Summary

Expression of rekombinant Cellulase Cel5A fra<em> Trichoderma reesei</em> I tobakksplanter

Published: June 13, 2014
doi:

Summary

Tobakksplanter ble brukt til å produsere en fungal cellulase, TrCel5A, via et transient ekspresjonssystem. Uttrykket kan bli overvåket ved hjelp av en fluoriserende fusjonsprotein, og proteinaktiviteten ble karakterisert etter ekspresjon.

Abstract

Cellulose nedbrytende enzymer, cellulaser, er mål for både forskning og industrielle interesser. Det meste av disse enzymene i vanskelige til-kultur organismer, slik som hyfer byggende fungi og anaerobe bakterier, har påskyndet ved bruk av rekombinant teknologi på dette området. Plant expression metoder er en ønskelig system for storskala produksjon av enzymer og andre industrielt nyttige proteiner. Heri er metoder for transient ekspresjon av en sopp-endoglucanase, Trichoderma reesei Cel5A, i Nicotiana tabacum demonstrert. Vellykket protein uttrykk vises, overvåket av fluorescens ved hjelp av en mCherry-enzym fusjonsprotein. I tillegg er et sett grunntester brukt til å undersøke aktiviteten til forbigående uttrykt T. reesei Cel5A, inklusive SDS-PAGE, Western blotting, zymography, så vel som fluorescens-og fargestoffbaserte substrat degradering analyser. Systemet som er beskrevet her kan brukes til å frembringe en aktiv celleulase i en kort tidsperiode, slik som å vurdere potensialet for videre produksjon i planter gjennom konstitutive eller induserbare ekspresjonssystemer.

Introduction

Nedbrytning av lignocellulose biomasse og dens konvertering til flytende drivstoff har blitt tenkt som en metode for å redusere avhengigheten av fossilt brensel. En vesentlig hinder i å etablere økonomisk gjennomfør biomasse behandlingssystemer er i enzymatisk nedbrytning av cellulose og hemicellulose en. Plant ekspresjonssystemer viser et stort potensial for produksjon av enzymer i en industriell skala. Landbruk systemer til slakteanlegg økonomisk og i volum er allerede etablert, som de har vært i tusenvis av år. Produksjonen av cellulaser i planter er ønskelig på grunn av faktorer som den enkle autohydrolysis 2, og potensialet for å maksimere bruken av lavere enzymnivåer ved å øke fordøyeligheten av plante-cellevegger en. Til slutt, plante-systemer tillater målretting av rekombinante proteiner i bestemte områder av planteceller og er i stand til å posttranslationally endre enzymer der kreves tre.

ve_content ">

Nicotiana tabacum (tobakk) er svært ofte brukt som modellorganisme for heterologe protein expression studier i planter, på grunn av sin raske vekst og biomasse akkumulering funksjoner fire. Transient ekspresjon av rekombinante proteiner er en teknikk som gjør det proteinproduksjon i korte tidsperioder 5, og samtidig opprettholde fleksibilitet med hensyn til lokalisering og dermed posttranslational modifikasjoner av de utvalgte proteiner, dvs. cellulaser. Dette muliggjør produksjon av en cellulase (r) for grunnleggende analyse, og samtidig legge forholdene til rette for ytterligere uttrykk strategier i planter. Ved hjelp av en slik forbigående uttrykk strategi, er en endoglucanase fra glycosyl hydrolase familien 5, Cel5A, avledet fra soppens verten Trichoderma reesei (Hypocrea jecorina) 6 produsert (heretter kalt TrCel5A). TrCel5A er et 42 kDa protein som er nativt glykosylert og er svært aktive i hydroylzing cellulosekjedene 7.

Den forbigående ekspresjon teknikk som er beskrevet her er basert på en forholdsvis vanlig brukt system, infiltrere anlegget blader med Agrobacteria bærer genet av interesse i en passende ekspresjonsvektor. For å muliggjøre rask analyse av vellykket i planta uttrykk, kan TrCel5A også uttrykkes som et fusjonsprotein med mCherry, en monomerisk fluorescerende protein opprinnelig stammer fra Discosoma sp. Protein DsRed 8, med ytterligere seks histidin rester (Hans-tag) smeltet til C-terminalen (TrCel5A-mCherry). Ekspresjon av det heterologe fusjonsproteinet, TrCel5A-mCherry, kan således bli overvåket i løpet av den voksende planten ved hjelp av grønt lys for å undersøke mCherry spredning. Hvis ønskelig, kan tynne snitt av plantematerialet bli undersøkt under grønt lys mikroskopisk for å etablere den spesifikke lokaliseringen av proteinet. For dette arbeidet, signal og transitte peptider ble innlemmet i konstruksjonen, for å lokalisere den heterologe protein eksport til det endoplasmatiske retikulum ni.

