Summary

Vurdere Cell Cycle Progresjon av Neural Stem og stamceller i mus utvikling av hjernen etter Gentoksisk Stress

Published: May 07, 2014
doi:

Summary

Administrasjon av to analoger av tymidin, Edu og BrdU, i drektige mus gjør analyse av cellesyklus progresjon i nevrale og stamceller i den embryonale mus hjernen. Denne fremgangsmåten er nyttig for å bestemme effektene av genotoksiske stress, inkludert ioniserende stråling, ved utvikling av hjernen.

Abstract

Nevroner i hjernebarken er generert under hjernens utvikling fra ulike typer nevrale stamceller og stamceller (NSPC), som danner et pseudostratified epitel fôr sideventriklene av embryonale hjernen. Genotoksiske påkjenninger, slik som ioniserende stråling, har meget skadelig effekt på utviklingen av hjernen er relatert til den høye følsomheten til NSPC. Belysning av de cellulære og molekylære mekanismer som er involvert avhenger av karakteriseringen av DNA-skade responsen av disse spesielle typer av celler, noe som krever en nøyaktig metode for å bestemme NSPC progresjon gjennom cellesyklusen på det skadede vev. Her er det vist en metode basert på suksessive intraperitoneale injeksjoner av Edu og BrdU hos gravide mus og ytterligere påvisning av de to tymidinanaloger i koronale seksjoner av embryonale hjernen. Edu og BrdU begge er innlemmet i DNA av reproduserende celler under S-fasen og blir oppdaget av to forskjellige teknikker (Azide elleret spesifikt antistoff, henholdsvis), som letter deres samtidige påvisning. Edu og BrdU flekker er så bestemt for hver NSPC kjernen i funksjon av sin avstand fra ventrikkel margin i en standard regionen i rygg telencephalon. Således denne dobbeltmerking teknikken tillater å skille celler som utviklet seg gjennom cellesyklusen fra de som har aktivert en cellesyklus kontrollpunkt som fører til cellesyklusarrest i respons til DNA-skade.

Et eksempel på forsøk er presentert, i hvilket Edu ble injisert før bestråling og BrdU umiddelbart etter og analyser utført innen 4 timer etter bestråling. Denne protokollen gir en nøyaktig analyse av den akutte respons på DNA-skade NSPC som funksjon av fasen av cellesyklus ved hvilken de er blitt bestrålt. Denne metoden er lett transposable til mange andre systemer for å bestemme virkningen av en bestemt behandling på cellesyklusprogresjon i levende vev.

Introduction

Under embryonal utvikling av hjernen, er projeksjon nevroner i hjernebarken generert i ventrikkel sone, en pseudostratified epitel sammensatt av ulike typer nevrale stilk og stamceller (NSPC) som linjer sideventriklene. Blant NSPC de radiale gliaceller (RGC), som fungerer som neurale stamceller, gjennomgår interkinetic atom migrasjon (INM): de utfører mitose ved overflaten av ventrikkel-og S-fasen ved den basale grensen for den ventrikulære sone (VZ) 1, 2,3. De kan dele enten symmetrisk å generere to RGC eller asymmetrisk å generere ett RGC og en nervecelle eller et mellom stamceller (IPC) 4, 5. IPC migrere til en overliggende voksende lag som kalles subventricular sone (SVZ), der etter en siste symmetrisk divisjon genererer de to umodne projeksjon nevroner 6-8. I motsetning til RGC, trenger IPC ikke gjennomgå INM (anmeldt i 9). Nylig genererte nevroner MIGRspiste radialt langs radiale fibrene gjennom mellomliggende sone (IZ) for å nå sin endelige destinasjon i cortical plate (CP) 10, 8. Den perfekte timing av alle disse hendelsene er avgjørende for en korrekt hjernebarken. For eksempel overgangen fra proliferasjon til differensiering av nevrale stamceller populasjoner styres av G1 fase varigheten 11, 12. Forlengelsen av G1 fasen korrelerer altså med celledifferensiering.

