Vi tilpasset et sett av protokoller for måling av reaktive oksygenforbindelser (ROS) som kan brukes i ulike Amoeba og pattedyr cellulære modeller for kvalitative og kvantitative studier.
Reaktive oksygen arter (ROS) består av en rekke reaktive og kortlivede, oksygenholdige molekyler, som er dynamisk interconverted eller elimineres enten katalytisk eller spontant. På grunn av den korte liv spenner fra de fleste ROS og mangfoldet av sine kilder og subcellulære lokaliseringer, kan et fullstendig bilde oppnås bare ved forsiktig målinger ved hjelp av en kombinasjon av protokoller. Her presenterer vi et sett med tre forskjellige protokoller ved hjelp OxyBurst Grønn (OBG)-belagt perler, eller dihydroethidium (DHE) og Amplex UltraRed (AUR), for å overvåke kvalitativt og kvantitativt ulike ROS i profesjonelle fagocytter som Dictyostelium. Vi optimalisert perler belegningsprosedyrer og brukte OBG-belagte perler og live mikros å dynamisk visual intraphagosomal ROS generasjon på celle-nivå. Vi identifiserte lipopolysakkarid (LPS) fra E. coli som en potent stimulator for ROS generasjon i Dictyostelium. I tillegg vi developed sanntid, medium-throughput analyser ved hjelp DHE og AUR å kvantitativt måle intracellulær superoksid og ekstracellulære H 2 O 2-produksjon, hhv.
Reaktive oksygenarter (ROS) er involvert i en rekke biologiske prosesser som vertsforsvar, signalering, vev utvikling og respons på skade, så vel som hypertensjon og kreft. Den godt studert phagosomal NADPH oksidase maskiner er dedikert til rask ROS generasjon, kjent som den oksidative burst, for å drepe bakterier inntatt i nøytrofile 'phagosomes en. I tillegg ble lekkasje av elektroner som et biprodukt av den mitokondrielle respiratoriske kjeden tidligere antatt å være ansvarlig for bare en uregulert kilde ROS. Men i det siste, og ble identifisert som en viktig mekanisme for å bidra til intraphagosomal dreping av bakterier i musemakrofager 2. I de senere årene har det sosiale amøbe, Dictyostelium, bli en mektig og populær modell for å studere celle iboende mekanismer i det medfødte immunrespons. Faktisk Dictyostelium og humane fagocytter har en overraskende høy grad av konservering i molekylr machineries ansvarlige for bakterier sensing, engulfment og drepe 3,4. De homologer av proteiner og enzymer som er relatert til ROS eller avgiftning, slik som NADPH oksidase, catalases, superoxide Dismutases, kan finnes i human-og Dictyostelium. Som best studerte amøbe, presenterer Dictyostelium flere unike fordeler fremfor pattedyrmodellsystem. De vokser ved romtemperatur uten behov for CO2, med en dobling tid på 8-10 timer. De kan lett bli holdt som tilhenger eller suspensjonskulturer. I tillegg, takket være deres fullt sekvensert og annotert haploid genom, og til enkel genetisk manipulasjon, har Dictyostelium blitt en svært attraktiv eksperimentell modell organisme.
I tidligere studier, diverse klorerte og fluorerte derivater av fluorescein (kollektivt kjent som OxyBurst Green, OBG) som avgir fluorescens etter oksidasjon av ROS, har blitt brukt som en ROS reporter. Cell-permeant esterified derivater benyttes til å måle cytoplasmatisk ROS, mens celle-impermeant dekstran-eller protein-koblede derivater benyttes til å måle ekstracellulære ROS. Spesielt har OBG BSA-belagte perlene som allerede er blitt brukt for å detektere phagosomal ROS-produksjon i pattedyrceller 5. Imidlertid kan det mikroplateleser baserte tilnærmingen bare gi et gjennomsnitt ROS generasjon kurve fra en populasjon av celler. Med dagens protokoll, ved hjelp av Dictyostelium, en profesjonell phagocyte, og optimaliserte eksperimentelle forhold, får vi stabil og effektiv fagocytose uten conjugating noen opsonin på perlene. DHE har vært brukt i forskjellige modellsystemer, slik som pattedyr nøytrofiler og makrofager, for å detektere ROS produksjons 6-9. I mellomtiden er det noen controversies over spesifisitet og sensitivitet for metoden 8,10. Som en forbedret versjon av Amplex Red, fluorescensintensiteten av AUR er mindre følsom overfor pH, noe som gjør det mer egnet til å måleROS i nonneutral eller svakt sure miljøer. AUR har nylig blitt brukt i flere pattedyr systemer 11,12, men bruken i nonmammalian modeller, som ganske ofte krever svakt syrlig vekstmedier, har ikke blitt rapportert ennå. I tillegg er det ingen publiserte protokoll til kvantitativt og dynamisk måle ROS produksjon og lokalisering i det sosiale amøbe Dictyostelium.
