Summary

Crescere cellule staminali neurali da Regioni convenzionali e non convenzionali del cervello adulto Roditore

Published: November 18, 2013
doi:

Summary

Cellule staminali neurali raccolte dal cervello adulto sono in aumento utilizzati in applicazioni che vanno dalla ricerca di base dello sviluppo del sistema nervoso ad esplorare potenziali applicazioni cliniche in medicina rigenerativa. Questo rende rigoroso controllo delle condizioni di isolamento e di coltura utilizzate per coltivare queste cellule fondamentali per suonare i risultati sperimentali.

Abstract

Un recente lavoro dimostra che il sistema nervoso centrale (SNC) rigenerazione e tumorigenesi coinvolge popolazioni di cellule staminali (SCS) residenti all'interno del cervello adulto. Tuttavia, i meccanismi di queste cellule normalmente quiescenti impiegano per assicurare il corretto funzionamento delle reti neurali, così come il loro ruolo nel recupero da un infortunio e la mitigazione dei processi neurodegenerativi sono poco capito. Queste cellule risiedono nelle regioni denominate "nicchie" che forniscono un ambiente di sostegno che coinvolgono i segnali modulanti sia dal vascolare e immunitario. L'isolamento, la manutenzione e la differenziazione di CS del sistema nervoso centrale in condizioni di coltura definite che escludono fattori sconosciuti, li rende accessibili al trattamento con mezzi farmacologici o genetici, fornendo così spaccato il loro comportamento in vivo. Qui offriamo informazioni dettagliate sui metodi per la generazione di colture di SC SNC da regioni distinte del cervello adulto e approcci per valutare la loro dpotenziale ifferentiation in neuroni, astrociti, oligodendrociti e in vitro. Questa tecnica produce una popolazione omogenea di cellule come una coltura monostrato che può essere visualizzato per studiare individuale SC e la loro progenie. Inoltre, può essere applicato a diversi sistemi modello animale e campioni clinici, utilizzato in precedenza per prevedere le risposte di rigenerazione nel sistema nervoso adulto danneggiato.

Introduction

Il dogma centrale della neurobiologia, stabilito dalle osservazioni fondamentali del citoarchitettura cervello fatto da Ramón Y. Cajal oltre un secolo fa, ha dichiarato che la neurogenesi è improbabile dopo l'adolescenza data la complessità delle reti neurali presenti nel sistema nervoso centrale 1. Nonostante il lavoro di Altman nel 1960, e successivamente Kaplan, dimostrando che 3 H-timidina è stato trovato in neuroni maturi che indicano che in realtà neuroni venivano generati in zone distinte del cervello adulto, il dogma continuato a tenere 2, 3. La prova ha continuato a montare con la ricerca di Nottebohm descrivere i cambiamenti stagionali nel numero di neuroni presenti nel cervello Songbird 4. Non è stato fino al 1999, quando Gould et al. Lavoro pubblicato sulla generazione di neuroni nell'ippocampo aumenta con l'esecuzione di compiti di apprendimento associativo nel ratto, nonché le osservazioni di Kornack e Rakic ​​dimostrazioneting continuato neurogenesi nel macaco adulto che il concetto di una meno rigida, cervello più plastico, è stato riconosciuto 5, 6.

La ricerca della sorgente cellulare di questi neuroni de novo generati portato alla scoperta di una popolazione discreta di cellule staminali (SC) che risiedono in aree del cervello denominato nicchie 7. La zona subventricular e sub zona granulari dell'ippocampo sono considerate le due principali regioni neurogenici 8,9. Le cellule isolate da questi luoghi mostrano la classica caratteristica del SCs derivate embrionali o fetali, self-renewal e potenziale di differenziazione. Nel caso di cellule staminali neurali (NSC), possono essere differenziati in neuroni, astrociti, oligodendrociti e. Inoltre, questi SC macchia positivo per fetali marcatori NSC come il filamento intermedio proteina nestin 10. Lavori più recenti sottolinea che SC potrebbero non essere limitate a queste two aree, e sono infatti localizzati in tutto il cervello come una popolazione in gran parte quiescente di cellule strettamente associati al sistema vascolare 11.

