Summary

腸間膜リンパダクトカニューレを挿入ラットモデル:腸のリンパ医薬品輸送の評価への応用

Published: March 06, 2015
doi:

Summary

Here we describe a technique to cannulate the mesenteric lymph duct in rats which enables quantification of lipid and drug transport via the lymphatic system following intestinal delivery. The technique can be adapted to assess mesenteric lymph concentrations and/or transport of fluid, immune cells, peptides, proteins and lipophilic molecules.

Abstract

腸のリンパ系は、流体輸送、脂質吸収および免疫機能において重要な役割を果たしている。リンパは上腸間膜リンパ管に収束リンパ管と一連のノードを経由して小腸から直接流れます。腸間膜リンパ管のカニュレーションは、このように腸から流れる腸間膜リンパの収集を可能にします。腸間膜リンパは、免疫細胞(99%リンパ球)、水性画分(流体、例えばサイトカインおよび消化管ホルモンなどのペプチドおよびタンパク質)およびリポタンパク質画分(脂質、親油性分子とアポ蛋白質)の細胞画分で構成されています。腸間膜リンパ管カニュレーションモデルは、従って、リンパ系を介して濃度および腸からの因子の範囲の輸送速度を測定するために使用することができる。別の課題に応じて、これらの要因への変更( 例えば、ダイエット、抗原、薬物)と疾病( 例えば、炎症性腸疾患、HIVは、糖尿病)は、Bもできるeが決定。関心の拡大領域は、腸脂質吸収経路に関連付ける経口投与した親油性薬物およびプロドラッグの吸収のリンパ輸送の役割である。ここでは、詳細には、腸内送達後数時間リンパ系を介して脂質および薬物輸送の速度および程度を評価することができる腸間膜リンパ管カニューレ挿入ラットモデルを記述する。この方法は、リンパ内の他のパラメータの測定に容易に適合可能である。我々は、実験の成功を確認し、得られたデータを解釈する方法に関する指示を提供するために、この複雑な外科的方法を確立する際に遭遇することが困難の詳細な説明、ならびに失敗と成功した実験からの代表的なデータを提供する。

Introduction

リンパは各小腸絨毛1内に含まれているシングルlactealsから発信一方向のプロセスを経て小腸から流れ。 Lactealsこうして流体、巨大​​分子、細胞およびリンパ形成に比較的透過性であるlactealsにこれらの要因のエントリで始まる。 lactealsの初期のリンパはその後、(求心性)のリンパ管、腸間膜リンパ節、最終的にはポスト結節(遠心性)リンパ管のシリーズを集め、リンパ微小血管のネットワークを経由して腸から流入する。ノード内では、リンパ液は交換は、血液からノードに入るノード常駐免疫細胞だけでなく、材料に発生する髄洞の一連を通過する。小腸から流れるすべてのリンパ節は、最終的には遠心性上腸間膜リンパ管、その後槽のchyliに収束する。槽のchyliもINTEST、尾末梢組織に所属リンパを収集ノミナル、肝及び腰椎地域や縦隔と体の頭蓋部分からリンパ液と一緒に胸部リンパ管を結合します。胸部リンパ管は左内頸静と鎖骨下静脈の接合部で静脈系に直接リンパ液を空にします。ここに記載されているプロトコル、上腸間膜リンパ管から直接リンパの収集を可能にし、したがって、腸のリンパ系を介して全身(一般的な)循環への腸から直接遷移する様々な要因の分析を容易にします。

腸のリンパ系に割り当てる主な生理学的機能は、体液平衡を維持するために、脂質と、親油性分子の吸収を促進するために、1適切な免疫応答を可能にするためである。腫瘍細胞およびウイルスも2-4とキーの変更は、いくつかの炎症性および代謝病態5-7にリンパ管内で発生する腸リンパ管を経由して伝播する。缶腸間膜リンパ節内を収集する腸間膜リンパ管のnulation腸リンパ管を介してバルク流体の流れの解析ならびに様々な細胞および分子の濃度および輸送速度の定量化を可能にする。様々な課題( 例えば、食事、抗原、薬物)に応答して、疾患のモデルにおけるこれらの因子の濃度または輸送に変化( 例えば、大腸炎、HIV、糖尿病)も評価することができる。それは広範囲に分析し、ここで比較することができる各リンパコンポーネントを記述することは不可能であるが、腸間膜リンパは単純化して、水性、脂質と細胞のフェーズで構成。水相中の目的の構成要素は、抗原または寛容原8などのサイトカインおよび肥満細胞メディエーター9、及びそのようなインクレチン10のような代謝性メディエーターの免疫メッセンジャーとしてのペプチドおよびタンパク質を含む。ポスト結節腸間膜リンパ節の細胞画分は、ほぼ完全に(99%以上)lymphocytの構成されていES 11。さまざまな免疫細胞(樹状細胞、肥満細胞など事前に結節腸間膜リンパ管に入りますが、ノード12内に残る。求心性リンパ節内の細胞に関心がある場合には、腸間膜リンパ節の除去を介してこれらの細胞を収集することが可能である腸間膜リンパ管12のカニューレ挿入の前に数日間ノード。このようにして、求心性および遠心性のリンパ管に直接接続され、輸入リンパリンパ細胞は、腸間膜リンパ管に直接渡す。腸リンパ管を通過する種々の免疫細胞の輸送および表現は、このように調べることができる。おそらく、これまでの腸間膜リンパを収集するために引用した最も一般的な理由は、しかし、食事性脂質および親油性分子10の腸の処理、吸収と輸送を研究することである。

