Summary

Isolatie van Kleine Noncoding RNA's uit humaan serum

Published: June 19, 2014
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een werkwijze voor het extraheren van kleine RNA uit menselijk serum. We hebben deze methode om microRNA kanker serum te isoleren voor gebruik in DNA arrays en ook singleplex kwantitatieve PCR. Het protocol maakt gebruik van fenol en guanidiniumthiocyanaat reagentia met modificaties van hoge kwaliteit RNA opleveren.

Abstract

De analyse van RNA en de expressie ervan is een gemeenschappelijk kenmerk in veel laboratoria. Van belang is het ontstaan ​​van kleine RNAs, zoals microRNAs, die worden aangetroffen in zoogdiercellen. Deze kleine RNA's zijn krachtige gen regelgevers beheersen van vitale routes zoals groei, ontwikkeling en dood en veel belangstelling is gericht op hun expressie in lichaamsvloeistoffen. Dit komt door de ontregeling in menselijke ziekten zoals kanker en hun mogelijke toepassing als serumbiomarkers. Echter, de analyse van miRNA expressie in serum problematisch zijn. In de meeste gevallen is de hoeveelheid serum wordt beperkt en serum bevat geringe hoeveelheden totaal RNA, waarvan slechts kleine RNAs vormen 0,4-0,5% 1. Dus de isolatie van voldoende hoeveelheden van kwaliteit RNA uit serum is een grote uitdaging voor onderzoekers vandaag. In dit technische document tonen we een werkwijze die op 400 gl menselijk serum gebruikt om voldoende RNA voor zowel DNA arrays of qPCR analyse. De eendvantages van deze werkwijze zijn de eenvoud en het vermogen om hoge kwaliteit RNA opbrengst. Het vereist geen speciale kolommen voor zuivering van kleine RNA's en maakt gebruik van algemene reagentia en hardware gevonden in gemeenschappelijke laboratoria. Onze werkwijze gebruikt een Phase Lock Gel fenol verontreiniging te elimineren terwijl tegelijkertijd de hoge kwaliteit waardoor RNA. We introduceren ook een extra stap om alle verontreinigingen verder te verwijderen tijdens de isolatie stap. Dit protocol is zeer effectief bij het isoleren van totaal RNA opbrengst tot 100 ng / ul uit serum, maar kan ook worden aangepast voor andere biologische weefsels.

Introduction

In de afgelopen jaren is er een groeiende druk om nieuwe biomarkers te ontdekken voor de vroege opsporing van ziekten bij de mens. Veel aandacht is gericht op het gebruik van kleine RNA's zoals microRNA 2 (miRNAs of miRs) als potentiële markers. Deze kleine RNAs worden aangetroffen in lichaamsvloeistoffen zoals serum en studies hebben aangetoond ze bestand tegen afbraak en stabiel zijn over een bereik van variërende omgevingsomstandigheden 3. Gezien deze kenmerken, serum of circuleren miRNAs zijn de ideale biomarker 4, 5. Momenteel zijn er twee belangrijke benaderingen voor het isoleren van kleine RNA uit biologische vloeistoffen. De eerste benadering maakt gebruik van kolommen gebaseerde technologie te binden en elueren de kleine RNAs 6, terwijl de tweede benadering gebruikt de langdurige protocol met fenol en guanidine thiocyanaat reagentia 7. We hebben een eenvoudig, effectief, kolomvrije protocol om kleine RNA te isoleren uit humaan serum ontwikkeld. Het geïsoleerde RNA is onmiddellijklijk bruikbaar in afgeleide toepassingen, met inbegrip van DNA-oligonucleotide arrays en RNA sequencing.

Dit protocol is ontwikkeld omdat we werden geconfronteerd met een aantal problemen bij het gebruik van fenol gebaseerde methoden voor het isoleren van RNA uit serum. De traditionele benadering Chomczynski wordt vaak gebruikt in de meeste laboratoria met verschillende reagentia verkrijgbaar bij de meeste commerciële verkopers. Maar gezien de grootschalige toepassing ervan, strenge richtlijnen zijn niet ontwikkeld om consequent produceren hoogwaardige RNA van lichaamsvloeistoffen, met name bloed of serum.

Veel voorkomende problemen in verband met het isoleren van RNA uit het serum onder lage opbrengsten RNA en besmetting met reagentia gebruikt tijdens de isolatie, met name fenol. Onze aanpak elimineert deze fenol verontreinigingen van hoge kwaliteit RNA voor downstream-analyse zoals kwantitatieve PCR (qPCR) en RNA sequencing. We hebben verder getest dit RNA op miRNA arrays.

Protocol

Opmerking: Human serum monsters van gezonde patiënten of patiënten met kanker werden verkregen met geïnformeerde toestemming op grond van goedgekeurde menselijke ethische protocollen van het Royal Prince Alfred Hospital van Sydney (Protocolnummer X10-0016 en HREC/10/RPAH/24) en de University of Technology, Sydney. Serummonsters werden verzameld van patiënten voor de operatie uit verschillende Sydney ziekenhuizen en in opslag bij -80 ° C. 1. Kleine RNA isolatie uit serum <p class="jove…

Representative Results

Figuur 1 toont een typische UV / Vis-spectrum van RNA geïsoleerd uit serum. Uit dit profiel hebben we vastgesteld eiwit verontreinigingen bij 280 nm met fenol en organische verontreinigingen zowel 270 nm en 230 nm respectievelijk. Residu guanidinium thiocyanaat werd waargenomen bij 260 nm. Om verontreinigingen te verminderen, een aantal optimalisatie stappen gezet naar de standaard Tri-reagens RT-LS procedure. We voegden 5 mg / ml glycogeen om zowel de totale RNA opbrengst te verhogen en te verminderen…

Discussion

De bevolking van microRNA vormt ongeveer 0,4-0,5% van het totaal RNA in het serum gevonden. Verder is er ook een hoog eiwitgehalte in humaan serum. RNA verbeteren en zowel eiwit en fenol verontreinigt hebben we de traditionele benadering Chomczynski 9 gemodificeerd met de toevoeging van verschillende stappen.

