Summary

Ansikts Nerve aksotomi i Mus: En modell for å studere Motoneuron Response to Injury

Published: February 23, 2015
doi:

Summary

We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques.

Abstract

Målet med dette kirurgisk protokollen er å eksponere ansikts nerve, som innervates ansiktsmuskulaturen, på sin exit fra stylomastoid foramen og klippet ut eller knuse det å indusere perifer nerveskade. Fordeler med denne operasjonen er dens enkelhet, høy reproduserbarhet, og mangel på effekt på vitale funksjoner eller mobilitet fra den etterfølgende ansiktslammelse, noe som resulterer i et relativt mildt kirurgisk resultat sammenlignet med andre nerveskade modeller. En stor fordel med å bruke en hjernenerve skade modellen er at de motoneurons bor i en relativt homogen befolkning i ansikts motor kjernen i pons, forenkle studiet av motoneuron celle organer. På grunn av den symmetriske natur av ansiktsnerven innervasjon og mangel på krysstale mellom ansiktsmotor kjerner, kan operasjonen utføres ensidig med unaxotomized side tjener som en sammenkoblet intern kontroll. En rekke analyser kan utføres postoperativt for å asseser den fysiologiske reaksjon, detaljer som er utenfor omfanget av denne artikkelen. For eksempel, kan utvinning av muskelfunksjon tjene som en markør for atferds reinnervation, eller motoneurons kan kvantifiseres for å måle celleoverlevelse. I tillegg kan de motoneurons være nøyaktig fanget ved hjelp av laser mikrodisseksjon for molekylær analyse. Fordi ansikts nerve aksotomi er minimal invasiv og godt tolerert, kan det brukes på et bredt utvalg av genmodifiserte mus. Dessuten kan denne operasjonen modellen brukes til å analysere effektiviteten av perifer nerveskade behandlinger. Ansikts nerve skade gir et middel for å undersøke ikke bare motoneurons, men også svarene i det sentrale og perifere glial mikromiljøet, immunsystem, og målet muskulatur. Ansikts nerve skade modellen er en allment akseptert perifer nerveskade modell som fungerer som et kraftig verktøy for å studere nerveskader og regenerering.

Introduction

Mange perifer nerveskade modeller finnes, men en som skiller seg ut for studiet av motoneurons er ansikts nerve aksotomi modell. Ansikts nerve, også kjent som hjernenerve VII, stammer i pons og innervates muskler av ansiktsuttrykk 1,2. I denne kirurgiske protokollen, er ansikts nerve eksponert på sin exit fra stylomastoid foramen og klippet ut eller knust. Alvorlighetsgraden av nerveskade kan klassifiseres følge Sunderland tre klassifikasjoner, som skiller skaden basert på intactness av aksoner, endoneurium, perineurium, og epineurium, som er bindevev lag som sekvensielt festes rundt aksonet bunter. I knusningsskade (axonotmesis), blir aksoner kuttet, men perineurium og epineurium er bevart. Komplett funksjonell utvinning fra ansikts nerve knuse skjer i ca 11 dager fordi intakt nerve slire fungerer som en kanal innen hvilke aksoner regrow 4,5. PåDerimot, i snitt skade (neurotmesis), aksonene og alle 3 bindevevslagene adskilles, og hele distale nerve må vokse for å gjenopprette muskulatur innervasjon. Kirurgisk gjeninnkobling av epineurium er ofte utført i menneskelige pasienter med nervetran skader, men gjenopprettings utfall er sjelden optimal. Videre studier er nødvendig for å forstå hvorfor nerve unnlater å vokse til målet, og hvilke behandlinger kan anvendes for å forbedre og påskynde regenerativ prosess.

Det er mange fordeler med å studere nerveskader ved bruk av ansiktsnerven aksotomi modell. Først er det ansikts nerve aksotomi prosedyre rask, enkel og svært reproduserbare; og den resulterende lammelse av ansiktsmusklene ikke påvirker vitale funksjoner og er godt tolerert av dyret. Fordi dette er en hjernenerve skade modell, studere motoneuron celle organer er forenklet fordi motoneurons bor i en relativt homogen befolkning i the ansikts motor kjernen i pons. Befolkningen skiller basert på subnuclear mønster i ansikts motor kjernen, som det er syv subnuclei hver enkelt å innervating en bestemt gruppe av muskler, så subnuclear forskjeller i respons til aksotomi kan påvirke resultatene 2,6,7.

