Summary

Den Slice Kultur Metod för att följa utveckling av Tand bakterier i Explantation kultur

Published: November 13, 2013
doi:

Summary

Här vi detalj en metod att odla tand bakterier i käken skivor med hjälp av en vävnad chopper. Denna metod ger unik tillgång till tanden under utveckling, vilket ger utmärkta möjligheter till manipulation och härstamning spårning, inte tillgänglig att använda mer traditionella odlingsmetoder.

Abstract

Explantation kultur tillåter manipulering av att utveckla organ vid specifika tidpunkter och är därför en viktig metod för utvecklings-biolog. För många organ är det svårt att komma åt att utveckla vävnad för att möjliggöra övervakning under ex vivo kultur. Den bit kultur Metoden ger tillgång till vävnaden så att morfogenetiska rörelser kan följas och specifika cellpopulationer kan måltavlan för manipulation eller härstamning spårning.

I denna uppsats beskriver vi en metod för bit kultur som har varit mycket framgångsrik för odling av tand bakterier i en rad arter. Metoden ger utmärkt tillgång till tand bakterier, som utvecklas i samma utsträckning som den som observerats in vivo, omgiven av de andra käken vävnader. Detta tillåter vävnadsinteraktioner mellan tanden och omgivande vävnaden som skall övervakas. Även om detta dokument koncentrerar sig på tandgroddar kan samma protokoll skall tillämpas för att följa utvecklingen av ett antalav andra organ, t.ex. spottkörtlar, Meckels brosk, nasalkörtlar, tungan och örat.

Introduction

För ett antal experiment är det viktigt att kunna kultur vävnad ex vivo för att följa utvecklingen. Kultur för utveckling av vävnad ger tillgång vid definierade perioder av utveckling och tillåter manipulering av gener genom tillsats av faktorer till odlingsmediet, eller den laddade kulor, och med hjälp av transfektion och elektroporering 1. För många experiment är det viktigt att kunna visualisera den vävnad som den växer, till exempel, för att följa ödet av härstamnings märkta celler som vävnaden genomgår morfogenes. Detta kan vara särskilt problematiskt för vävnader som utvecklas djupt inuti embryot, som inte är uppenbar när ett block av vävnad från embryot odlas. Tänder är bra exempel på detta, eftersom de utvecklas i underkäken, överkäken och frontala nasala processen. När hela underkäken odlas de ytliga strukturer tanden kan ses, men förändringar i morfologi endast kan analyseras efter sektionering av fast vävnad <supp> 2. Vi har anpassat en live-skiva kultur teknik gör det möjligt att följa tandgroddar utveckling och ger tillgång till de olika delarna av tanden under utveckling. Kulturerna technique tanden groddar skivor vid gas-vätskegränsytan, med användning av en modifierad Trowell metod 3. Dessa skiva kulturer har varit mycket användbara i direkt följande morfogenes av tanden, och tillåter härstamning spårning av distinkta komponenter, såsom emalj knut och den dentala papillen och follikelstimulerande 1,4-7. Tekniken är inte begränsad till musembryon och har framgångsrikt använts för att kultur levande skivor av gris och orm tandvävnad 8,9. Förutom fördelen av att kunna visualisera tandutveckling, slice metod har också den fördelen att de tunna skivor av vävnad ha ökad tillgång till näringsämnen från mediet och luft från inkubatorn. Detta resulterar i ökad tillväxt av tand bakterier, vilket motsvarar utvecklingen in vivo, och show invasion av endotelceller in i papilla 7. Däremot tand bakterier i hela käken kulturer utvecklas långsammare än de som in vivo och centrum för kulturen är ofta nekrotisk i långsiktiga kulturer. I bit kultur, utvecklar tanden inom en del av käken, och dess samspel med det omgivande utveckla ben och andra vävnader kan övervakas. I vår metod vävnaden hackas direkt efter dissektion utan att behöva bädda i ett stödmedium 10,11 och inget behov av något system för att fästa vävnaden till huggkubben. Metoden är alltså icke-invasiv och snabb, vilket gör att många mandibles som ska snittas i en session.

Protocol

1. Konfigurera Slipa dissektionsinstrument (med en slipsten smörjs med mineralolja) och sterilisera före användning för organkultur med hjälp av en 70% etanol spray och torrvärmesterilisering. Slipa dissektion nålar med hjälp av elektrolys i 2 M natriumhydroxid med hjälp av en 12 V matning. Förbered odlingsmedium som används för dissekering och odling av embryonala organ, bestående av Advanced Dulbeccos Modified Eagle Medium F12 (DMEM F12) kompletterat med 1% GlutaMAX och 1% penicillin-…

Representative Results

I syfte att följa rörelsen hos den första molar tand follikel var 250 fim frontala skivor tas genom en underkäken med hjälp av den ovan beskrivna metoden. Den dentala follikeln är skiktet av mesenkym som omger den yttre emalj epitelet (OEE) av framkallnings tand, och har tidigare visats att delta i bildningen av vävnad hos periodontium 6. Mandibles dissekerades vid E14.5, locket skede av tandutveckling. I segmentet var konturerna av tand epitel klar, och den kondensetand mesenkymet kunde identifieras s…

Discussion

Denna metod för tand kultur har den fördelen att tillgång till tandgroddar är utmärkt, vilket tillåter noggrann härstamning spårning och placeringen av pärlorna inom epitelet eller mesenkym. Definierade områden av utvecklingstand grodden kan därför vara särskilt inriktade. Under kultur den förändrade morfologin av tanden grodden kan följas, och effekten av manipulationer snabbt utvärderas.

