Summary

Effektiv Generation Menneskelig indusert pluripotent stamceller fra menneskelige somatiske celler med Sendai-virus

Published: April 23, 2014
doi:

Summary

Her presenterer vi våre etablert metode for å omprogrammere humane somatiske celler i transgene-free menneskelige iPSCs med Sendai virus, som viser konsistent utfall og forbedret effektivitet.

Abstract

For noen år siden, etablering av menneskeskapte pluripotent stamceller (iPSCs) innledet en ny æra i biomedisin. Potensielle anvendelser av humane iPSCs inkluderer modellering patogenesen av genetiske sykdommer, autolog celle behandling etter gen korreksjon, og tilpasset medikamentscreening ved å gi en kilde for pasientspesifikke og symptom relevante celler. Imidlertid er det flere hindringer å overvinne, som eliminerer resterende omprogrammering faktor transgen ekspresjon etter menneske iPSCs produksjon. Enda viktigere, kan resttransgene uttrykk i udifferensierte menneskelige iPSCs hemme riktig differensiering og villede tolkningen av sykdoms relevant in vitro fenotyper. Med denne grunn har integrering-fri og / eller i transgene-fritt menneskelig iPSCs blitt utviklet ved hjelp av flere metoder, slik som adenovirus, den piggyBac system, minicircle vektor, episomal vektor, direkte protein levering og syntetisert mRNA. Men effektiviteten av reprogramming bruker integrasjonsfrie metoder er ganske lav i de fleste tilfeller.

Her presenterer vi en metode for å isolere menneskelige iPSCs ved hjelp av Sendai-virus (RNA-virus) basert omprogrammering system. Dette omprogrammering metoden viser konsistente resultater og høy effektivitet i kostnadseffektiv måte.

Introduction

Humane embryonale stamceller (hESCs) har en evne til selv-fornyes in vitro og har pluripotency, som kan være potensielt nyttige for sykdom modellering, for drug screening, og for å utvikle cellebaserte terapier for å behandle sykdommen og vev skader. Men hESCs har en begrensning for celle erstatning terapi på grunn av immunologiske, onkologiske og etiske barrierer, og å studere sykdomsrelaterte gener, kan sykdomsspesifikke hESCs isoleres gjennom pre-implantasjon genetisk diagnose (PGD) nærmer seg, men det er fortsatt teknisk utfordrende og embryo donasjoner er ganske sjelden. Disse problemene er knyttet til fremdriften i stamcellebiologi, noe som har ført til utvikling av induserte pluripotente stamceller (hiPSCs).

Menneskelige iPSCs er genetisk omprogrammeres fra menneskelige voksne somatiske celler og havnen pluripotent stamcelle-lignende funksjoner som ligner på hESCs, noe som gjør dem en nyttig kilde for regenerativ medisin som drug oppdagelse, sykdom modellering og celleterapi i pasient-spesifikk måte 1,2.

Til nå, er det flere metoder for å generere humane iPSCs, inkludert virus-mediert (retrovirus og adenovirus) 3, ikke-virus-mediert (BAC system og vektorer transfeksjon) 4 gen transductions, og protein leveringssystemet 5-7.

Selv om en leveranse av virus-mediert gener kan sikre en viss grad av effektivitet, kunne virale vektorer forlate genetisk fotavtrykk, fordi de integrere i verts kromosomer å uttrykke omprogrammering gener på en ukontrollert måte. Selv når viral integrering av transkripsjonsfaktorer kan aktivere eller deaktivere verts gener 8, kan det føre til en uventet genetisk avvik og risiko for tumorigenesis 5,9. På den annen side ble den direkte innføring av proteiner eller RNA inn i somatiske celler rapportert, men har noen ulemper slik som arbeidskrevende, gjentas transfEL, og lavt nivå av omprogrammering 7,10. Selv episomal og ikke-integrere adenovirus, adeno-assosiert virus, og plasmidvektorer som fremdeles forholdsvis mindre effektive 11. For disse grunner, er det plausibelt å velge ikke-integrasjon omprogrammering metoder med høy effekt av iPSC generasjon og færre genetiske avvik. I denne studien bruker vi en Sendai-virus basert omprogrammering. Denne metoden er kjent for å være ikke-integrert i vertsgenomet og konsekvent produserer menneskelige iPSCs uten transgene integrasjoner.

Protocol

En. Utarbeidelse av Cell og Media (Dag 1) Kultur og utvide human fibroblast med DMEM medium inneholdende 10% FBS. Plate humane fibroblaster (figur 1) på en 24-brønn plate med en passende tetthet per brønn på dagen før transduksjon. MERK: Følgende seriefortynning anbefales (200K, 100K, 50K, 25K, 12.5K og 6.25K) fordi ulike celletyper har forskjellige vedlegg evne. Inkuber cellene for en dag i en 37 ° C, 5% CO2-inkubator, noe som sik…

Representative Results

Vanligvis infiserte fibroblaster ikke viser noen morfologiske endringer i flere dager etter Sendai virus transduksjon, men fem dager senere, begynner de å ha ulike former (figur 1). Som beskrevet i en høyre panelet på figur 1, gjør cellene ikke har typisk fibroblast morfologi lenger. De har en rund form og større kjerne enn cytoplasma. Selv når transduksjon er utført i 80% cellulær confluency, ser det ut som de er mindre konfluent i brønnen etter at de begynner å omprogrammere…