For å analysere aktiviteten av plante uttrykt cellulaser, inkludert TrCel5A, en rekke cellulase aktivitetstester kan kjøres. Etter ekstraksjon av den totale oppløselige planteproteiner, kan TrCel5A bli delvis renset ved anvendelse av en termisk inkubasjon teknikk. Protein størrelse er etablert ved hjelp av SDS-PAGE etterfulgt av Western blotting. Zymography kan brukes til å analysere aktivitet mot substrater, f.eks cellulose som har vært karboksy-metylert (gjør karboksymetylcellulose: CMC) for oppløseligheten 10. Cellulase, og glukosidase-aktivitet kan overvåkes ved hjelp av fluoroforen 4-methylumbelliferyl (4-MU) forbundet med β-D-cellobioside (kombinert: 4-AMS). En annen metode for å vurdere endoglucanase aktivitet involverer spektrometrisk analyse av CMC som er blitt forbundet med en azo-dye (Remazolbrilliant Blå R) 11. I tillegg kan protein-aktivitet av både endoglucanases og en rekke cellulaser overvåkes ved bruk av en sukkeranalyse test, som for eksempel p-hydroksy benzosyre-hydrazid (PAHBAH) assay 12.. Disse teknikker kan brukes til å belyse og kvantifisering av aktiviteten til uttrykt cellulase av interesse.

Protocol

En. Vekst av vill type N. tabacum Planter Å vokse N. tabacum L. cv. Petit Havana SR1 planter på jord, plassere tobakk frø på egnede potter fylt med vanlig pottejord for spiring. Etter to uker, overføre frøplanter til individuelle potter. Inkuber planter i et drivhus med konstant 22 ° C (mørketiden) eller 25 ° C (lys periode) og 70% relativ luftfuktighet. Gi belysning i en 16/8 timers lys / mørke-syklusen (f.eks Philips IP65 400 W lamper, 180 mikromol · sek -1 ?…

Representative Results

TrCel5A og TrCel5A-mCherry ble uttrykt hell i tobakksplanter bruker gående uttrykk systemet (figur 1A og 1B). Undersøkelse av uttrykket mønster av TrCel5A-mCherry fusjonsproteinet viste friske blader (figur 1C), som viste omfattende protein ekspresjon i henhold grønt lys (fig. 1D). Utvinning av de totale løselige proteiner ble utført på tobakksplanter som hadde blader som inneholdt det forbigående uttrykte TrCel5A pr…

Discussion

Rekombinant ekspresjon av cellulaser er et felt av stor interesse, på grunn av ønsket om mer effektive biobrensel produksjonssystemer en. Planter gir mange muligheter for vellykket cellulase produksjon, med funksjoner som økonomisk høsting teknikker og autohydrolysis metoder blir svært ønskelige egenskaper for storskala produksjon av biodrivstoff. Videre, bruk av forskjellige lokaliseringer for å produsere proteiner som tillater, hvis nødvendig, posttranslational modifikasjoner 20. Endre pl…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av BMBF Forschungsinitiative "Bioenergie 2021 – Forschung für die Nützung von biomasse" og Cluster of Excellence "Skreddersydde Fuels fra biomasse", som er finansiert gjennom Excellence Initiative av den tyske føderale og statlige myndigheter for å fremme vitenskap og forskning ved tyske universiteter.

Materials

4-methylumbelliferyl β-D-cellobioside SIGMA-ALDRICH M6018
Acetic acid ROTH 3738
Acetosyringon (concentrated) ROTH 6003
Antibiotic – kanamycin ROTH T832
Antibiotic – rifampicin ROTH 4163
Antibiotic – carbenicillin ROTH 6344
Antibody – rabbit anti His(6) pAb ROCKLAND 600-401-382
Antibody – goat anti rabbit AP, FC pAb DIANOVA 111-055-008
Azo-carboxymethyl cellulose MEGAZYME S-ACMC
β-cyclodextrin SIGMA-ALDRICH C4805
Calcium chloride dihydrate SIGMA-ALDRICH C5080
Carboxymethyl cellulose ROTH 3333.1
Cellulase from Trichoderma reesei ATCC 26921 SIGMA-ALDRICH C2730
Congo red SIGMA-ALDRICH 75768
Coomasie brilliant blue G 250 ROTH 9598.2
D(+)-glucose ROTH 8337
Ethanol ROTH K928
Filter paper – Rotilabo blotting paper ROTH CL67
NBT/BCIP SIGMA-ALDRICH 72091
MES buffer ROTH 4256
Methanol ROTH 8388
Sodium citrate ROTH 3580
Sodium dodecylsulfate SERVA 20765
Sodium hydroxide ROTH 6771
Soil, Einheitserde classic  PATZER GMBH
Spectrometer – Infinite M200 TECAN
Sucrose SIGMA-ALDRICH S-5390
4-Hydroxy benzhydrazide  SIGMA-ALDRICH H9882
Phosphate buffered saline ROTH 1058
UV light source – BLAK RAY UVP
Vibratome – VT1000S Leica