Gentoksisk stress, for eksempel ioniserende stråling, alvorlig svekker hjernens utvikling (anmeldt i 13). Vi og andre har vist at NSPC er svært utsatt for stråling-indusert apoptose 14, 15,16. Ioniserende stråling induserer DNA dobbel tråd pauser som er den mest alvorlige skader på prolifererende celler. En viktig del av DNA Damage Response (DDR) i sykkel celler er aktiveringen av cellesyklus sjekkpunkter på G1 / S eller G2 / M overganger eller under Sfase (intra-S sjekkpunkt) 17-21. De blokkere cellesyklusprogresjon for å gi tid for DNA-skade reparasjon eller eliminering av for skadede celler. Følgelig kan celledød, så vel som forsinket cellesyklusprogresjon forandre hjernens utvikling som respons på ioniserende stråling 22-24. Det var derfor interessant å utvikle en metode for å vurdere aktivering av cellesykluskontrollpunkter i NSPC i det bestrålte mus embryonale hjernen.

Progresjonen av cellesyklusen blir rutinemessig fulgt ved hjelp av inkorporering av en analog av tymidin, 5-brom-2'-deoksyuridin (BrdU). BrdU er innlemmet i S-fasen av cellesyklusen, når DNA replikere. Anvendelse av et antistoff mot BrdU lar deretter påvisning av cellene som var i S-fasen i løpet av pulsen av BrdU.

A novel tymidin analog, 5-Ethynyl-2'-deoxyuridin (EDU) blir detektert av en fluoriserende azid. De ulike måter å oppdage Edu og B Rdu ikke kryssreagerer 25, slik at den samtidige deteksjon av begge tymidin-analoger, som er nyttig for studier av cellesyklus-progresjon. Vanligvis celler er første pulserende med Edu og deretter pulserende med BrdU, der tiden mellom begge incorporations varer par timer 25, 26. Tilsetting av BrdU i kulturmedier som inneholder Edu resulterer i fortrinnsvis innlemmelse av BrdU i DNA med utelukkelse av Edu, mens samtidig tillegg av Edu 25 med ekvimolar eller halv ekvimolart BrdU til media resultater i bare BrdU innlemmelse 27. Dette forenkler den doble etiketten protokollen ved å eliminere de vasketrinn som normalt kreves for å fjerne den første etiketten fra kulturmediene før tilsetning av den andre etiketten. Dette er også av spesiell interesse for in vivo-undersøkelse, hvor vasketrinnene er det ikke mulig å bestemme den nøyaktige timing av S-fasen inngang eller utgang av cellepopulasjonen.

t "> Nylig ble en fremgangsmåte for dobbeltpulsmerking i embryonale musehjerne ved hjelp Edu og BrdU 23, 24,22 har blitt utviklet for å analysere cellesyklusprogresjon og INM av NSPC etter in utero bestråling. Videre har det blitt demonstrert at, i løpet S-fasen, museceller replikere første de eukromatin regioner og deretter pericentric heterochromatin 28,29,30. Interessant å pericentric heterochromatin forskjellige kromosomer gruppert i interphasic kjerner danne heterochromatic foci også kjent som chromocenters og lett synlig ved DAPI flekker som lyse foci. Derfor differensial Edu og BrdU stainings av eukromatin og chromocenters hjulpet oss til å analysere mer presist S fase progresjon av NSPC.

Denne metoden tillot demonstrasjonen av den tilsynelatende mangelen på G1 / S sjekkpunkt i NSCP 22-24, noe som er ganske overraskende siden dette punktet er ment å være kritisk for genomstabilitet. Flere experimental design basert på ulike kombinasjoner av Edu og BrdU pulser har blitt brukt til å analysere cellesyklus progresjon i ventral og dorsal telencephalon. Her gis et eksempel på protokoller som tillater undersøkelse av den akutte DNA-skade av NSPC innen de første 4 timer etter in utero bestråling av E14.5 museembryoer.

