Summary

Udvikling af en IFN-γ ELISpot Assay til Vurdere varicellazostervirus-specifik cellemedieret immunitet Efter navlestrengsblod transplantation

Published: July 09, 2014
doi:

Summary

Nye generationer af funktionelle assays, såsom gamma-interferon (IFN-γ) ELISpot, som opdager cytokinproduktion på enkelt celle niveau og giver både kvantitativ og kvalitativ karakterisering af T-cellereaktioner kan anvendes til at vurdere cellemedierede immunreaktioner rettet mod varicella zoster virus (VZV).

Abstract

Varicella zoster virus (VZV) er en væsentlig årsag til sygelighed og dødelighed efter navlestrengsblod transplantation (UCBT). Af denne grund er antiherpetic profylakse administreres systematisk til pædiatriske UCBT modtagerne til at forebygge komplikationer forbundet med VZV infektion, men der er ingen stærk, evidensbaseret konsensus, der definerer sin optimale varighed. Fordi T-celle medieret immunitet er ansvarlig for kontrollen af ​​VZV infektion, vurderer rekonstituering af VZV-specifikke T-celle responser efter UCBT kunne give oplysninger om, hvorvidt profylakse bør opretholdes eller kan ophøre. Til dette formål blev en VZV specifikt gamma interferon (IFN-γ) enzym-linked immunospot (ELISpot) assay udviklet til at karakterisere IFN-γ-produktion af T-lymfocytter som respons på in vitro-stimulering med bestrålede levende svækket VZV-vaccine. Denne analyse giver en hurtig, reproducerbar og følsom måling af VZV specifik cell medieret immunitet er egnet til overvågning af rekonstituering af VZV specifik immunitet i en klinisk indstilling og vurdere immunforsvar til VZV-antigener.

Introduction

Uropført i 1989 UCBT stigende grad anvendes som en del af behandlingen af forskellige neoplastiske og nonneoplastic blodsygdomme i børn 1. VZV er en cytopatisk humant alphaherpesvirus som forårsager to forskellige sygdomme, skoldkopper (efter primær infektion) og herpes zoster (efter reaktivering). Efter primær infektion, VZV fortsætter gennem hele livet af værten i læ inden sensoriske nerver af dorsalrodsganglier. En af de mest truende infektiøse komplikationer efter UCBT er forbundet med VZV 2-4. I vores kliniske center i mangel af VZV profylakse den kumulative incidens af VZV sygdom VZV sygdom efter 3 år postUCBT var 46% 2. Hos disse patienter er de novo infektion med eller reaktivering af VZV ofte forbundet med visceral formidling til det centrale nervesystem, lunger og lever 5-7. Som et resultat, acyclovir, valacyclovir eller famciclovir profylakse almindeligvis administreres til UBCT modtagere 8,9. Men denne behandlingsstrategi ikke hensyn til den beskyttende potentiale af VZV-specifikke T-lymfocytter eller kinetikken af ​​rekonstituering af VZV-specifikke T-celle-responser. Potentielle problemer i forbindelse med den stigende anvendelse af langsigtede antiherpetic profylakse omfatter a) patient overbehandling; b) udvikling af antiviral resistens 10,11; og c) forringelse af VZV specifik immun rekonstituering 12,13. Fordi påvisning af funktionelle VZV-specifikke T-lymfocytter korrelerer med tilstedeværelsen af langsigtet beskyttelse fra VZV infektion og forbedret klinisk resultat 4,14,15, overvågning cellemedieret immunrespons rettet mod VZV under transplantationen periode kan resultere i en mere rationel anvendelse af antiviral behandling ved at give læger til at skelne patienter, der vil have gavn af VZV profylakse fra dem, hvis immunsystem er i stand til at styre VZV replikation 4,13.

IFN-γ ELISpot analysen er almindeligt anvendt til overvågning celle-medierede immunreaktioner i en række forskellige eksperimentelle systemer og kliniske tilstande. Steder genereres efter spaltning af et kromogent substrat, der genererer et synligt og stabilt bundfald på stedet af reaktionen. Hver enkelt plet derved repræsenterer fodaftryk af en individuel cytokin-producerende celle. IFN-γ-ELISpot ikke kun måler evnen af de enkelte celler ex vivo til at producere IFN-γ som respons på in vitro-stimulering med dertil hørende antigen, men det giver også et estimat af frekvensen af reagerer celler i en given cellepopulation 16,17. Ud over sin høje følsomhed, IFN-γ-ELISpot er ligetil at udføre, hvilket gør dets anvendelse mulig i forbindelse med personlige kliniske protokoller formål at vejlede påbegyndelse eller ophør af antiviral behandling. Proceduren beskrevet nedenfor describes et ELISpot-assay, der er specielt designet til at detektere og måle produktionen af IFN-γ af perifert blod mononukleære celler efter in vitro stimulering med VZV afledte antigener.

