Summary

Array comparative genomic hybridisatie (Array CGH) voor detectie van genomische kopij Varianten

Published: February 21, 2015
doi:

Summary

Array CGH voor de detectie van genomische kopij varianten heeft G-gestreepte karyotype analyse vervangen. Dit artikel beschrijft de technologie en de toepassing ervan in een diagnostische dienst laboratorium.

Abstract

Array CGH for the detection of genomic copy number variants has replaced G-banded karyotype analysis. This paper describes the technology and its application in a clinical diagnostic service laboratory. DNA extracted from a patient’s sample (blood, saliva or other tissue types) is labeled with a fluorochrome (either cyanine 5 or cyanine 3). A reference DNA sample is labeled with the opposite fluorochrome. There follows a cleanup step to remove unincorporated nucleotides before the labeled DNAs are mixed and resuspended in a hybridization buffer and applied to an array comprising ~60,000 oligonucleotide probes from loci across the genome, with high probe density in clinically important areas. Following hybridization, the arrays are washed, then scanned and the resulting images are analyzed to measure the red and green fluorescence for each probe. Software is used to assess the quality of each probe measurement, calculate the ratio of red to green fluorescence and detect potential copy number variants.

Introduction

Het is vele jaren bekend dat deleties of extra exemplaren van chromosomale segmenten veroorzaken verstandelijke beperking, dysmorfie en congentical misvormingen, en in sommige gevallen leiden tot genetische syndromen 1. Echter, de enige technologie beschikbaar tot het midden van de jaren 2000 voor het genoom-brede detectie van deze veranderingen was G-gestreepte chromosoom analyse, die een resolutie van rond 5-10Mb heeft, afhankelijk van de regio en de aard van de onbalans, en dat kan niet detecteren abnormale chromosomen waar materiaal is vervangen door een gebied van een ander chromosoom met hetzelfde bandenpatroon. Bijkomende cytogenetische technieken zoals fluorescentie in situ hybridisatie en multiplex ligatie-specifieke probe versterking zijn beschikbaar voor de ondervraging van specifieke loci geweest, in de gevallen van vermoedelijke specifieke syndromatische onbalans, maar het was niet tot de invoering van de array-comparatieve genomische hybridisatie (array CGH) in routine klinische diagnostische service 2-5 dat genoom-brede detectie van copy number varianten (CNV) en werd het mogelijk op een sterk verhoogde resolutie (meestal rond de 120kb). Klinische servicewerkzaamheden naast studies hebben aangetoond dat CNV sommige gebieden zijn wijdverspreid in de normale populatie 6-7, terwijl andere CNV eerder detecteerbaar zijn verbonden neurodisabilities zoals autisme en epilepsie 8-11.

De in dit document beschreven protocol wordt gebruikt in onze Britse National Health Service (NHS) klinisch diagnostisch laboratorium; we gebruiken roman hybridisatie strategieën, batch testen en robotica om de kosten in deze staat gefinancierde dienst te minimaliseren.

Vóór het protocol hieronder dient hoogwaardige DNA worden geëxtraheerd uit het geschikte uitgangsmateriaal, gewoonlijk bloed, gekweekte cellen of weefselmonsters. Spectrofotometrie kan worden gebruikt om te worden gemeten (moet> 50 ng / ul) en controleer 260: 280 absorptie verhoudingen (moeten be 1.8-2.0). Gel electroforese kan worden gebruikt om te controleren dat het DNA van hoog molecuulgewicht zonder significante afbraak.

Dit protocol is ontworpen voor een hogere doorvoersnelheid laboratoria die zijn labelen 96 monsters per run met behulp van geautomatiseerde liquid handling robotica. Het kan echter worden aangepast voor lagere doorvoer labs zonder automatisering.

