Summary

Simultane Quantifizierung von T-Zell-Rezeptor-Excision Kreis (TRECs) und K-Löschen Rekombination Excision Kreis (KRECs) durch Echtzeit-PCR

Published: December 06, 2014
doi:

Summary

Here, we describe a method for simultaneous quantification of T-cell receptor excision circles (TRECs) and K-deleting recombination excision circles (KRECs). The TREC/KREC assay can be used as marker of thymic and bone marrow output.

Abstract

T-cell receptor excision circles (TRECs) and K-deleting recombination excision circles (KRECs) are circularized DNA elements formed during recombination process that creates T- and B-cell receptors. Because TRECs and KRECs are unable to replicate, they are diluted after each cell division, and therefore persist in the cell. Their quantity in peripheral blood can be considered as an estimation of thymic and bone marrow output. By combining well established and commonly used TREC assay with a modified version of KREC assay, we have developed a duplex quantitative real-time PCR that allows quantification of both newly-produced T and B lymphocytes in a single assay. The number of TRECs and KRECs are obtained using a standard curve prepared by serially diluting TREC and KREC signal joints cloned in a bacterial plasmid, together with a fragment of T-cell receptor alpha constant gene that serves as reference gene. Results are reported as number of TRECs and KRECs/106 cells or per ml of blood. The quantification of these DNA fragments have been proven useful for monitoring immune reconstitution following bone marrow transplantation in both children and adults, for improved characterization of immune deficiencies, or for better understanding of certain immunomodulating drug activity.

Introduction

T-Zell-Rezeptor-Exzision Kreise (TRECs) und K-Löschen Rekombination Exzision Kreise (KRECs) sind kleine zirkularisiertes DNA-Elemente, die in einem Anteil von T- und B-Zellen jeweils während einer genomischen DNA-Rekombination herausgeschnitten werden, was zu dem Bildung einer stark diversifizierten Repertoire von T- und B-Zell-Rezeptoren. Sie haben keine Funktion, sondern weil sie stabil sind und nicht repliziert werden, werden sie nach jeder Zellteilung verdünnt, also nur in einer der beiden Tochter persistierenden Zellen. Daher kann ihre Ebenen im peripheren Blut als eine Schätzung des Thymus und des Knochenmarks Ausgangs angenommen werden.

Während die TREC-Assay wurde weitgehend in den letzten 15 Jahren um das Ausmaß der Thymusfunktion auszuwerten, um 1 der KREC Assay, die ursprünglich entwickelt wurde B-Zell-Proliferation und ihren Beitrag zur B-Zell-Homöostase in Gesundheit und Krankheit, 2 messen wurde erst kürzlich als Marker der Knochen m vorgeschlagenenarrow Ausgang. 3,4 Hier beschreiben wir die Methode, die wir für die simultane Quantifizierung von beiden TRECs und KRECs entwickelt. 4

Mit diesem kombinierten Verfahren wird die Variabilität DNA Quantifizierung durch Echtzeit-PCR verbunden sind, durch die Verwendung eines einzigartigen Standardkurve durch Verdünnung einer Triple-Insert enthaltenden Plasmid Fragmente TRECs, KRECs und T-Zell-Rezeptor alpha konstant erhalten (TCRAC) beseitigt Gens in einer 1: 1: 1-Verhältnis. Dies ermöglicht eine genauere Bewertung der TREC und KREC Kopienzahl. Ferner ist die gleichzeitige Quantifizierung der zwei Targets in der gleichen Reaktion ermöglicht Reagenz Kostenreduzierung.