En stor fordel med ansikts nerve skade modellen er at den unaxotomized side kan tjene som en sammenkoblet internkontroll fordi nerve innervasjon er svært symmetrisk og det er ingen crosstalk mellom ansiktsmotorkjerner 8. En annen fordel ved å bruke denne kirurgisk metode er mangelen på direkte skade på sentralnervesystemet eller forstyrrelse av blod-hjerne barrieren 9. Komplikasjoner som store blødninger og infeksjoner er sjeldne med denne prosedyren.

En rekke analyser kan utføres for å evaluere den fysiologiske reaksjon på nerveskade. Gjenvinningen av øyet blunkerefleksen og whisker-aktivitet kan anvendes som et adferdsmål på funksjonell utvinning 10,11. Videoopptak av vibrissae aktivitet er i dag den mest effektive metoden for å oppdage utvinning av ansikts nerve innervation 12,13. Etter eutanasi, kan histologisk analyse av hjernestammen utføres på motoneuron cellelegemer innen ansiktsmotorkjernen. Ansikts motor kjernen er delt inn i sju subnuclei, hver spesifikke for visse ansiktsmusklene, slik at for differensial undersøkelse av svarene til skade 2,6. Ansikts motoneurons kan telles for å kvantifisere celleoverlevelse, eller immunohistokjemi kan brukes til å identifisere biomarkører og spesifikke cellepopulasjoner 14. Ansikts motor kjernen kan være nøyaktig microdissected ved hjelp av laserskanning for molekylær analyse av cellulær respons til nerveskade 15,16. Konsekvenser av ansikts nerve aksotomi kan analyseres i motor cortex 17,18. Dessuten kan nerve bli dissekert å studere Wallerian degenerasjon 19 elleraxon regenerering 20, og musklene kan fjernes for å studere nevromuskulære veikryss 21. Ansikts nerve aksotomi kan også brukes til å studere vedlagte sentrale og perifere gliaceller 22, målrette muskulatur 21, og immunsystemet 23. Selv om mye er oppnådd i å studere ansiktsnerven aksotomi modell 24, er videre studier av perifer nerveskade nødvendig fordi nerveskader er et betydelig problem for pasienter og nåværende behandlinger mislykkes å produsere optimale resultater. Denne modellen er et kraftig verktøy for å undersøke den fysiologiske respons på nerveskade og analysere effektiviteten av nerve regenerering terapier.

Protocol

Alle prosedyrer som utføres er godkjent av Indiana University School of Medicine Institutional Animal Care og bruk komité og følge National Institute of Health retningslinjer. 1. kirurgisk teknikk Opprettholde aseptisk teknikk under denne prosedyren ved hjelp av sterile hansker, instrumenter og en steril kirurgiske feltet ifølge NIH retningslinjer 25. Sterilisere verktøy før du starter kirurgi ved autoklave dem (se tabell over spesifikke reagenser / Utstyr…

Representative Results

Etter at ansiktsnerven aksotomi utføres, skjer motoneuron tap som et resultat av skaden. Motoneuron overlevelse etter skade avhenger av mange variabler, som kjønn, alder på dyr på tidspunktet for kirurgi, og den endepunktet hvor de motoneuron teller er ferdig, og Moran og Graeber gjennomgang 24 og Jinno og Yamada gjennomgang 22 både oppsummere motoneuron overlevelsesdata. Vanligvis ca 86% av motoneurons overleve 28 dager etter aksotomi 14,15,26. Kinetikken for motoneuron tap er besk…

Discussion

The critical step for this protocol is positioning the mouse properly before surgery is begun. If the mouse is not lying flat on its side, the ear is not taped at the correct angle, or the incision is made in an incorrect location, then finding the facial nerve becomes much more difficult. When this technique is mastered, surgeries will take only minutes per mouse.