Protocol

Denne forskning protokol blev godkendt af Institutional Ethics Review Board of CHU Sainte-Justine, Montreal, Quebec, Canada, hvor undersøgelsen blev gennemført. Informeret samtykke blev søgt og fået fra alle undersøgelsens deltagere, deres forældre eller værger. Alle procedurer udføres på dag 1 og 2 skal udføres under sterile forhold (dvs. under en laminar flow hætte). Standard sikkerhedsprocedurer for håndtering af humant blod, bør overholdes nøje. 1.. Coating platter <…

Representative Results

IFN-γ-ELISpot-protokollen beskrevet ovenfor blev udviklet og optimeret i vores laboratorium til måling af størrelsen og kvaliteten af cellemedierede immunreaktioner rettet mod VZV 4. Forskellige kilder til VZV-antigen kan anvendes til stimulering trin. Disse omfatter: a) kommercielt tilgængelig vaskemiddel inaktiverede uddrag fra VZV inficerede Vero-celler 18; b) puljer af overlappende syntetiske peptider fra bestemte VZV kodede proteiner, herunder IE63 15 og ORF4 19; c) l…

Discussion

Ændringer og fejlfinding: IFN-γ-ELISpot-assays er blevet anvendt til at undersøge cellemedierede immunreaktioner rettet mod en række af mikrobielle patogener, herunder human immundefekt virus type 1 (HIV-1) 24,25, hepatitis C-virus (HCV) 26, 27, og Mycobacterium tuberculosis 28,29, bare for at nævne et par stykker. Her beskrev vi udviklingen af ​​en IFN-γ ELISpot assay til måling af cellulær immunitet mod, med håbet om at definere korrelater til VZV specifik immun r…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker at takke undersøgelsens deltagere og deres forældre. Vi vil også gerne takke Dr. Rejean Lapointe (CHUM Notre-Dame, Montreal, Canada) for at få adgang til hans ELISpot læser, Dr. Lubo Alexandrov til statistisk analyse, og Denis Blais, Sandra Caron, Silvie Valois og Martine Caty for sagkyndig teknisk assistance. Støttet af tilskud fra le Fonds d'opération pour les projets de recherche Clinique et d'Evalution des teknologier (CHU Sainte-Justine) til HS og PO, ved la Fondation Centre de cancérologie Charles-Bruneau, og ved leukæmi og lymfom Society of Canada. ISF blev støttet af legater fra La Fondation CHU Sainte-Justine og le Fonds de la recherche du Québec-Santé (FRQS). AJG var modtageren af ​​stipendier fra Department of Microbiology, Infectiologist & Immunologi, Université de Montréal (Gabriel-Marquis Scholarship) FRQS, og den canadiske Institutes of Health Research (CIHR). NM blev støttet af la Fondation CHU Sainte-Justine, Cole Foundation, og FRQS.

Materials

Leucocep tube VWR 89048-936/89048-932 12 ml or 50 ml tubes may be used depending on the volume of blood. 
Ficoll-Paque GE Healthcare 17-1440-02 Protect from light.
Benzonase nuclease Novagen 70746-3 Keep at -20 C.
MultiScreenHTS-IP Filter Plate Millipore MSIPS4W10 Sterile with pore size of 0.45 µm. 
Mouse anti-human IFN-γ capture antibody BD Biosciences 551221 NIB42 clone. 
Pepmix VZV IE63  JPT Peptide Technologies PM-VZV-IE63 Dissolve contents of one vial in 40 μL of DMSO. Use within 6 months.
Biotin-conjugated anti-IFN-γ monoclonal antibody BD Biosciences 554550 4SB3 clone.
Streptavidin conjugated with alkaline phosphatase  Bio-Rad Life Science 170-3554 Dilute for use on the same day.
BCIP/NBT Bio-Rad Life Science 170-6432 Protect from light.