Die vorgeschlagene TREC / KREC Assay kann nützlich sein, um das Ausmaß der T- und B-Zell-neo-Produktion bei Kindern oder Erwachsenen mit schwerer kombinierter Immundefizienz (SCID), 4 Common Variable Immunodeficiency, 5 Autoimmunerkrankungen, 6-8 und HIV-Infektionen zu messen Ferner. 9 zeigt, kann es verwendet werdenÜberwachung der Immun Erholung nach Transplantation hämatopoetischer Stammzellen, 10 Enzymersatz, 11 und antivirale 9 oder immunmodulierende Therapien. 6-8 Schließlich weil SCID-Patienten werden mit TREC-Test trotz der zugrunde liegenden genetischen Defekte erkannt und Agammaglobulinämie Patienten können mit KREC Quantifizierung identifiziert werden Die TREC / KREC Assay kann auch verwendet werden, um Immun in Neugeborenen-Screening-Programme erkennen. 12 In diesem Fall muss der Test an aus kleinen Flecken von Blut abgetupft extrahierten DNA durchgeführt, und auf Filterpapier getrocknet werden müssen hochempfindlich und spezifisch für sein die Zielkrankheiten, sowie in hohem Maße reproduzierbar und kostengünstig.

Die Einführung KREC Quantifizierung im Test sollte Aufführungen von Neugeborenen-Screening für Immundefekte, die routinemäßig in den einigen Teilen der USA (WI, MA, CA) seit 2008 durchgeführt wurde, zu verbessern, wenn Wisconsin war der erste, um introduce die Analyse TRECs in seiner postnatale Screening-Programm. 13

Protocol

HINWEIS: Ethics Statement: Dieses Protokoll folgt den Richtlinien unserer Institution, die Spedali Civili di Brescia 1. Herstellung eines "Triple-Insert" Plasmid Auswahl und Herstellung von geeigneten Ausgangsmaterials: Abrufen einer Zellen enthaltenden Probe, sehr wahrscheinlich TRECs und KRECs durch PCR nachweisbar sind, wie peripherem Blut eines jungen, gesunden Individuum in EDTA-Röhrchen entnommen. HINWEIS: Ursprünglich haben wir die Methode mit Th…

Representative Results

Der Test wurde in einer repräsentativen Stichprobe von 87 gesunden Kontrollpersonen durchgeführt: 42 Kinder im Alter von 0 bis 17 (männlich / weiblich: 25/17) und 45 Erwachsene im Alter von 24 bis 60 (Männer / Frauen: 29/16). Die Ergebnisse wurden als TRECs und KRECs pro 10 6 PBMC und dann den TRECs und KRECs pro ml Blut wurden berechnet erhalten. Die Anzahl der TRECs nimmt mit dem Alter aufgrund Thymusinvolution, 4 insbesondere in einem sehr scharfen Mode 0-3 – 4 J…

Discussion

TREC and KREC quantification can be considered a good estimate of recent thymic and bone marrow output provided that some caveats are taken into account. Even though an absolute quantification method employing standard curve requires more reagents and more space on the real-time PCR reaction plate, it ensures highly accurate quantitative results because unknown sample quantities are interpolated from standard curves built upon known amounts of starting material. Moreover this method is better fitted to detect low amount …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have no acknowledgements.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Histopaque-1077 Sigma Aldrich SRL 10771-500 ML density gradient separation method
QIAamp DNA Blood Mini Kit (250) QIAGEN 51106 DNA extraction
Unmodified DNA Oligonucleotides HPSF 0.01 mmol Eurofins MWG Operon/Carlo Erba Reagents S.r.l  Resuspend the lyophilized product to 100 picmol/µl
AmpliTaq DNA Polymerase: including 10x Buffer II and 25mM MgCl2 Applied Biosystems/Life-Technologies N8080156
GeneAmp dNTP Blend (100 mM) Applied Biosystems/Life-Technologies N8080261
TOPO TA Cloning Kit for Subcloning Invitrogen/Life-Technologies K4500-01
XL1-Blue Subcloning Grade Competent Cells Stratagene 200130
PureYield Plasmid Miniprep System Promega A1223
SpeI 500U New England Biolabs R0133S
HindIII-HF 10,000 U New England Biolabs R3104S
PureYield Plasmid Midiprep System Promega A2492
XhoI 5,000 U New England Biolabs R0146S
TRIS Utrapure Sigma Aldrich SRL T1503
EDTA Sigma Aldrich SRL E5134
TE buffer (1 mM TRIS and 0.1 mM EDTA)
TaqMan Universal PCR Master Mix Applied Biosystems/Life-Technologies 4364338
Dual labeled probes HPLC 0.01 mmol Eurofins MWG Operon/Carlo Erba Reagents S.r.l  Resuspend the lyophilized product to 100 picmol/µl
NanoDrop 2000c spectrophotometer ThermoFisher
Applied Biosystems 2720 Thermal Cycler Applied Biosystems/Life-Technologies 4359659
Fast 7500 Real-Time PCR system Applied Biosystems/Life-Technologies
SDS Sequence Detection Software 1.4 Applied Biosystems/Life-Technologies

