Summary

Plataforma microfluídica para medição de quimiotaxia de neutrófilos não transformados Sangue Total

Published: June 03, 2014
doi:

Summary

Este protocolo detalha um ensaio concebido para medir a quimiotaxia de neutrófilos humanos a partir de uma gota de sangue total com reprodutibilidade robusta. Esta abordagem evita a necessidade de separação de neutrófilos e requer apenas alguns minutos de ensaio tempo de preparação. O chip de microfluídica permite a medida repetida de quimiotaxia de neutrófilos ao longo do tempo em crianças ou pequenos mamíferos, onde o volume da amostra é limitado.

Abstract

Os neutrófilos desempenham um papel essencial na proteção contra infecções e seus números no sangue são freqüentemente medido na clínica. Maiores número de neutrófilos no sangue são geralmente um indicador de infecções em curso, enquanto a baixa contagem de neutrófilos são um sinal de alerta para os riscos mais elevados para infecções. Para realizar as suas funções, os neutrófilos, também tem que ser capaz de se mover de forma eficaz a partir do sangue, onde eles passam a maior parte de sua vida, para os tecidos, onde ocorrem infecções. Consequentemente, quaisquer defeitos na capacidade dos neutrófilos para migrar pode aumentar os riscos de infecções, mesmo quando os neutrófilos estão presentes em números adequados no sangue. No entanto, a medição de neutrófilos capacidade de migração na clínica é uma tarefa desafiadora, que é demorado, exige grande volume de sangue, e conhecimento especializado. Para lidar com essas limitações, nós projetamos um robusto ensaios microfluídicos para a migração de neutrófilos, o que requer uma única gota de sangue não transformados, circumvents a necessidade de separação dos neutrófilos, e é fácil de quantificar num microscópio simples. Neste ensaio, os neutrófilos migram directamente a partir da gota de sangue, através de pequenos canais, no sentido da fonte do quimioatractor. Para evitar que o fluxo granular de células vermelhas do sangue através dos mesmos canais, implementamos filtros mecânicos com ângulo direito voltas que bloquear seletivamente o avanço das células vermelhas do sangue. Nós validamos o ensaio comparando a migração de neutrófilos de gotas de sangue coletadas de punção digital e sangue venoso. Também comparamos todo estes sangue (BM) fontes com migração de neutrófilos a partir de amostras de neutrófilos purificados e encontrou velocidade consistente e direcionalidade entre as três fontes. Esta plataforma microfluídica permitirá o estudo da migração de neutrófilos humano na clínica e no ambiente de pesquisa para ajudar a avançar a nossa compreensão das funções de neutrófilos na saúde e na doença.

Introduction

Tráfico de neutrófilos desempenha um papel fundamental na determinação do progresso e resolução de muitas doenças inflamatórias, incluindo aterosclerose 1, infecção bacteriana ou sepsia 2, lesão por queimadura e 3. Por sua grande contribuição para as condições de saúde e doença, contagem de neutrófilos é parte da análise de sangue padrão muitas vezes considerado em laboratórios clínicos e de pesquisa. No entanto, apesar de ser um dos testes mais ubíquos, o valor de contagem de neutrófilos para o diagnóstico da infecção e sépsis tem sido frequentemente questionada 4. Por exemplo, um estudo de neutrófilos em pacientes com queimaduras revelou que a contagem de neutrófilos e função de migração de neutrófilos não se correlacionam; significando contar que neutrófilos por si só não é um indicador preciso do estado imunológico 3. Embora mais difícil de medir, competência funcional de neutrófilos tem sido proposta como mais valioso em uma ampla gama de condições.

t "> É importante, muitos dos defeitos de neutrófilos são transientes e não são provocados por defeitos genéticos permanentes, uma distinção que tem sido largamente ignorada na clínica até recentemente. No contexto de queimaduras, a migração de neutrófilos pode ser monitorizada durante o curso de o tratamento de um paciente como um indicador do estado inflamatório ou infecção 3. ensaios de migração tradicionais actualmente utilizados no laboratório (câmara de Boyden, Dunn câmara, ensaio micropipeta) não pode ser traduzido em um ambiente clínico porque requerem grandes volumes de sangue e pesado demorado técnicas de isolamento de neutrófilos (Tabela 1). Estes ensaios também não pode ser usado para monitorar as mudanças transitórias na quimiotaxia de neutrófilos em animais de laboratório pequenos, tais como ratos, porque o volume de sangue necessário para o isolamento de neutrófilos permite apenas um exemplo e muitas vezes até mesmo exige conjugação de sangue de vários animais para um único ensaio. Por exemplo, um estudo envolvendo mcondições ultiple e tratamentos ao longo de vários pontos temporais poderiam exigir milhares de ratos usando ensaios de quimiotaxia atuais. Isso restringe a pesquisa biológica básica que pode ser feito para compreender a complexa dinâmica da função imune no contexto de lesão, infecção ou queimar freqüentemente estudados em modelos murinos 5.