Protocol

En. Animal Prosedyrer Denne protokollen er utformet i samsvar med det europeiske fellesskaps rådsdirektiv av 24 november 1986 (86/609/EØF) og er godkjent av vår institusjonelle komité for dyrevelferd (CETEA-CEA DSV IdF). Injeksjoner med Edu / BrdU og bestråling av E14.5 gravide mus (Figur 2A). Forbered en løsning av Edu på 1 mg / ml og BrdU på 5 mg / ml i PBS. Utfør en intra-peritoneal injeksjon (IP) for 100 mL av EDU-løsning ved hjelp av en 25 …

Representative Results

I eksperimentet beskrevet i figur 2, ble administrert EDU 1,5 time før bestråling og BrdU like etter bestråling. Fire typer av celler ble deretter skilles i de kortikale skiver fremstilt ved en eller fire timer etter bestråling, etter innarbeidelse av enten Edu eller BrdU, begge eller ingen (figurene 2A og 2B). Viktigere, hverken Edu nor BrdU inkorporering endret nivå av strålingsinduserte apoptose (data ikke vist). Videre er de farvemetoder tillater kun påvisnin…

Discussion

Eksperimentell design beskrevet her basert på inkorporering av Edu 1,5 time før bestråling og inkorporering av BrdU umiddelbart etter bestråling tillot demonstrasjonen som NSPCs er i stand til å aktivere S og G2 / M sjekkpunkter, men ikke G1 / S sjekkpunkt i løpet av en st hr etter en gentoksisk stress i fosterets mus hjernen. Vi utførte andre eksperimenter der Edu har blitt injisert på forskjellige tidspunkter etter bestråling og BrdU, bare en time før muse offer, slik at vi kan spesielt sette pris…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Den forskning som fører til disse resultatene har fått støtte fra EU sjuende rammeprogram (FP7/2007-2013) etter tilskuddsavtalen n ° 323267, fra Electricité de France (EDF) og fra l'Agence Nationale de la Recherche – Santé-Environnement et Santé-Travail (ANR-sest, Neurorad).

Materials

EdU Life Technologies A10044 1 mg/ml
BrdU Life Technologies B5002 5 mg/ml
IBL 637 CIS BIO International
Tissu Tek VIP Leica
Microtome Leica RM 2125 RT
Triton X-100 Sigma-Aldrich 93443
Click-iT EdU Alexa 488 imaging kit Life Technologies C10083
Anti-BrdU GE Healthcare RPN202 1/300
Goat anti mouse-Alex594 Life Technologies A11001 1/400
Fluoromount SouthernBiotech 0100-01
Polysine slide Thermo scientific J2800AMNZ
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
PBS Life Technologies 20012-068
DAPI Sigma-Aldrich D9542
Microscope BX51 Olympus
Confocal microscope SPE Leica
Prism software Graphpad Version 5.0c
Photoshop software Adobe