Riferimenti

  1. Douek, D. C., et al. Changes in thymic function with age and during the treatment of HIV infection. Nature. 396 (6712), 690-695 (1998).
  2. Zelm, M. C., Szczepanski, T., van der Burg, M., van Dongen, J. J. M. Replication history of B lymphocytes reveals homeostatic proliferation and extensive antigen-induced B cell expansion. J. Exp. Med. 204 (3), 645-655 (2007).
  3. Fronkova, E., et al. B-cell reconstitution after allogeneic SCT impairs minimal residual disease monitoring in children with ALL. Bone Marrow Transplant. 42 (3), 187-196 (2008).
  4. Sottini, A., et al. Simultaneous quantification of recent thymic T-cell and bone marrow B-cell emigrants in patients with primary immunodeficiency undergone to stem cell transplantation. Clin. Immunol. 136 (2), 217-227 (2010).
  5. Serana, F., et al. Thymic and bone marrow output in patients with common variable immunodeficiency. J. Clin. Immunol. 31 (4), 540-549 (2011).
  6. Zanotti, C., et al. Opposite effects of interferon-β on new B and T cell release from production sites in sclerosis. J. Neuroimmunol. 240-241, 147-150 (2011).
  7. Zanotti, C., et al. Peripheral accumulation of newly produced T and B lymphocytes in natalizumab-treated multiple sclerosis patients. Clin. Immunol. 145 (1), 19-26 (2012).
  8. Sottini, A., et al. Pre-existing T- and B-cell defects in one progressive multifocal leukoencephalopathy patient. PLoS One. 7, e34493 (2012).
  9. Quiros-Roldan, E., et al. Effects of combined antiretroviral therapy on B- and T-cell release from production sites in long-term treated HIV-1+ patients. J. Transl. Med. 10, 94 (2012).
  10. Mensen, A., et al. Utilization of TREC and KREC quantification for the monitoring of early T- and B-cell neogenesis in adult patients after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. J. Transl. Med. 11, 188 (2013).
  11. Serana, F., et al. The different extent of B and T cell immune reconstitution after hematopoietic stem cell transplantation and enzyme replacement therapies in SCID patients with adenosine deaminase deficiency. J. Immunol. 185 (12), 7713-7722 (2010).
  12. Borte, S., et al. Neonatal screening for severe primary immunodeficiency diseases using high-throughput triplex real-time PCR. Blood. 119 (11), 2552-2555 (2012).
  13. Baker, M. W., et al. Implementing routine testing for severe combined immunodeficiency within Wisconsin’s newborn screening program. Public Health Rep. 125 (2), 88-95 (2010).
  14. Lorenzi, A. R., et al. Determination of thymic function directly from peripheral blood: a validated modification to an established method. J. Immunol. Meth. 339 (2), 185-194 (2008).
  15. De Boer, R. J., Perelson, A. S. Quantifying T lymphocyte turnover. J. Theor. Biol. 327, 45-87 (2013).
check_url/it/52184?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Sottini, A., Serana, F., Bertoli, D., Chiarini, M., Valotti, M., Vaglio Tessitore, M., Imberti, L. Simultaneous Quantification of T-Cell Receptor Excision Circles (TRECs) and K-Deleting Recombination Excision Circles (KRECs) by Real-time PCR. J. Vis. Exp. (94), e52184, doi:10.3791/52184 (2014).

View Video