Either sutures, glue, or wound clips can be used to close the wound. Wound clips are preferred because of the small size of incis…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work is funded by NIH RO1 NS 40433 (K.J.J.).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Stereo Microscope Leica M60
Labeling tape Fisher Scientific 15-952
Vannas-Tübingen Spring Scissors – Straight/Sharp/8.5cm/5mm cutting edge Fine Science Tools 15003-08 Sterilize before use
Dumont #5/45 Forceps – Standard tips/Angled 45°/Dumoxel/11cm Fine Science Tools 11251-35 Sterilize before use
Michel Suture Clips – 7.5mm x 1.75 mm Fine Science Tools 12040-01 Described as "wound clip" in protocol, sterilize before use
Hagenbarth Cross Action Wound Clip Applier 5" George Tiemann & Co 160-910 Used to apply wound clip, sterilize before use
Michel Suture Clip Applicator & Remover – For 7.5 mm Clips Fine Science Tools 12029-12 Used to remove wound clip
0.9% Sodium Chloride Injection, USP Hospira 0409-4888-10
Betadine, 16 oz, with dispenser Fisher Scientific 19-027132
70% Ethanol
Glass Bead Sterilizer

Riferimenti

  1. Kaufman, M., Bard, J. . The Anatomical Basis of Mouse Development. , (1999).
  2. Ashwell, K. The adult mouse facial nerve nucleus: morphology and musculotopic organization. Journal of Anatomy. 135, 531-538 (1982).
  3. Sunderland, S. A classification of peripheral nerve injuries producing loss of function. Brain : A Journal Of Neurology. 74, 491-516 (1951).
  4. Beahrs, T., Tanzer, L., Sanders, V. M., Jones, K. J. Functional recovery and facial motoneuron survival are influenced by immunodeficiency in crush-axotomized mice. Experimental Neurology. 221, 225-230 (2010).
  5. Mesnard, N. A., Haulcomb, M. M., Tanzer, L., Sanders, V., Jones, K. J. Delayed functional recovery in presymptomatic mSOD1G93A mice following facial nerve crush axotomy. Journal of Neurodegeneration & Regeneration. 4, 21-25 (2013).
  6. Komiyama, M., Shibata, H., Suzuki, T. Somatotopic representation of facial muscles within the facial nucleus of the mouse. A study using the retrograde horseradish peroxidase and cell degeneration techniques. Brain Behav Evol. 24, 144-151 (1984).
  7. Canh, M. Y., Serpe, C. J., Sanders, V., Jones, K. J. CD4(+) T cell-mediated facial motoneuron survival after injury: Distribution pattern of cell death and rescue throughout the extent of the facial motor nucleus. Journal of Neuroimmunology. 181, 93-99 (2006).
  8. Isokawa-Akesson, M., Komisaruk, B. Difference in projections to the lateral and medial facial nucleus: anatomically separate pathways for rhythmical vibrissa movement in rats. Exp Brain Res. 65, 385-398 (1987).
  9. Streit, W., Kreutzberg, G. Response of endogenous glial cells to motor neuron degeneration induced by toxic ricin. The Journal of Comparative Neurology. 268, 248-263 (1988).
  10. Serpe, C. J., Tetzlaff, J. E., Coers, S., Sanders, V., Jones, K. J. Functional recovery after facial nerve crush is delayed in severe combined immunodeficient mice. Brain, Behavior, And Immunity. 16, 808-812 (2002).
  11. Lal, D., et al. Electrical stimulation facilitates rat facial nerve recovery from a crush injury. Otolaryngology–Head And Neck Surgery. Official Journal Of American Academy Of Otolaryngology-Head And Neck Surgery. 139, 68-73 (2008).
  12. Tomov, T., et al. An Example of Neural Plasticity Evoked by Putative Behavioral Demand and Early Use of Vibrissal Hairs after Facial Nerve Transection. Experimental Neurology. 178, 207-218 (2002).
  13. Skouras, E., Angelov, D. N. Experimental studies on post-transectional facial nerve regrowth and functional recovery of paralyzed muscles of the face in rats and mice. Anatomy (International Journal of Experimental and Clinical Anatomy). 4, 1-27 (2010).
  14. Xin, J., et al. IL-10 within the CNS is necessary for CD4+ T cells to mediate neuroprotection). Brain, Behavior, And Immunity. 25, 820-829 (2011).
  15. Mesnard, N. A., Sanders, V. M., Jones, K. J. Differential gene expression in the axotomized facial motor nucleus of presymptomatic SOD1 mice. The Journal of Comparative Neurology. 519, 3488-3506 (2011).