Discussion

Omprogrammering menneskelige somatiske celler til hiPSCs innehar enestående løftene i grunnleggende biologi, personlig medisin, og transplantasjon 12. Tidligere menneskelige iPSC generasjoner kreves DNA virus som har integrasjon risiko i verten genomet, noe som kan skape uønskede genetiske mutasjoner som begrenser ytterligere kliniske applikasjoner som narkotika utvikling og transplantasjon terapi 13. Med denne grunn har mange studier blitt rapportert å generere vektor-og transgene-fritt system…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke medlemmene av Lee lab for verdifulle diskusjoner om manuskriptet. Arbeid i Lee lab ble støttet med tilskudd fra Robertson Investigator Award of New York Stem Cell Foundation og fra Maryland Stem Cell Research Fund (TEDCO).

Materials

CytoTune-iPS Reprogramming Kit invitrogen A1378002
CF-6,MEFs, neomycin-resistant, mitomycin C treated  Global stem GSC-6105M  5X105/6cm or 12.5X105/24 well plate
Trypsin EDTA 0.25% Trypsin with EDTA 4Na 1X invitrogen 25200114
DMEM/F-12 medium  invitrogen 11330-032
24-well Cell Culture Plate, flat-bottom with lid BD 353935
Y-27632 TOCRIS 1254 10 uM (Stock: 10 mM)
basic fibroblast growth factor LIFE TECHNOLOGIES  PHG0263 10 ng (Stock : 100 ug)
Knock-out serum replacement Gibco 10828028
Dulbecco's Modified Eagle Medium (D-MEM, DMEM) (1X), liquid (high glucose)  invitrogen 11965118
Fetal bovine serum Thermo Scientific Fermentas SH30071.03
L-Glutamine-200 mM (100X), liquid GIBCO 25030-081 1/100
MEM Non-Essential Amino Acids Solution, 100X LIFE TECHNOLOGIES  11140050 1/100
2-Mercaptoethanol (1,000X), liquid GIBCO 21985023 1/1000
Hausser Phase Contrast Hemacytometers Hausser Scientific 02-671-54
EmbryoMax 0.1% Gelatin Solution Millipore ES-006-B
SSEA-4 DSHB MC-813-70 1/200
anti-Tra-1-81 cell signaling 4745S 1/200
mouse monoclonal Oct4 antibody Santa Cruz SC-5279 1/1000
Nanog R&D AF1997 1/1000
Alexa Flouor 488 goat anti-mouse invitrogen 948492 1/2000
DPBS (Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline), 1X without calcium & magnesium cellgro 21-031-CV
QuantiTect Reverse Transcription Kit QIAGEN 205313
PCR Master Mix [2X] Thermo Scientific Fermentas K0171
Trizol invitrogen 15596018
picking hood NuAire  NU-301 
dissecting scope  Nikon SMZ745

Riferimenti

  1. Yu, J., et al. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  2. Okita, K., Nakagawa, M., Hyenjong, H., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Generation of mouse induced pluripotent stem cells without viral vectors. Science. 322, 949-953 (2008).
  3. Zhou, W., Freed, C. R. Adenoviral gene delivery can reprogram human fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27, 2667-2674 (2009).
  4. Woltjen, K., et al. piggyBac transposition reprograms fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Nature. 458, 766-770 (2009).
  5. Okita, K., et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nature Methods. 8, 409-412 (2011).
  6. Yusa, K., Rad, R., Takeda, J., Bradley, A. Generation of transgene-free induced pluripotent mouse stem cells by the piggyBac transposon. Nature Methods. 6, 363-369 (2009).
  7. Kim, D., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins. Cell Stem Cell. 4, 472-476 (2009).
  8. Yu, J., et al. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 324, 797-801 (2009).
  9. Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells. Nature. 448, 313-317 (2007).
  10. Yoshioka, N., et al. Efficient Generation of Human iPSCs by a Synthetic Self-Replicative RNA. Cell Stem Cell. 13, 246-254 (2013).
  11. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nature Protocols. 7, 2013-2021 (2012).
  12. Fluri, D. A., et al. Derivation, expansion and differentiation of induced pluripotent stem cells in continuous suspension cultures. Nature Methods. 9, 509-516 (2012).
  13. Nakagawa, M., et al. Generation of induced pluripotent stem cells without Myc from mouse and human fibroblasts. Nature Biotechnology. 26, 101-106 (2008).
  14. Fusaki, N., Ban, H., Nishiyama, A., Saeki, K., Hasegawa, M. Efficient induction of transgene-free human pluripotent stem cells using a vector based on Sendai virus, an RNA virus that does not integrate into the host genome. P Jpn Acad B-Phys. 85, 348-362 .
  15. Silva, S. S., Rowntree, R. K., Mekhoubad, S., Lee, J. T. X-chromosome inactivation and epigenetic fluidity in human embryonic stem cells. P Natl Acad Sci USA. 105, 4820-4825 (2008).
  16. Kim, H., et al. miR-371-3 expression predicts neural differentiation propensity in human pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 8, 695-706 (2011).
check_url/it/51406?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Choi, I. Y., Lim, H., Lee, G. Efficient Generation Human Induced Pluripotent Stem Cells from Human Somatic Cells with Sendai-virus. J. Vis. Exp. (86), e51406, doi:10.3791/51406 (2014).

View Video