Målet med den presenterte sett av protokoller er å gi en enkel og allsidig løsning for å overvåke ulike ROS og deres lokalisering, og videre gi innsikt i ROS-relaterte cellulære mekanismene. For OBG analysen, brukte vi leve mikros å overvåke hele prosessen med phagosomal ROS generasjon etter opptak av OBG-belagte perler av Dictyostelium celler, og gitt en ny tilnærming for å studere mekanismen av intraphagosomal drap av bakterier. Vi har optimalisert medium gjennomstrømming DHE og AUR-analyser i Dictyostelium, for å måle intracellulær superoxide og ekstracellulære H 2 O 2-produksjon, henholdsvis, ved hjelp av LPS som en potent stimulator ROS. Legg merke til at LPS ble nylig vist å øke den baktericide aktivitet av Dictyostelium mot phagocytosed bakterier 13. I tillegg behandling med DEDTC og katalase eksplisitt bekreftet at disse to metodene spesifikt måle ulike typer og subcellulære lokaliseringer av ROS i Dictyostelium. Endelig kan OBG assay tilpasses enhver vedheftende fagocytisk celle, ved ytterligere opsonizing perlene med ligander for fagocytiske reseptorer av dyreceller. I prinsippet kan de DHE og AUR-analyser også være finjustert for målinger i alle tilhenger eller ikke-festede celle under passende eksperimentelle forhold.
Sammenlignet med de tidligere beskrevne metoder, OBG assay dynamisk visualiserer prosessen med phagosomal ROS generering på enkeltcelle-nivå, istedenfor å måle en gjennomsnittlig ROS-signal fra en populasjon av celler. Slike befolkningsGjennomsnitt metoder tendens til å skjule viktig informasjon forårsaket av nonsynchronous fagocytose. Vi vellykket tilpasset DHE og AUR-analyser til Dictyostelium og optimalisert protokollene. Viktigst, vi angitt hvilke typer og subcellulære lokaliseringer av ROS målt ved…
The authors have nothing to disclose.
Vi er takknemlige til legene Karl-Heinz Krause og Vincent Jaquet for hjelp og råd til å sette opp disse protokollene, og også takke Christoph Bauer og Jérôme Bosset fra Bioimaging Platform av NCCR og Dr. Navin Gopaldass for deres tekniske støtte. Forskningen er støttet av en ProDoc bevilgning av den sveitsiske National Science Foundation.
REAGENTS | |||
OxyBURST Green H2HFF BSA | Invitrogen | O-13291 | |
Alexa Fluor 594 | Invitrogen | A-20004 | |
Carboxylated silica beads | Kisker Biotech | PSi-3.0COOH | |
HL5C medium | ForMedium | HLC0102 | |
LoFlo medium | ForMedium | LF1001 | |
Bacto agar | BD | 204010 | |
Dihydroethidium | Sigma | 37291-25MG | |
Amplex UltraRed | Invitrogen | A36006 | |
Horseradish peroxidase | Roche | 10108090001 | |
Diethyldithiocarbamate (DEDTC) | Sigma | D3506-100G | |
Catalase | Sigma | C9322-1G | |
Cyanamide | Sigma | 187364-25G | |
Lipopolysaccharides | Sigma | L2630-25G | |
EQUIPMENT | |||
ibidi μ-Dish 35 mm, high | ibidi | 81156 | Bottom made of optically clear plastic |
MatTek dish 35 mm | MatTek corporation | P35G-1.5-14-C | Bottom made of a glass coverslip |
Scepter Cell Counter | Merck Millipore | PHCC00000 | |
White 96 well plate | Nunc | 236108 | |
Centrifuge | SORVALL | Legend RT | |
Microplate reader | BioTek | Synergy Mx |