Riferimenti

  1. Ballen, K. K., et al. Umbilical cord blood transplantation: the first 25 years and beyond. Blood. 122 (4), 491-498 (2013).
  2. Vandenbosch, K., et al. Varicella-zoster virus disease is more frequent after cord blood than after bone marrow transplantation. Biol. Blood Marrow Transplant. 14 (8), 867-871 (2008).
  3. Barker, J. N., et al. Serious infections after unrelated donor transplantation in 136 children: impact of stem cell source. Biol. Blood Marrow Transplant. 11 (5), 362-370 (2005).
  4. Merindol, N., et al. Reconstitution of protective immune responses against cytomegalovirus and varicella zoster virus does not require disease development in pediatric recipients of umbilical cord blood transplantation. J. Immunol. 189 (10), 5016-5028 (2012).
  5. Feldman, S., et al. Varicella in children with cancer: Seventy-seven cases. Pediatrics. 56 (3), 388-397 (1975).
  6. Arvin, A. M. Varicella-Zoster virus: pathogenesis, immunity, and clinical management in hematopoietic cell transplant recipients. Biol. Blood Marrow Transplant. 6 (3), 219-230 (2000).
  7. Wiegering, V., et al. Varicella-zoster virus infections in immunocompromised patients – a single centre 6-years analysis. BMC Pediatr. 11, 31 (2011).
  8. Boeckh, M., et al. Long-term acyclovir for prevention of varicella zoster virus disease after allogeneic hematopoietic cell transplantation–a randomized double-blind placebo-controlled study. Blood. 107 (5), 1800-1805 (2006).
  9. Boeckh, M. Prevention of VZV infection in immunosuppressed patients using antiviral agents. Herpes. 13 (3), 60-65 (2006).
  10. Tomblyn, M., et al. Guidelines for preventing infectious complications among hematopoietic cell transplantation recipients: a global perspective. Biol. Blood Marrow Transplant. 15 (10), 1143-1238 (2009).
  11. Ljungman, P., et al. Long-term acyclovir prophylaxis in bone marrow transplant recipients and lymphocyte proliferation responses to herpes virus antigens in vitro. Bone Marrow Transplant. 1 (2), 185-192 (1986).
  12. Selby, P. J., et al. The prophylactic role of intravenous and long-term oral acyclovir after allogeneic bone marrow transplantation. Br. J. Cancer. 59 (3), 434-438 (1989).
  13. Distler, E., et al. Recovery of varicella-zoster virus-specific T cell immunity after T cell-depleted allogeneic transplantation requires symptomatic virus reactivation. Biol. Blood Marrow Transplant. 14 (12), 1417-1424 (2008).
  14. Levin, M. J., et al. Decline in varicella-zoster virus (VZV)-specific cell-mediated immunity with increasing age and boosting with a high-dose VZV vaccine. J. Infect. Dis. 188 (9), 1336-1344 (2003).
  15. Jones, L., et al. Phenotypic analysis of human CD4+ T cells specific for immediate-early 63 protein of varicella-zoster virus. Eur. J. Immunol. 37 (12), 3393-3403 (2007).
  16. Czerkinsky, C., et al. Reverse ELISPOT assay for clonal analysis of cytokine production. I. Enumeration of gamma-interferon-secreting cells. J. Immunol. Methods. 110 (1), 29-36 (1988).
  17. Hutchings, P. R., et al. The detection and enumeration of cytokine-secreting cells in mice and man and the clinical application of these assays. J. Immunol. Methods. 120 (1), 1-8 (1989).
  18. De Castro, N., et al. Varicella-zoster virus-specific cell-mediated immune responses in HIV-infected adults. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 27 (10), 1089-1097 (2011).
  19. Jones, L., et al. Persistent high frequencies of varicella-zoster virus ORF4 protein-specific CD4+ T cells after primary infection. J. Virol. 80 (19), 9772-9778 (2006).
  20. Malavige, G. N., et al. Viral load, clinical disease severity and cellular immune responses in primary varicella zoster virus infection in Sri Lanka. PLoS One. 3 (11), (2008).
  21. Sadaoka, K., et al. Measurement of varicella-zoster virus (VZV)-specific cell-mediated immunity: comparison between VZV skin test and interferon-gamma enzyme-linked immunospot assay. J. Infect. Dis. 198 (9), 1327-1333 (2008).
  22. Smith, J. G., et al. Development and validation of a gamma interferon ELISPOT assay for quantitation of cellular immune responses to varicella-zoster virus. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 8 (5), 871-879 (2001).
  23. Ouwendijk, W. J., et al. T-cell immunity to human alphaherpesviruses. Curr. Opin. Virol. 3 (4), 452-460 (2013).
  24. Rowland-Jones, S. L., et al. Cytotoxic T cell responses to multiple conserved HIV epitopes in HIV-resistant prostitutes in Nairobi. J. Clin. Invest. 102 (9), 1758-1765 (1998).
