Denne protokollen beskriver en fremgangsmåte for midlertidig permeabilization av adherente celler ved hjelp av en inert gass-stråle. Denne teknikk muliggjør overføring av genetisk materiale og biomolekyler i adherente pattedyrceller ved anvendelse av mekaniske krefter for å forstyrre plasmamembranen.
Ulike celle transfeksjonsteknikker eksisterer, og disse kan bli brutt ned til tre hovedkategorier: viral, kjemiske og mekaniske. Denne protokollen beskriver en mekanisk metode for å temporært permeabilize adherente celler ved hjelp av en inert gass-stråle som kan lette overføringen av normalt ikke-gjennomtrengelige makromolekyler inn i cellene. Vi tror at denne teknikken virker ved formidling av skjærkrefter på plasma membran av adherente celler, som resulterer i den midlertidige dannelse av mikroporer. Når disse porene er opprettet, cellene blir deretter gjennomtrengelig for genetisk materiale og andre biomolekyler. De mekaniske krefter involvert kjører risikoen for permanent skade eller demonterer celler fra deres substrat. Det er derfor et smalt spekter av inerte gassdynamikk hvor teknikken er effektiv. En inert gass jet har vist seg effektiv på permeabilizing ulike heftcellelinjer inkludert HeLa, HEK293 og menneske abdominale endotelceller. Denne protokollen er hensiktsmessig for permeabilization av adherente celler både in vitro og, som vi har demonstrert in vivo, viser det kan benyttes for forskning og potensielt i fremtidige kliniske anvendelser. Den har også fordelen av å permeabilizing celler i en romlig restriktiv måte, noe som kan vise seg å være et verdifullt forskningsverktøy.
Med utviklingen av biomedisin og forståelse av celle mekanikk, har levering av biomolekyler i celler blir avgjørende for mange forskningsfelt og medisinske terapier. Forskjellige teknikker har blitt utviklet for å innføre fremmede molekyler gjennom plasmamembranen og inn i cellens cytosol. Disse kan generelt klassifiseres som enten: viral, kjemiske eller mekaniske teknikker. Virale teknikker kan transfektere genetisk materiale, slik som RNA-og DNA ved hjelp av virale vektorer en. Virale teknikker har en tendens til å ha høy effektivitet i visse cellelinjer, men de har potensiale for immun-og inflammatoriske reaksjoner to. Vanlige kjemiske transfeksjonsmetoder inkluderer nedbør med kalsiumfosfat 3, bakterielle exotoxins 4 og lipofection fem. Disse teknikker har vist seg å være effektivt, men det oppstår visse problemer, slik som celletoksisitet og ikke-spesifisitet. Videre teknikker som kalsium fosfate ventet har blitt funnet å ha transfeksjon virkningsgrader opp til 70%, men bare i visse cellelinjer, sjelden i primærceller 6. Det er verdt å merke som øker forskningsinnsats blir satt inn i primærceller, spesielt i tilfellet med utforming av forskjellige behandlinger for klinisk bruk, og studiet av DNA-funksjon.
Temporal forstyrrelse av cellemembranen via mekaniske stimuli er et alternativ for innføring av fremmede molekyler inn i celler. Teknikker omfatter: mikroinjeksjon av molekyler 7, elektroporering ved å bruke et elektrisk felt for å bryte membranen 8,9, sonoporation ved hjelp av ultralydbølger for å forstyrre cellemembranen 10-12, partikkel bombardement som demonstrert ved "genet gun", som skyter partikler bundet med gener inn i cellen 13, og mer nylig, påføring av fluidskjærspenning som har vist seg å temporært permeabilize pattedyrceller 14,15. Selv mekanikeral metoder unngå noen av de nevnte problemene, de er vanligvis ledsaget av lavere effektivitet og svært komplekse og spesialiserte oppsett. En atmosfærisk trykk glød utslipp lommelykt (APGD-t) ble utviklet ved McGill med den opprinnelige målet av funksjon overflater og løsne heftende celler in vitro 16. Serendipitously, ble det oppdaget at en levende / død flekken blir brukt var liksom å bli tatt av celler uten permeabilizing middel tilsettes. Videre, dette syntes å ha skjedd bare i begrensede områder av brønnene som skjedde for å matche opp med fakkelen banen. Undersøkelse av de permeabilization egenskapene til APGD-t fortsatte og i kontrollstudier ble det funnet at bæreren inert gasstråle av plasma uten magnetisering var også i stand til å permeabilize celler. Dette motsies den første hypotesen om at de reaktive skapt av plasma jet midlertidig svekket membranen funksjon og foreslo at bare de mekaniskecal styrker var tilstrekkelig til å forårsake celle permeabilization. Herfra studier fortsatte i vår lab for å prøve og kvantifisere og karakterisere permeabilization effektiviteten av en inert gass jet samt se på sine transfeksjon evner 16.
Ved disse studier har man funnet at mikroporer gjør faktisk form i plasmamembranen, og disse porer har en tendens til å forsegle innen ca 5 sek 15. Vi har vist at teknikken er verktøyet in vitro og in vivo i chorioallantoic membran av en chick embryo.
Inert gasstråle permeabilization er en nyttig teknikk for vedheftende celle transfeksjon. Den gir mulighet til å overføre biomolekyler inn i celler ved bruk av mekaniske krefter, noe som eliminerer behovet for potensielt skadelige kjemikalier eller virale vektorer. Teknikken kan potensielt gi forskere og klinikere en effektiv og relativt enkel måte å nøyaktig transfektere celler. Selektiviteten av permeabilization er også unik slik at forskere bare behandle visse celler i en enkelt koloni som kan være nyttig i m…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne ønsker å takke følgende finansieringskilder: kanadiske Institutes of Health Research (CIHR), naturvitenskap og Engineering Research Council (NSERC).
Vitality hrGFPII-1 | Agilent Technologies Canada | 240143-57 | Green fluorescent protein for transfection experiments on HeLa cells |
Dextran, AlexaFluor 488; 10,000 MW, Anionic, Fixable | Life Technologies Inc. | D22910 | dextran for permeabilization experiments |
LIVE/DEAD Viability/Cytotoxicity Kit | Life Technologies Inc. | L3224 | for counterstaining of mammalian cells |
Prolong Gold Antifade Reagent | Invitrogen | P36930 | for mounting slides when imaging |
Ultra High Purity Helium | Praxair Canada Inc. | HE 5.0UH-T | |
Hyclone DMEM/ High Glucose Media – 500 ml | Thermo Scientific | SH30022.01 | for HeLa cells |
Fetal Bovine Serum | Invitrogen | 26140079 | For DMEM media |
Penicillin-Streptomycin, liquid | Invitrogen | 15140-122 | For DMEM media |
Phosphate-Buffered Saline (PBS) 1x | Produced in lab | ||
Table 1. List of required reagents | |||
6-Well Clear TC-Treated Microplates | Corning | 3506 | |
#1 22 x 22 Coverslips | Fisher | 12-542B | |
Glass Capillaries | World Precision Instruments | WPI Sizing Information | |
ID (mm): 1, 0.86, 0.68, 0.5 Order #: 1B200, 1B150, 1B120, 1B100 | |||
Mass-Flo Controller | MKS | M100B01314CS1BV | Mass flow controller, Series M100B, requires an external 12 V power supply |
USB-6009 DAQ Device | National Instruments | 779026-01 | |
UniSlide Assembly with stepping motor and controller | Velmex | Two series MA15 UniSlide Assemblies, fitted with Vexta 1.8° stepping motors provided by Velmex, and controlled by a VXM Stepping Motor Controller | |
Table 2. List of required equipment |