Summary

La synthèse in vitro de l'ARNm modifié pour l'induction de l'expression des protéines dans les cellules humaines

Published: November 13, 2014
doi:

Summary

Dans cet article, vidéo, on décrit la synthèse in vitro de l'ARNm modifié pour l'induction de l'expression des protéines dans les cellules.

Abstract

La fourniture exogène d'un ARN messager codant synthétique (ARNm) pour l'induction de la synthèse des protéines dans les cellules souhaitées a un potentiel énorme dans les domaines de la médecine régénérative, la biologie de la cellule de base, le traitement de maladies, et la reprogrammation de cellules. Ici, nous décrivons une étape par étape de protocole pour la production de l'ARNm modifié avec un potentiel d'activation immunitaire réduite et une meilleure stabilité, le contrôle de la qualité de l'ARNm produit, la transfection de cellules avec de l'ARNm et de la vérification de l'expression de la protéine induite par cytométrie en flux. Jusqu'à 3 jours après une seule transfection avec eGFP ARNm, les cellules HEK 293 transfectées produisent eGFP. Dans cet article, la vidéo, la synthèse de l'ARNm eGFP est décrite à titre d'exemple. Cependant, la procédure peut être appliquée à la production de l'ARNm d'autres souhaités. Utilisation de la synthèse de l'ARNm modifié, les cellules peuvent être amenés à exprimer transitoirement les protéines désirées, dont ils ne seraient normalement pas exprimer.

Introduction

Dans les cellules, la transcription de l'ARN messager (ARNm) et la traduction de l'ARNm en suivant protéines désirées assurer le bon fonctionnement des cellules. Troubles génétiques héréditaires ou acquis peuvent conduire à la synthèse insuffisante et dysfonctionnel de protéines et provoquer des maladies graves. Ainsi, une nouvelle approche thérapeutique pour induire la production de protéines manquantes ou défectueuses est exogène de la livraison synthétique modifié ARNm dans des cellules, qui code pour la protéine désirée. Ainsi, les cellules sont déclenchées à synthétiser des protéines fonctionnelles, dont ils ne peuvent normalement pas produire ou seraient naturellement pas besoin. En utilisant cette approche, des troubles génétiques peuvent être corrigés par introduction de l'ARNm qui code pour la protéine défectueuse ou manquante 1. Le traitement de l'ARNm peut également être utilisé pour la vaccination de synthétiser des antigènes protéiques qui sont exprimés par les cellules tumorales ou de pathogènes. De ce fait, le système immunitaire de l'hôte peut être activé afin d'éliminer efficacement les cellules tumorales ou prévenir infections 2,3. En outre, ces dernières années, l'ARNm a été utilisée avec succès pour générer des cellules souches pluripotentes induites (CISP). A cet effet, les fibroblastes ont été transfectées avec des ARNm pour induire l'expression de facteurs de reprogrammation 4-6 et pour les convertir en iPSCs avec un énorme potentiel en médecine régénératrice.

Auparavant, l'utilisation de l'ARNm conventionnel a été associée à une faible stabilité et une forte immunogénicité. Ainsi, les applications cliniques des ARNm conventionnelles ont été limitées. Toutefois, le remplacement de la cytidine et l'uridine par la 5-méthylcytidine et pseudouridine intérieur de la molécule d'ARNm en Kariko et collègues rendu des molécules d'ARNm stables dans les fluides biologiques et de réduire considérablement l'activation immunitaire 10.7, ce qui permet maintenant l'applicabilité clinique de l'ARNm modifiés.

Utilisation ARNm modifiés produits par synthèse, les transcriptions de gènes souhaités peuvent être livrés temporairement in vivo 11ou in vitro pour induire l'expression de la protéine. L'ARNm est traduit introduit dans des conditions physiologiques par la machinerie de traduction cellulaire. En raison de l'absence d'intégration dans le génome de la cellule hôte par rapport à des vecteurs viraux pour la thérapie génique, le risque d'oncogenèse est empêché 12,13. Ainsi, la thérapie utilisant de l'ARNm synthétique modifié ira mieux acceptation clinique à l'avenir.

Ici, nous décrivons un protocole détaillé pour la production de l'ARNm modifié (figure 1), la transfection de cellules avec l'ARNm et de l'évaluation de l'expression des protéines dans les cellules transfectées.

