Summary

Isolering og dyrkning af endotelceller fra embryonale forebrain

Published: January 23, 2014
doi:

Summary

Denne video viser en nem og pålidelig strategi for forberedelsen af ​​rene kulturer af endotelceller fra den embryonale forhjernen indenfor 10-12 dage og vil være nyttigt for forskning fokuseret på mange aspekter af cerebral angiogenese.

Abstract

Embryonale hjerne endotelceller kan tjene som et vigtigt redskab i studiet af angiogenese og neurovaskulære udvikling og samspil. De to vaskulære netværk af embryonale forhjerne, pial og periventricular, er rumligt karakteristisk og har forskellige oprindelser og vækstmønstre. Endotelceller fra pial og periventrikulære vaskulære netværk har unikke genekspressionsprofiler og funktioner. Her præsenterer vi en trin-for-trin-protokollen for isolation, kulturforskelle, og verifikation af rene populationer af endotelceller fra periventrikulær vaskulære netværk (PVECs) i embryonale forhjerne (telencephalon). I denne fremgangsmåde er telencephalon mangler pial membran opnået fra embryonisk dag 15 mus hakket fordøjet med collagenase / dispase og dispergeres mekanisk til en enkelt cellesuspension. PVECs renses fra celle suspension ved hjælp af positiv selektion med anti-CD-31/PECAM-1 antistof konjugeret til mikroperler ved hjælp af et stærkt magnetiskseparationsmetode. Oprensede celler er dyrket på collagen 1 coatede dyrkningsskåle i endotel celledyrkningsmedium indtil de bliver sammenflydende og yderligere subdyrket. PVECs opnået med denne protokol udstille brosten og spindel formet fænotyper, som visualiseres ved fasekontrast lysmikroskopi og fluorescens mikroskopi. Renheden af ​​pVec kulturer blev etableret med endotelcellespecifikke markører. I vores hænder, denne metode pålideligt og konsekvent giver rene populationer af PVECs. Denne protokol vil gavne undersøgelser med henblik på at opnå mekanistiske indblik i forebrain angiogenese, forståelse pVec interaktioner, og cross-samtaler med neuronale celletyper og rummer et enormt potentiale for terapeutisk angiogenese.

Introduction

Angiogenese, neurogenese og neuronal migration er kritiske hændelser i det centrale nervesystem (CNS) udvikling, reparation og regeneration. Flere elegante undersøgelser har vist, at endotelceller stimulere neuronal proliferation og vice versa via frigivelse af opløselige faktorer, og ved direkte kontakt. Vi fandt det mærkeligt, at i de fleste af disse undersøgelser 1-3, mens neuronal progenitorer / neurale stamceller er isoleret fra embryonale hjerne, er de samdyrket med endotelceller fra den voksne hjerne, andre voksne vævskilder eller endotheliale cellelinier. Dette kan delvis skyldes de tekniske vanskeligheder, der er forbundet med isolering og dyrkning af rene populationer af endotelceller fra embryonale hjerne. Men angiogenese, neurogenese, og neuronal migration er samtidige begivenheder i størrelsesordener mere robust i embryonale hjernen end i den normale voksne hjerne. Periventricular vaskulære netværk af embryonic forhjerne (telencephalon) stammer fra et skib beliggende inden basalganglierne primordium og udvikler sig i form af en ordentlig gradient fra ventrale til dorsal telencephalon af embryonal dag 11 (E11) 4,5. Denne plexus af fartøjer af periventrikulær vaskulære netværk adskiller sig fra pial fartøjer baseret på oprindelse, anatomiske placering, vækstmønstre og udviklingsmæssige regulering 4,5. Retningen af ​​udbredelsen af ​​periventricular angiogenese gradient matcher telencephalic tværgående neurogenetic gradient. Inden telencephalon, periventricular angiogenese gradient og gradienten af GABA-neuroner migrerer tangentielt overlapper rumligt samt 6. Med hensyn til timing, angiogenese gradient er forud for den neurogenetic gradient og GABA neuron gradient med omkring en dag. Således periventrikulære endotelceller er rumligt og tidsligt godt positioneret til at levere kritiske stikord til at understøtte telencephalic neurogenesis ogneuronal migration 4,6. Derfor, brug af embryonale periventrikulære endotelceller i cokultur eksperimenter med neuronale forfædre og / eller neuroner ville give en mere gunstig model til at studere neurovaskulære interaktioner og udvikle nye muligheder for behandling af neurodegenerativ sygdom eller iskæmisk / traumatisk hjerneskade.

