens. Bioelectron. 24, 2218-2224 (2009).
  22. Malic, L., Veres, T., Tabrizian, M. Nanostructured digital microfluidics for enhanced surface plasmon resonance imaging. Biosens. Bioelectron. 26, 2053-2059 (2011).
  23. Jebrail, M. J., Wheeler, A. R. Digital microfluidic method for protein extraction by precipitation. Anal. Chem. 81, 330-335 (2009).
  24. Nelson, W. C., et al. Incubated protein reduction and digestion on an electrowetting-on-dielectric digital microfluidic chip for MALDI-MS. Anal. Chem. 82, 9932-9937 (2010).
  25. Mousa, N. A., et al. Droplet-scale estrogen assays in breast tissue, blood, and serum. Sci. Transl. Med. 1, 1ra2 (2009).
  26. Jebrail, M. J., et al. A digital microfluidic method for dried blood spot analysis. Lab Chip. 11, 3218-3224 (2011).
  27. Choi, K., Ng, A. H. C., Fobel, R., Wheeler, A. R. Digital microfluidics. Annual Review of Analytical Chemistry. 5, 413-440 (2012).
  28. Jebrail, M. J., et al. Digital Microfluidics for Automated Proteomic Processing. J. Vis. Exp. (33), e1603 (2009).
  29. Thaitrong, N., et al. Quality Control of Next Generation Sequencing Library through an Integrative Digital Microfluidic Platform. , (2012).
  30. Shin, Y. J., Lee, J. B. Machine vision for digital microfluidics. Review of Scientific Instruments. 81, (2010).
  31. Thornton, M., Eward, K. L., Helmstetter, C. E. Production of minimally disturbed synchronous cultures of hematopoietic cells. BioTechniques. 32, 1098-1105 (2002).
  32. Huang, X., Dai, W., Darzynkiewicz, Z. Enforced adhesion of hematopoietic cells to culture dish induces endomitosis and polyploidy. Cell Cycle. 4, 801-805 (2005).
  33. Raje, M., et al. Charged nylon membrane substrate for convenient and versatile high resolution microscopic analysis of Escherichia coli & mammalian cells in suspension culture. Cytotechnology. 51, 111-117 (2006).
  34. Chatterjee, D., Hetayothin, B., Wheeler, A. R., King, D. J., Garrell, R. L. Droplet-based microfluidics with nonaqueous solvents and solutions. Lab Chip. 6, 199-206 (2006).
  35. Perroud, T. D., et al. Microfluidic-based cell sorting of Francisella tularensis infected macrophages using optical forces. Analytical Chemistry. 80, 6365-6372 (2008).
  36. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: A revolutionary tool for transcriptomics. Nature Reviews Genetics. 10, 57-63 (2009).
  37. Malone, J. H., Oliver, B. Microarrays, deep sequencing and the true measure of the transcriptome. BMC Biology. 9, (2011).
  38. Wu, M., et al. Microfluidically-unified cell culture, sample preparation, imaging and flow cytometry for measurement of cell signaling pathways with single cell resolution. Lab on a Chip. 12, 2823-2831 (2012).
  39. Srivastava, N., et al. Fully integrated microfluidic platform enabling automated phosphoprofiling of macrophage response. Analytical Chemistry. 81, 3261-3269 (2009).
  40. Herr, A. E., et al. Microfluidic immunoassays as rapid saliva-based clinical diagnostics. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 5268-5273 (2007).
check_url/it/50597?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Sinha, A., Jebrail, M. J., Kim, H., Patel, K. D., Branda, S. S. A Versatile Automated Platform for Micro-scale Cell Stimulation Experiments. J. Vis. Exp. (78), e50597, doi:10.3791/50597 (2013).

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