Totaal RNA werd geïsoleerd uit serum met behulp van de standaard Tri-reagens RT-LS (Molecular Research Centre) maar wanneer deze wordt uitgevoerd in ons laboratorium, deze m…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Samantha Khoury en Pamela Ajuyah worden ondersteund door de Australische Postgraduate Award. We willen ook graag de Translational Cancer Research Network, Lowy Cancer Research Centre, Universiteit van New South Wales en de noordelijke Translational Cancer Research Unit erkennen voor hun extra ondersteuning van Samantha Khoury.

Materials

Name of the Material/Equipment  Company  Catalog Number  Comments/ Description (optional) 
Tri-Reagent RT LS Molecular Research Centre, USA TR 118
RNase free H20 GIBCO Invitrogen 10977-023
Proteinase K  Finnzymes, Finland EO0491
Heavy Phaselock Tube 5PRIME 2302830 2ml capacity
DNA Lobind tube Eppendorf 0030 108.078 1.5ml capacity
Glycogen  Invitrogen, USA 10814-010 5mg/ml
RNA grade Isopropanol  Sigma Aldrich, USA I9516 100%
Refrigerated Centrifuge John Morris
Nanodrop UV-Vis spectrophotometer Thermo Fisher Scientific, USA
RNA grade Ethanol Sigma Aldrich, USA E7023 70%
Agilent 2100 Bioanalyser Agilent, USA

Riferimenti

  1. Babu, S. Monitoring extraction efficiency of small RNAs with the Agilent 2100 Bioanalyzer and the Small RNA Kit. Agilent Application Note. , (2010).
  2. Tran, N., Hutvagner, G. Biogenesis and the regulation of the maturation of miRNAs. Essays Biochem. 54, 17-28 (2013).
  3. Chim, S. S., et al. Detection and characterization of placental microRNAs in maternal plasma. Clin. Chem. 54, 482-490 (2008).
  4. Lodes, M. J., et al. Detection of cancer with serum miRNAs on an oligonucleotide microarray. PLoS One. 4, (2009).
  5. Chen, X., et al. Characterization of microRNAs in serum: a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases. Cell Res. 18, 997-1006 (2008).
  6. Burgos, K. L., et al. Identification of extracellular miRNA in human cerebrospinal fluid by next-generation sequencing. RNA. 19, 712-722 (2013).
  7. Chomczynski, P., Sacchi, N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Anal. Biochem. 162, 156-159 (1987).
  8. Zhang, X., et al. Alterations in miRNA processing and expression in pleomorphic adenomas of the salivary gland. Int. J. Cancer. 124, 2855-2863 (2009).
  9. Chomczynski, P., Sacchi, N. The single-step method of RNA isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction: twenty-something years on. Nat. Protoc. 1, 581-585 (2006).
  10. Kirschner, M. B., et al. Haemolysis during sample preparation alters microRNA content of plasma. PLoS One. 6, (2011).
  11. Murphy, N. R., Hellwig, R. J. Improved nucleic acid organic extraction through use of a unique gel barrier material. Biotechniques. 21, 934-936 (1996).
  12. Taylor, C. J., Satoor, S. N., Ranjan, A. K., Pereira e Cotta, M. V., Joglekar, M. V. A protocol for measurement of noncoding RNA in human serum. Experimental Diabetes Research. 2012, (2012).
  13. Ichikawa, M., Akiyama, H. A Combination of Extraction Reagent and DNA Microarray That Allows for the Detection of Global MiRNA Profiles from Serum/Plasma. Methods Mol. Biol. 1024, 247-253 (2013).
  14. Fromm, B., Harris, P. D., Bachmann, L. MicroRNA preparations from individual monogenean Gyrodactylus salaris-a comparison of six commercially available totalRNA extraction kits. BMC Res. Notes. 4, 217 (2011).
  15. Li, Y., Kowdley, K. V. Method for microRNA isolation from clinical serum samples. Anal. Biochem. 431, 69-75 (2012).
  16. McAlexander, M. A., Phillips, M. J., Witwer, K. W. Comparison of Methods for miRNA Extraction from Plasma and Quantitative Recovery of RNA from Cerebrospinal Fluid. Frontiers in Genetics. 4, 83 (2013).
  17. Kim, Y. K., Yeo, J., Kim, B., Ha, M., Kim, V. N. Short structured RNAs with low GC content are selectively lost during extraction from a small number of cells. Mol. Cell. 46, 893-895 (2012).
check_url/it/51443?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Khoury, S., Ajuyah, P., Tran, N. Isolation of Small Noncoding RNAs from Human Serum. J. Vis. Exp. (88), e51443, doi:10.3791/51443 (2014).

View Video