Para satisfazer a necessidade de um ensaio funcional de neutrófilos que é rápida e robusta, enquanto o volume de sangue que exige um mínimo, temos desenvolvido um dispositivo de microfluidos, que mede a quimiotaxia de neutrófilos directamente a partir de uma pequena gota de sangue completo. Sabe-se que muitos fatores em sangue total, incluindo soro 6 e 7 plaquetas, afetar a função dos neutrófilos. Por conseguinte, é benéfico que o doseamento de microfluidos sangue total minimiza o processamento da amostra para manter o microambiente in vivo dos neutrófilos ao medir variações de quimiotaxia com um ensaio in vitro 8. Esta abordagemreduz o tempo de coleta de sangue para testes de migração de neutrófilos de horas usando técnicas tradicionais, a poucos minutos (Tabela 1). A plataforma de microfluidos sangue total produz um gradiente linear quimioatractiva estável durante a duração da experiência, não tem partes móveis, e não necessita de uma fonte de pressão exterior (isto é, uma bomba de seringa). A característica-chave no desenho de conjunto do dispositivo de microfluidos de sangue é a incorporação de uma célula de sangue vermelho (RBC) pente filtração que filtra mecanicamente GVs de entrar no canal de migração do dispositivo. As voltas à direita deste pente filtração evitar a necessidade de filtração exclusão de tamanho, o que provavelmente seriam obstruídos por hemácias e, portanto, bloquear o gradiente chemoattractant de atingir os neutrófilos migram ativamente na WB. A incorporação de todo o dispositivo de microfluidos de sangue em uma placa de 12 ou 24 poços facilita o rastreio de vários mediadores de si quimiotaxia de neutrófilos humana ou murinataneamente.

Protocol

1. Fabricação de dispositivos microfluídicos Usando técnicas de fotolitografia padrão, fabricar o wafer molde mestre em uma classe de 1000 sala limpa. Padrão da primeira camada de material fotosensitivo 3 mícrons-fina à base de epóxi negativo para definir os canais de migração de acordo com as instruções do fabricante. Padrão a segunda camada de 50 mícrons de espessura para definir as câmaras de célula de carga e quimiocinas. Use o wafer padronizada para lançar dispositivos polidim…

Representative Results

O sangue (BM) ensaio quimiotaxia de neutrófilos todo foi validada medindo o acúmulo de neutrófilos para um gradiente fMLP (S1 Filme). Os resultados confirmam que os glóbulos vermelhos estão presos pelo pente filtração enquanto neutrófilos (azuis) são capazes de migrar ativamente de todo o sangue (Figura 3A e S1 Filme). O gradiente estável linear chemoattractant (verde), formado por todo o dispositivo micro sangue foi confirmado usando dextrano marcadas com FIT…

Discussion

Neste trabalho, foi desenvolvida uma plataforma microfluídica para medir quimiotaxia de neutrófilos a partir de uma gota de sangue (2 mL). A filtragem mecânica on-chip de hemácias de migração de neutrófilos ativamente contorna a necessidade de métodos complicados de separação de células, como a densidade gradientes 10, a seleção positiva 11, ou seleção negativa de 12, que são propensas a introduzir artefatos ativando neutrófilos. A filtragem mecânica de hemácias distin…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O apoio dos Institutos Nacionais de Saúde (concede GM092804, DE019938) e Shriners Hospital Queimaduras.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Device Fabrication
SU8  Microchem Y131273
Polydimethylsiloxane (PDMS) Ellsworth Adhesives Sylgard 184 1.1 lb. Kit
Standard glass slides Fisher Scientific 125495 1 X 3 inches
Glass-bottom plate MatTek P12G-1.5-14-F
Harris Uni-Core, Tip Diameter 5.0mm Ted Pella, Inc. 15081
Harris Uni-Core, Tip Diameter 1.5 mm Ted Pella, Inc. 15072
Microfluidic Assay Preparation and Analysis
Gel-loading pipet tip Fisher Scientific 02-707-139
Syringe Fisher Scientfic 309602
Blunt tip needle, 30g ½ in. Brico Medical Supply BN3005
Vacutainer, Heparin Becton Dickinson
HBSS  Sigma-Aldrich
Human serum albumin Sigma-Aldrich A5843-5G 0.2% final concentration in HBSS
Fibronectin Sigma-Aldrich F0895-1MG
fMLP Sigma-Aldrich F3506-10MG
SurgiLance safety lancet, 2.2mm depth, 22 gauge SLN240
Hoescht stain Life Technologies H3570
Positive Control 
HetaSep STEMCELL Technologies Inc. 7906
EasySep Human Neutrophil Enrichment Kit STEMCELL Technologies Inc. 19257
Equipment
Plasma Asher March Instruments P-250
Lindberg/Blue M Oven Thermo Scientific 13-258-30C
Stainless Steel Precision Tweezers Techni Tool 758TW458
Bel-Art Scienceware Chemical-Resistant Vacuum Desiccator Fisher Scientific 08-594-15A
Dataplate Digital Hot Plate Alpha Multiservices PMC 720 
Nikon TiE inverted microscope Nikon – Micro Video Instruments Inc. MEA53100
CFI Plan Fluor DL 10x na 15.2wd Objective Nikon – Micro Video Instruments Inc. MRH20101
Lumen 200 with 2 Meter Light Guide for Nikon Nikon – Micro Video Instruments Inc. 500-L200NI2
DAPI/Hoechst/AMCA Narrow Band 32mm Exciters – 25mm Emitters Chroma – Micro Video Instruments Inc. 31013v2
Retiga R 2000 cooled CCD Camera 1600×1200 pixels Qimaging – Micro Video Instruments Inc. RET-2000R-F-M-12-C

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Jones, C. N., Hoang, A. N., Dimisko, L., Hamza, B., Martel, J., Irimia, D. Microfluidic Platform for Measuring Neutrophil Chemotaxis from Unprocessed Whole Blood. J. Vis. Exp. (88), e51215, doi:10.3791/51215 (2014).

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