Riferimenti

  1. Rakic, P. Specification of cerebral cortical areas. Science. 241, 170-176 (1988).
  2. Sauer, F. Mitosis in he neural tube. J Comp Neurol. , 377-399 (1935).
  3. Taverna, E., Huttner, W. B. Neural progenitor nuclei IN motion. Neuron. 67, 906-914 (2010).
  4. Committee, B. Embryonic vertebrate central nervous system: revised terminology. Anat Rec. 166, 257-261 (1970).
  5. Bystron, I., Blakemore, C., Rakic, P. Development of the human cerebral cortex: Boulder Committee revisited. Nature Reviews. Neuroscience. 9, 110-122 (2008).
  6. Miyata, T., et al. Asymmetric production of surface-dividing and non-surface-dividing cortical progenitor cells. Development. 131, 3133-3145 (2004).
  7. Haubensak, W., Attardo, A., Denk, W., Huttner, W. B. Neurons arise in the basal neuroepithelium of the early mammalian telencephalon: a major site of neurogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 101, 3196-3201 (2004).
  8. Noctor, S. C., Martinez-Cerdeno, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases. Nat Neurosci. 7, 136-144 (2004).
  9. Merot, Y., Retaux, S., Heng, J. I. Molecular mechanisms of projection neuron production and maturation in the developing cerebral cortex. Seminars in Cell & Developmental Biology. 20, 726-734 (2009).
  10. Kriegstein, A. R., Noctor, S. C. Patterns of neuronal migration in the embryonic cortex. Trends Neurosci. 27, 392-399 (2004).
  11. Salomoni, P., Calegari, F. Cell cycle control of mammalian neural stem cells: putting a speed limit on G1. Trends Cell Biol. 20, 233-243 (2010).
  12. Calegari, F., Haubensak, W., Haffner, C., Huttner, W. B. Selective lengthening of the cell cycle in the neurogenic subpopulation of neural progenitor cells during mouse brain development. J Neurosci. 25, 6533-6538 (2005).
  13. Andres-Mach, M., Rola, R., Fike, J. R. Radiation effects on neural precursor cells in the dentate gyrus. Cell Tissue Res. 331, 251-262 (2008).
  14. Semont, A., et al. Involvement of p53 and Fas/CD95 in murine neural progenitor cell response to ionizing irradiation. Oncogene. 23, 8497-8508 (2004).
  15. Nowak, E., et al. Radiation-induced H2AX phosphorylation and neural precursor apoptosis in the developing brain of mice. Radiat Res. 165, 155-164 (2006).
  16. Gatz, S. A., et al. Requirement for DNA ligase IV during embryonic neuronal development. J Neurosci. 31, 10088-10100 (2011).
  17. Denekamp, J. Cell kinetics and radiation biology. International Journal of Radiation Biology and Related Studies in Physics, Chemistry, and Medicine. 49, 357-380 (1986).
  18. Hartwell, L. H., Weinert, T. A. Checkpoints: controls that ensure the order of cell cycle events. Science. 246, 629-634 (1989).
  19. Weinert, T. A., Hartwell, L. H. Characterization of RAD9 of Saccharomyces cerevisiae and evidence that its function acts posttranslationally in cell cycle arrest after DNA damage. Mol Cell Biol. 10, 6554-6564 (1990).
  20. Tolmach, L. J., Jones, R. W., Busse, P. M. The action of caffeine on X-irradiated HeLa cells. I. Delayed inhibition of DNA synthesis. Radiat Res. 71, 653-665 (1977).
  21. Painter, R. B., Young, B. R. Radiosensitivity in ataxia-telangiectasia: a new explanation. Proc Natl Acad Sci U S A. 77, 7315-7317 (1980).
  22. Etienne, O., Roque, T., Haton, C., Boussin, F. D. Variation of radiation-sensitivity of neural stem and progenitor cell populations within the developing mouse brain. Int J Radiat Biol. 88, 694-702 (2012).
  23. Roque, T., et al. Lack of a p21waf1/cip -dependent G1/S checkpoint in neural stem and progenitor cells after DNA damage in vivo. Stem Cells. 30, 537-547 (2012).
  24. Rousseau, L., et al. In vivo importance of homologous recombination DNA repair for mouse neural stem and progenitor cells. PLoS One. 7, 12 (2012).
  25. Bradford, J. A., Clarke, S. T. Dual-pulse labeling using 5-ethynyl-2′-deoxyuridine (EdU) and 5-bromo-2′-deoxyuridine (BrdU) in flow cytometry. Curr Protoc Cytom. , (2011).
  26. Deckbar, D., et al. The limitations of the G1-S checkpoint. Cancer Res. 70, 4412-4421 (2010).
  27. Manual, Click-iT EdU Imaging Kit. , (2011).
  28. Weidtkamp-Peters, S., Rahn, H. P., Cardoso, M. C., Hemmerich, P. Replication of centromeric heterochromatin in mouse fibroblasts takes place in early, middle, and late S phase. Histochem Cell Biol. 125, 91-102 (2006).
  29. Wu, R., Terry, A. V., Singh, P. B., Gilbert, D. M. Differential subnuclear localization and replication timing of histone H3 lysine 9 methylation states. Mol Biol Cell. 16, 2872-2881 (2005).
  30. Wu, R., Singh, P. B., Gilbert, D. M. Uncoupling global and fine-tuning replication timing determinants for mouse pericentric heterochromatin. J Cell Biol. 174, 185-194 (2006).
  31. Takahashi, T., Nowakowski, R. S., Caviness Jr, V. S. The cell cycle of the pseudostratified ventricular epithelium of the embryonic murine cerebral wall. J Neurosci. 15, 6046-6057 (1995).
  32. Tuttle, A. H., et al. Immunofluorescent detection of two thymidine analogues (CldU and IdU) in primary tissue. J Vis Exp. , (2010).
check_url/it/51209?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Etienne, O., Bery, A., Roque, T., Desmaze, C., Boussin, F. D. Assessing Cell Cycle Progression of Neural Stem and Progenitor Cells in the Mouse Developing Brain after Genotoxic Stress. J. Vis. Exp. (87), e51209, doi:10.3791/51209 (2014).

View Video