Protocol

1. Augmentation de plasmides contenant nécessité de classer les séquences d'ADN (CDS) Préchauffer milieu SOC, qui est inclus dans le kit de transformation, à la température ambiante et les plaques de gélose LB contenant 100 ug / ml d'ampicilline à 37 ° C. Équilibrer le bain d'eau à 42 ° C. Décongelez un flacon de composant chimique E. coli sur la glace. Ajouter 1-5 ul du plasmide (10 pg à 100 ng) contenant les CDS dans le flacon de composant chimique …

Representative Results

Utilisation d'un plasmide pcDNA 3.3 contenant les CDS de la EGFP, la synthèse de l'ARNm modifié eGFP a été établie (figure 1). Après insert amplification par PCR et poly T-tailing, une bande claire avec une longueur d'environ 1100 pb est détecté (Figure 2). L'augmentation du temps de IVT augmenté le rendement de l'ARNm (Figure 3). Après l'IVT, une bande d'ARNm clair avec une longueur d'environ 1100 pb a été détecté, ce qui c…

Discussion

La thérapie ARNm a un énorme potentiel dans le domaine de la médecine régénérative, le traitement des maladies et la vaccination. Dans cette vidéo, nous démontrons la production d'un ARNm modifié stabilisée pour l'induction de l'expression des protéines dans les cellules. En utilisant ce protocole, d'autres ARNm souhaités peuvent être générés. La synthèse in vitro de l'ARNm modifié permet la transfection de cellules avec des ARNm désirées pour induire l'expression de …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce projet a été financé par le Fonds social européen dans le Bade-Wurtemberg, Allemagne.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cell culture
DMEM, high glucose PAA E15-009
FBS Life Technologies 10500
Penicillin/Streptomycin  PAA P11-010 100x
L-glutamine  PAA M11-004 200 mM
DPBS without calcium and magnesium  PAA E15-002
0.04% Trypsin / 0.03% EDTA  Promocell C-41020
TNS Promocell C-41120 Trypsin Neutralizing Solution, 0.05% trypsin inhibitor in 0.1% BSA
HEK-293 cells ATCC CRL-1573
Consumables
Tissue culture plates, 12-well  Corning 3512
Cell culture flask (75 cm2 Corning 430641
DNase-and RNase-free 1.5 ml sterile microcentrifuge tubes  Eppendorf 0030 121.589 Safe-Lock, Biopur
15 ml conical tubes  greiner bio-one 188271
PCR clean and sterile epT.I.P.S. dualfilter pipette tips  Eppendorf 10 µl: 022491202,    100 µl: 022491237, 1000 µl: 022491253
Cryovial greiner bio-one 122279-128 Cryo.s 
14 ml polypropylene round bottom tube for bacterial culture  BD Falcon 352059
Plasmid amplification and purification
pcDNA 3.3_eGFP Plasmid  Addgene 26822
One Shot Top10 chemically component Escherichia coli  Invitrogen C4040-10
Sterile water (Ampuwa) Fresenius Kabi 1636071
LB medium (Luria/Miller)  Carl Roth X968.1 Dissolve 25 g l-1 in sterile water.
LB agar (Luria/Miller)  Carl Roth X969.1 Dissolve 40 g l-1 in sterile water.
Ampicillin Ready Made Solution Sigma Aldrich A5354 100 mg/ml 
Glycerol Sigma Aldrich G2025
QIAprep Spin Miniprep Kit  Qiagen 27104
mRNA production
HotStar HiFidelity Polymerase Kit  Qiagen 202602
QIAquick PCR Purification Kit  Qiagen 28106
MEGAscript T7 Kit  Life Technologies AM1334
5-Methylcytidine-5´-triphosphate  Trilink N1014 5-Methyl-CTP
Pseudouridine-5´-triphosphate  Trilink N1019 Pseudo-UTP
3´-O-Me-m7G(5´)ppp(5`)G RNA cap structure analog  New England Biolabs S1411L
RiboLock RNase Inhibitor Thermo Scientific EO0381 40 U/µl 
TURBO DNase Life Technologies AM1334 2 U/µl (from MEGAscript T7 Kit)
Antarctic phosphatase  New England Biolabs MO289S
RNeasy mini kit  Qiagen 74104
RNaseZap solution  Life Technologies AM9780
Transfection
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent  Invitrogen 11668-019 Cationic lipid transfection reagent
Opti-MEM I Reduced Serum Media  Invitrogen 11058-021 Improved Minimal Essential Medium (MEM) with  reduced Fetal Bovine Serum (FBS) supplementation 
Gel electrophoresis
Agarose Sigma-Aldrich A9539
Gelred Nucleic Acid Gel Stain Biotium 41003 10,000x in water 
peqGOLD Range Mix DNA-Ladder  Peqlab 25-2210
0.5-10 kb RNA Ladder  Invitrogen 15623-200
1x TBE buffer
Flow cytometry analyses
CellFIX (1x) BD Biosciences 340181 10x concentrate 
Primer for insert amplification and         poly (T) tail PCR
Forward Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´-TTGGACCCTCGTACAGAAGCTAATACG-3´
Reverse Primer (HPLC-grade) 10 µM Ella Biotech 5´- T120-CTTCCTACTCAGGCTTTATTCAAAGACCA-3´
Equipment
Cell incubator Binder CO2 (5%) and O2 (20%) 
CASY cell counter  Schärfe System
Sterile workbench  BDK Luft-und Reinraumtecknik GmbH
Bacterial incubator  Incutec
Water bath
ScanDrop spectrophotometer  Analytic Jena
PCR thermocycler  Eppendorf
Microcentrifuge Eppendorf
Vortex peqlab
Thermomixer Eppendorf
Gel apparatus for electrophoresis  Bio-Rad
Gel documentation system  Bio-Rad
FACScan System  BD Biosciences
Fluorescence microscope  Nikon
Phase-contrast microscope  Zeiss