Riferimenti

  1. Garvey, M., Klose, H., Fischer, R., Lambertz, C., Commandeur, U. Cellulases for biomass degradation: comparing recombinant cellulase expression platforms. Trends in Biotechnology. 31, 581-593 (2013).
  2. Klose, H., Günl, M., Usadel, B., Fischer, R., Commandeur, U. Ethanol inducible expression of a mesophilic cellulase avoids adverse effects on plant development. Biotechnology for Biofuels. 6, 53 (2013).
  3. Klose, H., Röder, J., Girfoglio, M., Fischer, R., Commandeur, U. Hyperthermophilic endoglucanase for in planta lignocellulose conversion. Biotechnology for Biofuels. 5, 63 (2012).
  4. Sharma, A. K., Sharma, M. K. Plants as bioreactors: recent developments and emerging opportunities. Biotechnology Advances. 27 (6), 811-832 (2009).
  5. Tremblay, R., Wang, D., Jevnikar, A. M., Ma, S. Tobacco, a highly efficient green bioreactor for production of therapeutic proteins. Biotechnology Advances. 28 (2), 214-221 (2010).
  6. Lee, T. M., Farrow, M. F., Arnold, F. H., Mayo, S. L. A structural study of Hypocrea jecorina Cel5A. Protein Science. 20, 1935-1940 (2011).
  7. Saloheimo, M., et al. EGIII, a new endoglucanase from Trichoderma reesei: the characterization of both gene and enzyme. Gene. 63, 11-21 (1988).
  8. Davidson, M. W., Campbell, R. E. Engineered fluorescent proteins: innovations and applications. Nature Methods. 6, 713-717 (2009).
  9. Pelham, H. R. The retention signal for soluble proteins of the endoplasmic reticulum. Trends in Biochemical Sciences. 15, 483-486 (1990).
  10. Béguin, P. Detection of cellulase activity in polyacrylamide gels using Congo red-stained agar replicas. Analytical Biochemistry. 131, 333-336 (1983).
  11. Jørgensen, H., Mørkeberg, A., Krogh, K. B. R., Olsson, L. Growth and enzyme production by three Penicillium species on monosaccharides. Journal of Biotechnology. 109, 295-299 (2004).
  12. Lever, M. A new reaction for colorimetric determination of carbohydrates. Analytical Biochemistry. 47, 273-279 (1972).
  13. Maclean, J., et al. Optimization of human papillomavirus type 16 (HPV-16) L1 expression in plants: comparison of the suitability of different HPV-16 L1 gene variants and different cell-compartment localization. Journal of General Virology. 88, 1460-1469 (2007).
  14. Munro, S., Pelham, H. R. A C-terminal signal prevents secretion of luminal ER proteins. Cell. 48, 899-907 (1987).
  15. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  16. Burnette, W. N. “Western Blotting”: Electrophoretic transfer of proteins from sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels to unmodified nitrocellulose and radiographic detection with antibody and radioiodinated protein A. Analytical Biochemistry. 112, 195-203 (1981).
  17. Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. Elelctrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets – procedure and some applications. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76, 4350-4354 (1979).
  18. Blake, M. S., Johnston, K. H., Russell-Jones, G. J., Gotschlich, E. C. A rapid, sensitive method for detection of alkaline phosphatase-conjugated anti-antibody on Western blots. Analytical Biochemistry. 136, 175-179 (1984).
  19. Yamamoto, E., Yamaguchi, S., Nagamune, T. Effect of β-cyclodextrin on the renaturation of enzymes after sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide gel electrophoresis. Analytical Biochemistry. 381, 273-275 (2008).
  20. Fischer, R., Vaquero-Martin, C., Sack, M., Drossard, J., Emans, N., Commandeur, U. Towards molecular farming in the future: transient protein expression in plants. Biotechnology and Applied Biochemistry. 30 (2), 113-116 (1999).
  21. Sammond, D. W., et al. Cellulase linkers are optimized based on domain type and function: Insights from sequence analysis, biophysical measurements, and molecular simulation. PLoS One. 7, (2012).
  22. Boonvitthya, N., Bozonnet, S., Burapatana, V., O’Donohue, M. J., Chulalaksananukul, W. Comparison of the heterologous expression of Trichoderma reesei endoglucanase II and cellobiohydrolase II in the yeasts Pichia pastoris and Yarrowia lipolytica. Molecular Biotechnology. 54, 158-169 (2013).
check_url/it/51711?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Garvey, M., Klinger, J., Klose, H., Fischer, R., Commandeur, U. Expression of Recombinant Cellulase Cel5A from Trichoderma reesei in Tobacco Plants. J. Vis. Exp. (88), e51711, doi:10.3791/51711 (2014).

View Video