Vi understreger vigtigheden af at fjerne pial membran, ikke kun for at begrænse forurening epitelcelle men også at adskille pial endotelceller, som er molekylært og funktionelt adskilt fra endotelceller periventricular vaskulære netværk 4,6 (betegnes PVECs at skelne fra pial ECS), . Her beskriver vi den metode, som vi rutinemæssigt bruger i vores laboratorium for at opnå en rig og ren udbytte af PVECs. Disse endotelceller er fremstillet ud fra embryonale forebrains isoleret fra en enkelt timed-gravide mus. De kan udvides, videredyrkes, og frosset ned med succes til fremtidig brug.

Protocol

1.. Fremstilling af reagenser og opløsninger Coating 35 mm dyrkningsskål: Collagen Type 1 opløsning leveres som en vandig opløsning i 20 mM eddikesyre (~ 100 mg protein / hætteglas). Fortynd en passende mængde af kollagen opløsning til en fungerende koncentration på 0,01% under anvendelse af sterilt vævskulturkvalitet vand. Frakke retter med 1 ml collagen løsning for 3-4 timer ved stuetemperatur (RT) eller 37 ° C eller natten over ved 2-8 ° C. Fjern overskydende løsning fra det coatede fad og lad…

Representative Results

Den fænotypiske karakterisering af PVECs fra dag 1-12 er vist ved fasekontrast lysmikroskopi (figur 2). Cellerne er knyttet til fadet på dag 1 viser morfologi karakteristisk for celledeling (figur 2A). Mellem 5-8 dage, til PVECs overgang fra brostensbelagte spindel formet morfologi typisk for endotelceller og mere beslægtet med dets in vivo tilstand (figur 2B og 2C). Ved dag 12 den pVec kulturen opnår fuld sammenløb (Figur 2D).</st…

Discussion

PVec er er mere fysiologisk relevant end voksne hjerne endotelceller og ECS ​​fra andre væv kilder til undersøgelser, der fokuserer på neurovaskulære interaktioner og også have terapeutisk potentiale. For pVec forberedelse, er det afgørende begyndelse med dissektion at arbejde hurtigt for at opnå en god rentabilitet, idet døde celler kan binde uspecifikt til CD31 mikroperler. Desuden, hvis en enkelt cellesuspension ikke opnås før den magnetiske mærkning trin, vil dette resultere i fejlfinding, da cellekly…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af en Nationale Alliance for forskning i Skizofreni og Depression (NARSAD) Young Investigator Award og National Institutes of Health indrømmer R01NS073635 til AV.