Riferimenti

  1. Bangel-Ruland, N., et al. CFTR-mRNA delivery: a novel alternative for cystic fibrosis "gene therapy". The journal of gene medicine. , (2013).
  2. Benteyn, D., et al. Design of an Optimized Wilms" Tumor 1 (WT1) mRNA Construct for Enhanced WT1 Expression and Improved Immunogenicity In Vitro and In Vivo. Molecular therapy Nucleic acids. 2, 134 (2013).
  3. Petsch, B., et al. Protective efficacy of in vitro synthesized, specific mRNA vaccines against influenza A virus infection. Nature. 30, 1210-1216 (2012).
  4. Mandal, P. K., Rossi, D. J. Reprogramming human fibroblasts to pluripotency using modified mRNA. Nature protocols. 8, 568-582 (2013).
  5. Warren, L., et al. Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA. Cell stem cell. 7, 618-630 (2010).
  6. Yakubov, E., Rechavi, G., Rozenblatt, S., Givol, D. Reprogramming of human fibroblasts to pluripotent stem cells using mRNA of four transcription factors. Biochemical and biophysical research communications. 394, 189-193 (2010).
  7. Anderson, B. R., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA enhances translation by diminishing PKR activation. Nucleic acids research. 38, 5884-5892 (2010).
  8. Kariko, K., Buckstein, M., Ni, H., Weissman, D. Suppression of RNA recognition by Toll-like receptors: the impact of nucleoside modification and the evolutionary origin of RNA. Immunity. 23, 165-175 (2005).
  9. Kariko, K., et al. Incorporation of pseudouridine into mRNA yields superior nonimmunogenic vector with increased translational capacity and biological stability. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1833-1840 (2008).
  10. Kariko, K., Weissman, D. Naturally occurring nucleoside modifications suppress the immunostimulatory activity of RNA: implication for therapeutic RNA development. Current opinion in drug discovery & development. 10, 523-532 (2007).
  11. Kormann, M. S., et al. Expression of therapeutic proteins after delivery of chemically modified mRNA in mice. Nature biotechnology. 29, 154-157 (2011).
  12. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Insertional oncogenesis in 4 patients after retrovirus-mediated gene therapy of SCID-X1. The Journal of clinical investigation. 118, 3132-3142 (2008).
  13. Hacein-Bey-Abina, S., et al. Efficacy of gene therapy for X-linked severe combined immunodeficiency. The New England journal of medicine. 363, 355-364 (2010).
  14. Avci-Adali, M., et al. Optimized conditions for successful transfection of human endothelial cells with in vitro synthesized and modified mRNA for induction of protein expression. Journal of biological engineering. 8, 8 (2014).
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Citazione di questo articolo
Avci-Adali, M., Behring, A., Steinle, H., Keller, T., Krajeweski, S., Schlensak, C., Wendel, H. P. In Vitro Synthesis of Modified mRNA for Induction of Protein Expression in Human Cells. J. Vis. Exp. (93), e51943, doi:10.3791/51943 (2014).

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