Protocol

1. Bij de etikettering Reactie Vóór, pre-aliquot cyanine 3 en 5 gelabeld dUTPs, ongelabelde nucleotiden en willekeurige primers gebruikt bij de concentraties producent aanbevolen in 96-well platen en bewaar bij -20 C gebruiksklaar. Voor de toepassing van dit protocol, portie 10,5 ul van de juiste gelabeld dUTP en 10,5 ul ongelabelde nucleotiden en random primers aan elk putje. Ontdooi de kant-en-klare 96-well plaat nucleotiden en primers bij 4 ° C gedurende 1 uur, beschermd tegen licht. …

Representative Results

Elke probe op een matrix gehybridiseerd wordt gevisualiseerd als een mengsel van rode en groene fluorochromen (zie figuur 1). De verhouding van rood naar groen fluorescent signaal voor elke probe wordt gekwantificeerd door de scanner en de bijbehorende software uitzet deze als log2 afstemmen op hun genomische positie en gebieden identificeert die buiten ingestelde grenzen. De resulterende array sporen laten interpretatie van de regio's geïdentificeerd als genomically onevenwichtig. Bijvoorbeeld, he…

Discussion

Array CGH zal niet evenwichtig herschikkingen of ploidie afwijkingen zoals triploïdie detecteren. Bovendien kunnen lage niveau mozaïek onevenwichtigheden niet worden gedetecteerd. Echter, array CGH heeft een hogere resolutie voor CNV detectie dan G-gestreepte chromosoom analyse die het heeft vervangen in veel cytogenetica laboratoria. Daarom is de huidige gouden standaard voor genoom-brede CNV detectie. Zij kan worden vervangen door next-generation sequencing technologie in de toekomst, maar op dit moment, de kosten e…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have no acknowledgements.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
CGH microarray 8 x 60K Agilent G4126
Array CGH wash buffers Agilent 5188-5226
Array CGH hybridisation buffer Agilent 5188-5380
Minelute purification kit Qiagen 28006
Array CGH labelling kit Enzo ENZ-42672-0000

Riferimenti

  1. Miller, D. T., et al. Consensus statement: chromosomal microarray is a first-tier clinical diagnostic test for individuals with developmental disabilities or congenital anomalies. Am. J. Hum. Genet. 86, 749-764 (2010).
  2. Ahn, J. W., et al. Array CGH as a first line diagnostic test in place of karyotyping for postnatal referrals – results from four years’ clinical application for over 8,700 patients. Mol. Cytogenet. 6 (16), 1755-8166 (2013).
  3. Ahn, J. W., et al. Validation and implementation of array comparative genomic hybridisation as a first line test in place of postnatal karyotyping for genome imbalance. Mol. Cytogenet. 3 (9), 1755-8166 (2010).
  4. Beaudet, A. L. The utility of chromosomal microarray analysis in developmental and behavioral pediatrics. Child Dev. 84, 121-132 (2013).
  5. Park, S. J., et al. Clinical implementation of whole-genome array CGH as a first-tier test in 5080 pre and postnatal cases. Mol. Cytogenet. 4, 12 (2011).
  6. Iafrate, A. J., et al. Detection of large-scale variation in the human genome. Nat. Genet. 36, 949-951 (2004).
  7. Redon, R., et al. Global variation in copy number in the human genome. Nature. 444, 444-454 (2006).
  8. Cafferkey, M., Ahn, J. W., Flinter, F., Ogilvie, C. Phenotypic features in patients with 15q11.2(BP1-BP2) deletion: Further delineation of an emerging syndrome. Am. J. Med. Genet. A. 164, 1916-1922 (2014).
  9. Molin, A. M., et al. A novel microdeletion syndrome at 3q13.31 characterised by developmental delay, postnatal overgrowth, hypoplastic male genitals, and characteristic facial features. J. Med. Genet. 49, 104-109 (2012).
  10. Tropeano, M., et al. Male-biased autosomal effect of 16p13.11 copy number variation in neurodevelopmental disorders. PLoS One. 8, e61365 (2013).
  11. Bon, B. W., et al. Further delineation of the 15q13 microdeletion and duplication syndromes: a clinical spectrum varying from non-pathogenic to a severe outcome. J. Med. Genet. 46, 511-523 (2009).
check_url/it/51718?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Ahn, J. W., Coldwell, M., Bint, S., Mackie Ogilvie, C. Array Comparative Genomic Hybridization (Array CGH) for Detection of Genomic Copy Number Variants. J. Vis. Exp. (96), e51718, doi:10.3791/51718 (2015).

View Video