Le osservazioni che la SCS sono mobilitati in risposta al danno suggerisce la possibilità di essere in grado di utilizzare queste cellule per scopi rigenerativi per aiutare nel recupero dalla malattia neurodegenerativa e ictus 12, 13. Questo non è dissimile il ruolo che le cellule staminali mesenchimali (MSC) svolgono nella guarigione dei tessuti connettivi, che si trovano come cellule perivascolari che hanno il potenziale di diventare osteoblasti, condrociti e cellule adipose 14. Tuttavia, NSC non possono essere raccolti nello stesso modo come MSC da midollo osseo di aspirazione routine e densità gradiente tecniche di centrifugazione e successivamente utilizzati in terapie cellulari basate autologhe. Di conseguenza, altre fonti di cellule, come l'uso di cellule staminali neurali fetali e precursori neuronali derivate da embLe cellule staminali ryonic sono state ampiamente esplorate in malattie animali e modelli di pregiudizio con vari gradi di successo 15. Tecnologie di cellule staminali pluripotenti indotte che utilizzano fonti di cellule somatiche offrono un'altra viale potenziale per la produzione di terapie cellulari terapeuticamente utili per una vasta gamma di applicazioni, superando la limitata disponibilità e preoccupazioni etiche riguardanti l'uso di cellule embrionali e tessuti fetali 16. Tuttavia, la traduzione clinica di questi risultati ha dimostrato di essere un compito difficile, come dimostrato nelle lotte di trattamento di varie condizioni neurologiche con terapeutico basato-SC approcci 17,18, così come un percorso tortuoso di gioco regolamentare. Come approccio alternativo, l'introduzione di specifici trattamenti farmacologici in grado di modulare i numeri NSC e facilitare il recupero in modelli di malattia di Parkinson e ictus 19. Qualunque sia la strategia potrebbe essere, capire come manipolare efficacemente queste cellulerichiede un sistema accessibile in vitro.

Culture del NSC possono essere eseguite sia come culture aggregati, noto anche come neurosfere, o come un monostrato 8,20. Entrambe le tecniche sono stati ampiamente utilizzati, permettendo la creazione di condizioni di coltura definiti, cioè uso di Epidermal Growth Factor (EGF) o fattore fondamentale di crescita dei fibroblasti (bFGF) come fonte mitogeno, che prevedono l'espansione di precursori multipotenti. Mentre colture di neurosfere può essere più adatto per studiare capacità propagazione clonale di un tipo di cellula isolata, il sistema ha dimostrato di produrre una popolazione mista di cellule durante l'espansione 21. Inoltre, la struttura chiusa di neurosfere rende manipolazione farmacologica delle cellule impraticabile, e l'interpretazione dell'influenza questi fattori possono avere potrebbe essere confuso a causa del microambiente stabilito nella neurosfere stesso. Colture monostrato, d'altro canto, possono essereimpiegato in schermi ad alta produttività di librerie di piccole molecole, fornendo un potente strumento per esplorare i meccanismi di trasduzione del segnale che regolano la crescita e la differenziazione SC e si apre la possibilità di scoprire nuovi composti che colpiscono specificamente questa popolazione di cellule.

Di conseguenza, la capacità di generare riproducibile colture di NSC adulte provenienti da diverse regioni di interesse nel cervello può essere utilizzato in una vasta gamma di applicazioni di ricerca comprendono studi di sviluppo del sistema nervoso centrale (CNS) per esplorare nuovi approcci di medicina rigenerativa . Il protocollo presentato qui dimostra come sezionare e valutare il potenziale di differenziazione della SC SNC isolate dal cervello di roditori adulti.

Protocol

Il lavoro aderisce alla Dichiarazione di Helsinski e l'animale dichiarazione ARVO. Gli animali sono stati impiegati per la raccolta dei tessuti e tutti i metodi pertinenti sono state seguite secondo le istruzioni del stabulario dell'Università di Dresda. Gli animali sono stati maneggiati e custoditi secondo le linee guida federali tedesche per l'uso e la cura degli animali da laboratorio, e lo studio è stato approvato dal Landesdirektion Dresda. Si prega di consultare la politica veterinaria del proprio is…

Representative Results

Identificare la regione di interesse che per raccogliere le cellule staminali neurali è il primo punto critico e definirà la quantità di tempo necessario per ottenere un piatto confluenti di cellule. Ad esempio, la SVZ è una zona neurogena classico e ha quindi una relativa proporzione elevata di cellule staminali neurali. Tuttavia, la tecnica qui presentata può essere utilizzato con altre regioni spesso non riconosciuti come aventi un potenziale neurogena robusto nell'età adulta. Ai fini del presente protocoll…

Discussion

Molti dei passaggi critici all'isolamento successo, l'espansione e la differenziazione delle cellule staminali neurali dal cervello adulto sono condivise in comune con le tecniche di coltura di tessuti standard. L'obiettivo da tenere a mente è che le cellule staminali neurali isolate dal cervello adulto dovrebbe mantenere come molti dei loro caratteristiche in vivo come possibile (Figura 2J). Spesso un equilibrio tra la necessaria prudenza e velocità adeguata deve essere colpito. …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato finanziato (in parte) dal Helmholtz Alliance ICEMED – Imaging e Malattie Metaboliche polimerizzazione ambientale, attraverso il Fondo Initiative e la rete dell'Associazione Helmholtz, una sovvenzione dalla Else Kroener-Fresenius Foundation, e un finanziamento della Deutsche Forschungsgemeinschaft ( SFB 655: cellule in tessuti).