  25. Alter, G., et al. Human immunodeficiency virus (HIV)-specific effector CD8 T cell activity in patients with primary HIV infection. J. Infect. Dis. 185 (6), 755-765 (2002).
  26. Lechner, F., et al. Analysis of successful immune responses in persons infected with hepatitis C virus. J. Exp. Med. 191 (9), 1499-1512 (2000).
  27. Fournillier, A., et al. A heterologous prime/boost vaccination strategy enhances the immunogenicity of therapeutic vaccines for hepatitis C virus. J. Infect. Dis. 208 (6), 1008-1019 (2013).
  28. Adetifa, I. M., et al. Interferon-γ ELISPOT as a biomarker of treatment efficacy in latent tuberculosis infection: a clinical trial. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 187 (4), 439-445 (2013).
  29. Lalvani, A., Pareek, M. A 100 year update on diagnosis of tuberculosis infection. Br. Med. Bull. 93, 69-84 (2010).
  30. Berger, R., et al. A dose-response study of a live attenuated varicella-zoster virus (Oka strain) vaccine administered to adults 55 years of age and older. J. Infect. Dis. 178 Suppl. 1, (1998).
  31. Trannoy, E., et al. Vaccination of immunocompetent elderly subjects with a live attenuated Oka strain of varicella zoster virus: a randomized, controlled, dose-response trial. Vaccine. 18 (16), 1700-1706 (2000).
  32. Brunner, K. T., et al. Quantitative assay of the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Cr-labelled allogeneic target cells in vitro; inhibition by isoantibody and by drugs. Immunology. 14 (2), 181-196 (1968).
  33. Moretta, A., et al. Quantitative assessment of the pool size and subset distribution of cytolytic T lymphocytes within human resting or alloactivated peripheral blood T cell populations. J. Exp. Med. 158 (2), 571-585 (1983).
  34. Jung, T., et al. Detection of intracellular cytokines by flow cytometry. J. Immunol. Methods. 159 (1-2), 197-207 (1993).
  35. Maecker, H. T., et al. Standardization of cytokine flow cytometry assays. BMC Immunol. 6, 13 (2005).
  36. Nomura, L., et al. Standardization and optimization of multiparameter intracellular cytokine staining. Cytometry A. 73 (11), 984-991 (2008).
  37. Letsch, A., Scheibenbogen, C. Quantification and characterization of specific T-cells by antigen-specific cytokine production using ELISPOT assay or intracellular cytokine staining. Methods. 31 (2), 143-149 (2003).
  38. Merindol, N., et al. Umbilical cord blood T cells respond against the Melan-A/MART-1 tumor antigen and exhibit reduced alloreactivity as compared with adult blood-derived T cells. J. Immunol. 185 (2), 856-866 (2010).
  39. Altman, J. D., et al. Phenotypic analysis of antigen-specific T lymphocytes. Science. 274 (5284), 94-96 (1996).
  40. Scriba, T. J., et al. Ultrasensitive detection and phenotyping of CD4+ T cells with optimized HLA class II tetramer staining. J. Immunol. 175 (10), 6334-6343 (2005).
  41. Stone, J. D., et al. Interaction of streptavidin-based peptide-MHC oligomers (tetramers) with cell-surface TCRs. J. Immunol. 187 (12), 6281-6290 (2011).
  42. Pantaleo, G., et al. Evidence for rapid disappearance of initially expanded HIV-specific CD8+ T cell clones during primary HIV infection. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 94 (18), 9848-9853 (1997).
  43. Wherry, E. J. T cell exhaustion. Nat. Immunol. 12 (6), 492-499 (2011).
  44. Boulet, S., et al. A dual color ELISPOT method for the simultaneous detection of IL-2 and IFN-gamma HIV-specific immune responses. J. Immunol. Methods. 320 (1-2), 18-29 (2007).
  45. Ahlborg, N., Axelsson, B. Dual- and triple-color fluorospot. Methods Mol. Biol. 792, 77-85 (2012).
  46. Precopio, M. L., et al. Immunization with vaccinia virus induces polyfunctional and phenotypically distinctive CD8(+) T cell responses. J. Exp. Med. 204 (6), 405-1416 (2007).
  47. Sadzot-Delvaux, C., et al. Recognition of the latency-associated immediate early protein IE63 of varicella-zoster virus by human memory T lymphocytes. J. Immunol. 159 (6), 2802-2806 (1997).
  48. Malavige, G. N., et al. IE63-specific T-cell responses associate with control of subclinical varicella zoster virus reactivation in individuals with malignancies. Br. J. Cancer. 102 (4), 727-730 (2010).
check_url/it/51643?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Salem Fourati, I., Grenier, A., Jolette, É., Merindol, N., Ovetchkine, P., Soudeyns, H. Development of an IFN-γ ELISpot Assay to Assess Varicella-Zoster Virus-specific Cell-mediated Immunity Following Umbilical Cord Blood Transplantation. J. Vis. Exp. (89), e51643, doi:10.3791/51643 (2014).

View Video