Materials

DNase I Sigma D-4527
Collagen, Type 1 solution from rat tail Sigma C3867
DPBS Quality Biologicals 114057-131
EDTA Fisher Scientific M4055
BSA Sigma A2058
MS column Miltenyi Biotech 130-042-201
CD31 microbeads Miltenyi Biotech 130-097-418
MACS separator Miltenyi Biotech 130-042-102
MACS multi stand Miltenyi Biotech 130-042-303
Cell strainer 70 µm BD Bioscience 352350
Antibiotic and antimycotic solution Sigma A5955
FBS Sigma F4135
Collagenase/Dispase Roche 10269638001
DMEM Lonza 12-604F
35 mm culture dish BD Bioscience 353001
15 ml falcon tube BD Bioscience 352097
50 ml falcon tube BD Bioscience 352098
ECCM kit BD Bioscience 355054 Kit Includes Endothelial cell growth supplement, EGF and Soybean Trypsin Inhibitor
Endothelial Cell Growth Supplement (ECGS) BD Bioscience 354006
RBECGM Cell applications R819-500
DMEM F12 Life Technologies 10565-018
glutamax Life Technologies 305050-061
tissue culture grade water Life Technologies 15230162
0.25% Trypsin Life Technologies 15050
Soyabean trypsin inhibitor BD Bioscience 5425
Matrigel BD Bioscience 354234
Qtracker 655 Cell Labeling Kit Life Technologies Q25021
CellLight Plasma Membrane-RFP, BacMam 2.0 Life Technologies C10608
Biotinylated Isolectin B4 antibody Sigma L2140
Anti-Von Willebrand factor Sigma F3520
Anti-CD31/PECAM-1 BD Pharmingen 550274
Vectashield Hardset Mounting media with DAPI Vector Laboratories H-1500
Ketamine Butler Schein Animal Health Supply 44028
Xylazine Lloyd Laboratories 1009
Stereomicroscope Motic SMZ-168
hemocytometer Fisher Scientific 267110
inverted microscope Olympus CK-40 CK-40
Flouroscent microscope Olympus FSX-100 FSX-100
Fine forceps Roboz surgical instrument 7 inox
Fine microtip scissors Roboz surgical instrument RS5611

Riferimenti

  1. Shen, Q., S, G., et al. Endothelial cells stimulate self-renewal and expand neurogenesis of neural stem cells. Science. 304, 1338-1340 (2004).
  2. Milner, R. A novel three-dimensional system to study interactions between endothelial cells and neural cells of the developing central nervous system. BMC Neurosci. 8, 3 (2007).
  3. Rauch, M. F., Michaud, M., Xu, H., Madri, J. A., Lavik, E. B. Co-culture of primary neural progenitor and endothelial cells in a macroporous gel promotes stable vascular networks in vivo. 19, 1469-1485 (2008).
  4. Vasudevan, A., Long, J. E., Crandall, J. E., Rubenstein, J. L., Bhide, P. G. Compartment-specific transcription factors orchestrate angiogenesis gradients in the embryonic brain. Nat. Neurosci. 11, 429-439 (2008).
  5. Vasudevan, A., Bhide, P. G. Angiogenesis in the embryonic CNS: a new twist on an old tale. Cell Adh. Migr. 2, 167-169 (2008).
  6. Won, C. K., et al. Autonomous vascular networks synchronize GABA neuron migration in the embryonic forebrain. Nat. Commun. 4, 2149-2162 (2013).
  7. Dong, Q. G., et al. A general strategy for isolation of endothelial cells from murine tissues. Characterization of two endothelial cell lines from the murine lung and subcutaneous sponge implants. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 17, 1599-1604 (1997).
  8. Erblich, B., Zhu, L., Etgen, A. M., Dobrenis, K., Pollard, J. W. Absence of colony stimulation factor-1 receptor results in loss of microglia, disrupted brain development and olfactory deficits. PLoS One. 6, (2011).
  9. Wichterle, H., Garcia-Verdugo, J. M., Herrera, D. G., Alvarez-Buylla, A. Young neurons from medial ganglionic eminence disperse in adult and embryonic brain. 2, 461-466 (1999).
  10. Snapyan, M., et al. Vasculature guides migrating neuronal precursors in the adult mammalian forebrain via brain-derived neurotrophic factor signaling. J. Neurosci. 29, 4172-4188 (2009).
  11. Whitman, M. C., Fan, W., Rela, L., Rodriguez-Gil, D. J., Greer, C. A. Blood vessels form a migratory scaffold in the rostral migratory stream. J. Comp. Neurol. 516, 94-104 (2009).
check_url/it/51021?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kumar T., P., Vasudevan, A. Isolation and Culture of Endothelial Cells from the Embryonic Forebrain. J. Vis. Exp. (83), e51021, doi:10.3791/51021 (2014).

View Video