Denne protokollen beskriver en fremgangsmåte for ekstraksjon av små RNA fra humant serum. Vi har brukt denne metoden for å isolere microRNAs fra kreft serum til bruk i DNA-arrays og også singleplex kvantitativ PCR. Protokollen benytter fenol og guanidiniumtiocyanat reagenser med modifikasjoner å vike høy kvalitet RNA.
Analyse av RNA og dets ekspresjon er et vanlig trekk i mange laboratorier. Av betydning er fremveksten av små RNA som microRNAs, som finnes i pattedyrceller. Disse små RNA er potente genet regulatorer styrer vitale trasé som vekst, utvikling og død, og mye interesse har vært rettet mot deres uttrykk i kroppsvæsker. Dette er på grunn av deres feilregulering i humane sykdommer så som kreft, og deres potensielle anvendelse som serum biomarkører. Imidlertid kan analysen av miRNA ekspresjon i serum være problematisk. I de fleste tilfeller er mengden av serum er begrensende og serum inneholder lave mengder av total RNA, hvorav små RNA utgjør bare 0,4 til 0,5% 1. Således isolering av tilstrekkelige mengder av kvalitet RNA fra serum er en stor utfordring for forskere i dag. I dette teknisk papir, vi demonstrere en metode som bruker bare 400 mL av humant serum for å innhente tilstrekkelig RNA for enten DNA-matriser eller qPCR analyser. Den endvantages ved denne metoden er dens enkelhet og evne til å gi høy kvalitet RNA. Det krever ingen spesielle kolonner for rensing av små RNA og benytter generelle reagenser og maskinvare som finnes i vanlige laboratorier. Vår metode anvender en faselåst gel for å fjerne fenol forurensning mens den på samme tid gir høy kvalitet RNA. Vi introduserer også et ekstra trinn for ytterligere å fjerne alle forurensninger under isolasjonstrinnet. Denne protokollen er svært effektiv i å isolere utbytter av totale RNA på opptil 100 ng / mL av serum, men kan også tilpasses for andre biologiske vev.
I de senere årene har det vært en økende trykk for å oppdage nye biomarkører for tidlig deteksjon av menneskelige sykdommer. Mye oppmerksomhet har vært fokusert på å bruke små RNA som microRNAs 2 (mirnas eller Mirs) som potensielle markører. Disse små RNA er funnet i kroppsvæsker som serum, og studier har vist at de er motstandsdyktige mot nedbrytning, og er stabile over et område av varierende miljøforhold 3. Gitt disse funksjonene, serum eller sirkulerende mirnas er den ideelle biomarkør fire, fem. Foreløpig er det to hovedtilnærminger for isolering av små RNA fra biologiske væsker. Den første metode anvender en kolonne basert teknologi for å binde og eluere de små RNA 6, mens den andre fremgangsmåten anvender den langvarige protokoll med fenol-og guanidinium thiocyanate reagenser 7. Vi har utviklet en enkel, effektiv, kolonne frie protokollen til å isolere små RNA fra humant serum. Den isolerte RNA er umiddelbart brukbare i nedstrøms applikasjoner, inkludert DNA oligonukleotid arrays og RNA sekvensering.
Denne protokollen ble utviklet fordi vi ble konfrontert med flere problemer ved bruk av fenol-baserte metoder for å isolere RNA fra serum. Den tradisjonelle Chomczynski tilnærmingen er hyppig brukt i de fleste laboratorier med et utvalg av reagenser tilgjengelige fra de fleste kommersielle leverandørene. Men vurderer sin utbredt bruk, strenge retningslinjer har ikke blitt utviklet for å produsere konsekvent høy kvalitet RNA fra kroppsvæsker, spesielt blod eller serum.
Vanlige problemer forbundet med å isolere RNA fra serum inkluderer lav RNA avkastning og forurensning med reagenser brukt under isolasjon, spesielt fenol. Vår tilnærming eliminerer disse fenol forurensninger for å gi høy kvalitet RNA for nedstrøms analyse som kvantitativ PCR (qPCR) og RNA sekvensering. Vi har videre testet dette RNA på miRNA arrays.
Populasjonen av microRNAs utgjør omtrent 0,4 til 0,5% av det totale RNA som finnes i serum. Videre er det også et høyt proteininnhold som finnes i humant serum. For å forbedre RNA og redusere både protein-og fenol forurenser vi har modifisert den tradisjonelle Chomczynski tilnærmingen 9 med tillegg av flere trinn.
Total RNA ble isolert fra serum ved hjelp av standard Tri-Reagent RT-LS (Molecular Research Centre) men når utført i vårt laboratorium, denne metoden ga RNA i s…
The authors have nothing to disclose.
Samantha Khoury og Pamela Ajuyah støttes av den australske Graduate Award. Vi ønsker også å erkjenne Translasjons Cancer Research Network, Lowy Cancer Research Centre, University of New South Wales og Nord-translasjonell kreftforskning Enhet for deres ekstra støtte av Samantha Khoury.
Name of the Material/Equipment | Company | Catalog Number | Comments/ Description (optional) |
Tri-Reagent RT LS | Molecular Research Centre, USA | TR 118 | – |
RNase free H20 | GIBCO Invitrogen | 10977-023 | – |
Proteinase K | Finnzymes, Finland | EO0491 | – |
Heavy Phaselock Tube | 5PRIME | 2302830 | 2ml capacity |
DNA Lobind tube | Eppendorf | 0030 108.078 | 1.5ml capacity |
Glycogen | Invitrogen, USA | 10814-010 | 5mg/ml |
RNA grade Isopropanol | Sigma Aldrich, USA | I9516 | 100% |
Refrigerated Centrifuge | John Morris | – | – |
Nanodrop UV-Vis spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific, USA | – | – |
RNA grade Ethanol | Sigma Aldrich, USA | E7023 | 70% |
Agilent 2100 Bioanalyser | Agilent, USA | – | – |