Metoden är emellertid endast lämplig för unga tand bakterier innan betydande bildni…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Sarah A. Alfaqeeh finansieras av Kind Saud University College of Dentistry, ministeriet för högre utbildning, Saudiarabien.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Ethanol VWR 101077Y 100% ethanol was diluted in distilled H2O to 70%.
DMEM F12 Gibco 12634-010 Advanced Dulbecco's Modified Eagle Medium F12
GlutaMAX Gibco 35050-061
Invitrogen
Penicillin-streptomycin Sigma P0781
DiI (Molecular probes) Vybrant V-22885 Cell-labeling solution
Invitrogen Cell tracker CM-DiI, C-7000
DiO (Molecular probes) Vybrant V22886
Invitrogen
Geminator 500 Thomas Thomas No. 3885A20 Dry-heat sterilization
McIlwain tissue chopper Ted Pella, Inc. 10180 Standard table
Organ culture dish (Center-Well Organ Culture Dish) Falcon 353037
Membranes (Cell Culture Inserts, 0.4 μm pore size) BD Falcon 353090 PET track-etched membrane, 6-well format
Metal grids (Stainless Steel – AISI 304 – Mesh) Goodfellow FE228710 (Fe/Cr18/Ni10)
AutoFlow Direct Heat CO2 Incubator Nuaire NU-5500
Picospritzer III Intracel Ltd 051-0500-900 0-100 psi Single channel picospritzer III
Glass capillary with filament 1 mm WPI TW100F-4
Tungsten wire 0.1 mm Goodfellow W005138
Tungsten wire 0.38 mm Goodfellow W005155
Aspirator tubes Sigma A5177 Used for mouth aspiration lineage tracers

Riferimenti

  1. Rothova, M., Peterkova, R., Tucker, A. S. Fate map of the dental mesenchyme: dynamic development of the dental papilla and follicle. Developmental biology. 366, 244-254 (2012).
  2. Ferguson, C. A., et al. Activin is an essential early mesenchymal signal in tooth development that is required for patterning of the murine dentition. Genes & development. 12, 2636-2649 (1998).
  3. Trowell, O. A. The culture of mature organs in a synthetic medium. Experimental cell research. 16, 118-147 (1959).
  4. Matalova, E., Antonarakis, G. S., Sharpe, P. T., Tucker, A. S. Cell lineage of primary and secondary enamel knots. Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 233, 754-759 (2005).
  5. Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S., De Bari, C., Cobourne, M. T., Rice, D. P. A regulatory relationship between Tbx1 and FGF signaling during tooth morphogenesis and ameloblast lineage determination. Developmental biology. 320, 39-48 (2008).
  6. Diep, L., Matalova, E., Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S. Contribution of the tooth bud mesenchyme to alveolar bone. Journal of experimental zoology. Part B, Molecular. 312B, 510-517 (2009).
  7. Rothova, M., Feng, J., Sharpe, P. T., Peterkova, R., Tucker, A. S. Contribution of mesoderm to the developing dental papilla. The International journal of developmental biology. 55, 59-64 (2011).
  8. Buchtova, M., et al. Initiation and patterning of the snake dentition are dependent on Sonic hedgehog signaling. Developmental biology. 319, 132-145 (2008).
  9. Buchtova, M., Stembirek, J., Glocova, K., Matalova, E., Tucker, A. S. Early regression of the dental lamina underlies the development of diphyodont dentitions. Journal of dental research. 91, 491-498 (2012).
  10. Cho, S. W., et al. The primary enamel knot determines the position of the first buccal cusp in developing mice molars. Differentiation; research in biological diversity. 75, 441-451 (2007).
  11. Sakano, M., et al. Cell dynamics in cervical loop epithelium during transition from crown to root: implications for Hertwig’s epithelial root sheath formation. Journal of periodontal research. , (2012).
  12. Fisher, A. R. Morphological development in vitro of the whole and halved lower molar tooth germ of the mouse. Archives of oral biology. 16, 1481-1496 (1971).
  13. Coin, R., Schmitt, R., Lesot, H., Vonesch, J. L., Ruch, J. V. Regeneration of halved embryonic lower first mouse molars: correlation with the distribution pattern of non dividing IDE cells, the putative organizers of morphogenetic units, the cusps. The International journal of developmental biology. 44, 289-295 (2000).
  14. Kavanagh, K. D., Evans, A. R., Jernvall, J. Predicting evolutionary patterns of mammalian teeth from development. Nature. 449, 427-432 (2007).
  15. Munne, P. M., Tummers, M., Jarvinen, E., Thesleff, I., Jernvall, J. Tinkering with the inductive mesenchyme: Sostdc1 uncovers the role of dental mesenchyme in limiting tooth induction. Development. 136, 393-402 (2009).

Play Video

Citazione di questo articolo
Alfaqeeh, S. A., Tucker, A. S. The Slice Culture Method for Following Development of Tooth Germs In Explant Culture. J. Vis. Exp. (81), e50824, doi:10.3791/50824 (2013).

View Video