  16. Mesnard, N. A., Alexander, T. D., Sanders, V. M., Jones, K. J. Use of laser microdissection in the investigation of facial motoneuron and neuropil molecular phenotypes after peripheral axotomy. Experimental Neurology. 225, 94-103 (2010).
  17. Franchi, G. Changes in motor representation related to facial nerve damage and regeneration in adult rats. Experimental Brain Research. 135, 53-65 (2000).
  18. Munera, A., Cuestas, D. M., Troncoso, J. Peripheral facial nerve lesions induce changes in the firing properties of primary motor cortex layer 5 pyramidal cells. Neuroscienze. 223, 140-151 (2012).
  19. Liu, L., et al. Hereditary absence of complement C5 in adult mice influences Wallerian degeneration, but not retrograde responses, following injury to peripheral nerve. Journal of the Peripheral Nervous System. 4, 123-133 (1999).
  20. Ferri, C., Moore, F., Bisby, M. Effects of facial nerve injury on mouse motoneurons lacking the p75 low-affinity neurotrophin receptor. Journal of Neurobiology. 34, 1-9 (1997).
  21. Zhou, R. Y., Xu, J., Chi, F. L., Chen, L. H., Li, S. T. Differences in sensitivity to rocuronium among orbicularis oris muscles innervated by normal or damaged facial nerves and gastrocnemius muscle innervated by somatic nerve in rats: combined morphological and functional analyses. The Laryngoscope. 122, 1831-1837 (2012).
  22. Jinno, S., Yamada, J. Using comparative anatomy in the axotomy model to identify distinct roles for microglia and astrocytes in synaptic stripping. Neuron Glia Biology. 7, 55-66 (2011).
  23. Jones, K. J., Serpe, C. J., Byram, S. C., Deboy, C. A., Sanders, V. M. Role of the immune system in the maintenance of mouse facial motoneuron viability after nerve injury. Brain, Behavior, And Immunity. 19, 12-19 (2005).
  24. Moran, L. B., Graeber, M. B. The facial nerve axotomy model. Brain research. Brain research. 44, 154-178 (2004).
  25. Council, N. R. . Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition. , (2011).
  26. Serpe, C. J., Kohm, A. P., Huppenbauer, C. B., Sanders, V., Jones, K. J. Exacerbation of Facial Motoneuron Loss after facial nerve transection in severe combined immunodeficient (scid) mice. Neuroscienze. 19, (1999).
  27. Mesnard-Hoaglin, N. A., et al. SOD1(G93A) transgenic mouse CD4(+) T cells mediate neuroprotection after facial nerve axotomy when removed from a suppressive peripheral microenvironment. Brain, Behavior, And Immunity. 40, 55-60 (2014).
  28. Wang, H., et al. Establishment and assessment of the perinatal mouse facial nerve axotomy model via a subauricular incision approach. Experimental Biology And Medicine. 237, 1249-1255 (2012).
  29. Sharma, N., Moeller, C. W., Marzo, S. J., Jones, K. J., Foecking, E. M. Combinatorial treatments enhance recovery following facial nerve crush. The Laryngoscope. 120, 1523-1530 (2010).
  30. Lieberman, D. M., Jan, T. A., Ahmad, S. O., Most, S. P. Effects of corticosteroids on functional recovery and neuron survival after facial nerve injury in mice. Archives of Facial Plastic Surgery. 13, 117-124 (2011).
  31. Serpe, C. J., Coers, S., Sanders, V. M., Jones, K. J. CD4+ T, but not CD8+ or B, lymphocytes mediate facial motoneuron survival after facial nerve transection. Brain, Behavior, And Immunity. 17, 393-402 (2003).
  32. Haulcomb, M. M., et al. Axotomy-induced target disconnection promotes an additional death mechanism involved in motoneuron degeneration in ALS transgenic mice. The Journal of Comparative Neurology. , (2014).
  33. Bauder, A. R., Ferguson, T. A. Reproducible mouse sciatic nerve crush and subsequent assessment of regeneration by whole mount muscle analysis. Journal of Visualized Experiments : JoVE. (60), (2012).
  34. Richner, M., Bjerrum, O. J., Nykjaer, A., Vaegter, C. B. The spared nerve injury (SNI) model of induced mechanical allodynia in mice. Journal of Visualized Experiments : JoVE. (54), (2011).
check_url/it/52382?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Olmstead, D. N., Mesnard-Hoaglin, N. A., Batka, R. J., Haulcomb, M. M., Miller, W. M., Jones, K. J. Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury. J. Vis. Exp. (96), e52382, doi:10.3791/52382 (2015).

View Video