Materials

6-well tissue culture dishes BD Biosciences 353934
Poly-L-ornithine Sigma-Aldrich P-3655

5 mg/ml stock solution prepared in double distilled water (Stable for several months at -20 °C).

Working concentration 0.5 mg/ml in water (Stable for 1 month at 4 °C).

Fibronectin R&D Systems 1030-Fn Do not agitate stock solution
Filtration Apparatus Corning Life Sciences 430769
DMEM/F-12 Mediatech 10-090-CV See note below for complete N2 media preparation
Apo-transferrin Sigma-Aldrich T-2036
Insulin Sigma-Aldrich I-0516
Putrescine Sigma-Aldrich P-5780 1 M stock solution in ddH2O (Stable at 20 °C for 6 months)
Sodium Selenite Sigma-Aldrich S-5261 500 µM stock solution in ddH2O (Stable at -20 °C for 6 months)
Progesterone Sigma-Aldrich P-8783 100 µM stock solution in ethanol (Stable at -20°C for 6 months)
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140-122
Phosphate Buffered Saline Mediatech 21-040-CV
Basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) R&D Systems 233-FB Working concentration 20 ng/ml 
Delta4 (Dll4) R&D Systems 1389-D4 Working concentration  500 ng/ml
Angiopoetin 2 (Ang2) R&D Systems 623-AN Working concentration  500 ng/ml
JAK Inhibitor Calbiochem 420099 Working concentration 200 nM 
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A-2058
15- and 50-ml Conical tubes Corning Life Sciences 430053, 430829
Other necessary items include: General dissection instruments, including razor blade and forceps, Adult rat (3-6 months old; Sprague-Dawley or Long Evans), CO2 intoxication chamber, Laminar flow hood for cell culture and incubator Incubator (humidified, 37 °C, 5% CO2, 5% O2). Note: For complete N2 media preparation, to one bottle of DMEM/F-12 (500 ml) add 0.05 g of apotransferin, 0.0125 g of insulin (freshly predissolved in 1 ml of 10 mM NaOH), 50 μl of putrescine, 30 μl of sodium selenite, 100 μl of progesterone stocks, and 5 ml of penicillin/streptomycin solution.  Adjust pH to 7.2, if needed. Filter-sterilize and store at 4 °C for up to 3 weeks and protect from light.
[header]
Immunofluorescence Reagents Table
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15719
Normal Donkey Serum (NDS) Sigma-Aldrich D-9663
Triton X-100 Sigma-Aldrich T-8787
4,6-Diamidino-2-phenylindole (DAPI) Sigma-Aldrich D-8417 5 mg/ml stock solution in methanol
[header]
Primary Antibody Table
Nestin Chemicon MAB353

Dilution Factor: 1:400

Species: Mouse IgG1

Hes3 Santa Cruz sc-25393

Dilution Factor: 1:100

Species: Rabbit IgG

Sox2 R&D Systems MAB2018 

Dilution Factor: 1:100

Species: Mouse IgG2a

CNPase Chemicon MAB326

Dilution Factor: 1:200

Species: Mouse IgG1

β-tubulin III (TUJ1) R&D Systems MAB1195

Dilution Factor: 1:500

Species: Mouse IgG2a

Glial Fibrillary Acidic Protein (GFAP) Dako North America Z0334

Dilution Factor 1:500

Species: Rabbit

[header]
Secondary Antibody Table
Alexa   568 Invitrogen A-21124

Dilution Factor: 1:200

Species: Goat anti Mouse IgG1

Alexa 488 Invitrogen A-21131

Dilution Factor: 1:200

Species: Goat anti Mouse IgG2a

Cy5 Jackson ImmunoResearch 59883

Dilution Factor: 1:200

Species: Goat anti Rabbit

Riferimenti

  1. Cajal, R. Y. . Comparative Study of Sensory Areas of the Human Cortex. , (1899).
  2. Altman, J., Das, G. D. Autoradiographic and histological evidence of postnatal hippocampal neurogenesis in rats. J. Comp. Neurol. 124, 319-335 (1965).
  3. Kaplan, M. S., Hinds, J. W. Neurogenesis in the adult rat: electron microscopic analysis of light radioautographs. Science. 197, 1092-1094 (1977).
  4. Nottebohm, F. Neuronal replacement in adulthood. Ann. N.Y. Acad. Sci. 457, 143-161 (1985).
  5. Gould, E., Reeves, A. J., Graziano, M. S., Gross, C. G. Neurogenesis in the neocortex of adult primates. Science. 286, 548-552 (1999).
  6. Kornack, D. R., Rakic, P. Continuation of neurogenesis in the hippocampus of the adult macaque monkey. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 5768-5773 (1999).
  7. Alvarez-Buylla, A., Kohwi, M., Nguyen, T. M., Merkle, F. T. The heterogeneity of adult neural stem cells and the emerging complexity of their niche. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 73, 357-365 (2008).
  8. Reynolds, B. A., Weiss, S. Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system. Science. 255, 1707-1710 (1992).
  9. Luskin, M. B. Restricted proliferation and migration of postnatally generated neurons derived from the forebrain subventricular zone. Neuron. 11, 173-189 (1993).
  10. Lendahl, U., Zimmerman, L. B., McKay, R. D. CNS stem cells express a new class of intermediate filament protein. Cell. 60, 585-595 (1990).
  11. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Targeting neural precursors in the adult brain rescues injured dopamine neurons. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 13570-13575 (2009).
  12. Jin, K., et al. Neurogenesis in dentate subgranular zone and rostral subventricular zone after focal cerebral ischemia in the rat. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 4710-4715 (2001).
  13. Zhang, R. L., Zhang, Z. G., Chopp, M. Ischemic stroke and neurogenesis in the subventricular zone. Neuropharmacology. 55, 345-352 (2008).
  14. Caplan, A. I. Why are MSCs therapeutic? New data: new insight. J. Pathol. 217, 318-324 (2009).
  15. Goldman, S. Stem and progenitor cell-based therapy of the human central nervous system. Nat. Biotechnol. 23, 862-871 (2005).
  16. Sun, N., Longaker, M. T., Wu, J. C. Human iPS cell-based therapy: considerations before clinical applications. Cell Cycle. 9, 880-885 (2010).
  17. Amariglio, N., et al. Donor-derived brain tumor following neural stem cell transplantation in an ataxia telangiectasia patient. PLoS Med. 6, e1000029 (2009).
  18. Lindvall, O., Bjorklund, A. Cell therapeutics in Parkinson’s disease. Neurotherapeutics. 8, 539-548 (2011).
  19. Kittappa, R., Bornstein, S. R., Androutsellis-Theotokis, A. The Role of eNSCs in Neurodegenerative Disease. Mo.l Neurobiol. , (2012).
  20. Cattaneo, E., McKay, R. Identifying and manipulating neuronal stem cells. Trends Neurosci. 14, 338-340 (1991).
  21. Jensen, J. B., Parmar, M. Strengths and limitations of the neurosphere culture system. Mol. Neurobiol. 34, 153-161 (2006).
  22. Duarte, A., et al. Dosage-sensitive requirement for mouse Dll4 in artery development. Genes Dev. 18, 2474-2478 (2004).
  23. Maisonpierre, P. C., et al. Angiopoietin-2, a natural antagonist for Tie2 that disrupts in vivo angiogenesis. Science. 277, 55-60 (1997).
  24. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Notch signalling regulates stem cell numbers in vitro and in vivo. Nature. 442, 823-826 (2006).
  25. Alderson, R. F., Alterman, A. L., Barde, Y. A., Lindsay, R. M. Brain-derived neurotrophic factor increases survival and differentiated functions of rat septal cholinergic neurons in culture. Neuron. 5, 297-306 (1990).
  26. Johe, K. K., Hazel, T. G., Muller, T., Dugich-Djordjevic, M. M., McKay, R. D. Single factors direct the differentiation of stem cells from the fetal and adult central nervous system. Genes Dev. 10, 3129-3140 (1996).
  27. Ourednik, J., Ourednik, V., Lynch, W. P., Schachner, M., Snyder, E. Y. Neural stem cells display an inherent mechanism for rescuing dysfunctional neurons. Nat. Biotechnol. 20, 1103-1110 (2002).
  28. Ryu, J. K., Cho, T., Wang, Y. T., McLarnon, J. G. Neural progenitor cells attenuate inflammatory reactivity and neuronal loss in an animal model of inflamed AD brain. J. Neuroinflammation. 6, 39 (2009).
  29. Androutsellis-Theotokis, A., et al. Angiogenic factors stimulate growth of adult neural stem cells. PLoS One. 5, e9414 (2010).
  30. Park, D. M., et al. Hes3 regulates cell number in cultures from glioblastoma multiforme with stem cell characteristics. Sci. Rep. 3, 1095-1010 (2013).
  31. Poser, S. W., Shostak, S., et al. Ch. 5. Cancer Stem Cells – The Cutting. , 89-110 (2011).
  32. Androutsellis-Theotokis, A., Rueger, M. A., Mkhikian, H., Korb, E., McKay, R. D. Signaling pathways controlling neural stem cells slow progressive brain disease. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 73, 403-410 (2008).
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Citazione di questo articolo
Poser, S. W., Androutsellis-Theotokis, A. Growing Neural Stem Cells from Conventional and Nonconventional Regions of the Adult Rodent Brain. J. Vis. Exp. (81), e50880, doi:10.3791/50880 (2013).

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