摂取後、食事性脂質は、例えば、トリグリセリドからの脂肪酸とモノグリセリド、phospに(消化され脂肪酸およびリゾリン脂質、脂肪酸およびコレステロールなど )へのコレステロールエステルのholipid胆汁からの両親媒性物質の添加によって小さなミセルおよび小胞構造に腸管腔の内部に分散(リン脂質、コレステロールおよび胆汁塩)との作用膵酵素10,13。ここから彼らは腸細胞に吸収される。吸収された成分の割合は、吸収細胞(腸細胞)内のトリグリセリド、リン脂質及びコレステロールエステルを形成するために再エステル化されている。これらの再エステル化された脂質は、外因的に脂質成分および胆汁分泌、粘膜脂質プールまたは腸の血液供給13からの内因性脂質成分の摂取の組み合わせから組み立てられる。ここからエステル化脂質はどちら腸細胞内に格納されているか、一緒に様々なアポや他の親油性分子と腸のリポタンパク質(カイロミクロン、超低密度リポタンパク質(VLDL))(に組み立てる<eM>例えば、ビタミン)10,13。腸のlactealsは腸の毛細血管よりも彼らのエントリに対してより透過性であるように、腸細胞を出た後、リポタンパク質は、特に腸間膜リンパ系を介して全身循環への腸から輸送される。吸収された脂質成分の割合はまた、関連した単一の非リポ蛋白質のような毛細血管および門脈を経由して全身循環への腸から運ば14を分子ている。しかしながら、一般的に、門脈搬送経路は短く、中鎖長の脂質の吸収の唯一の重要なプレーヤーである。

腸間膜リンパの集合は、このように腸からのリポタンパク質および関連コンポーネント(脂質、親油性分子、アポ蛋白質)の輸送の評価を可能にします。リポタンパク質は、腸間膜リンパリポタンパク質は、一般に、nascenであるという利点を用いて定量し、特徴付けることができるT状態彼らは広くそのようなリポタンパク質リパーゼ15などの全身の酵素によって変更されていないため。腸間膜リンパカニューレ挿入ラットモデルは、おそらく歴史的に最も広範に腸からの脂質/リポタンパク質輸送を分析するために記載されている一方で、関心の拡大領域は、親油性薬物、プロドラッグ及び他の生体異物13,16の輸送におけるリンパ管の役割であるそのここで説明したモデルの焦点である。 17,18(例外は明らかであるが、長鎖トリグリセリドのlog P> 5と溶解度が、一般的にそれらの> 50ミリグラム/ g)を、プロドラッグ19および他の生体異物13,16は、腸リンパ管のどちらか受動的かによるへのアクセスを親油性薬物を得ることができます積極的に腸のリポタンパク質輸送経路19への統合。

ラット腸間膜リンパカニューレ挿入技術は、このように多くの用途を有する。ボールマンらは、まずtechniqを説明したモデルのバリエーションその後数が記載されているので、UEは、1948年20ラットにおける腸間膜リンパ管にカニューレを挿入する。 15を拘束したり、自由に23,24を移動しながら、ラットを様々な麻酔薬21,22、または意識的な状態で麻酔されている場合たとえば、コレクションが発生する可能性があります。 ( – 5ミリリットル/時間、典型的には0)25ラットは異なる再水和溶液と、胃、腸、又は非経口的に異なる速度で脂質および薬物製剤のような他の物質を投与することができる。いくつかの研究において、胸管ではなく、胸管は、他のリンパ節を受信すると、これは、関心の要因に応じて、小腸の通過を過大評価してもよいが、腸間膜リンパ管は、リンパ管を経由して腸からの輸送を推定するためにカニューレを挿入する地域22,26。リンパカニュレーションモデルはまた、ミニパイ、マウス15,27を含むいくつかの他の種に記載されているGS 12、28,29、30と犬31。しかし、ラットモデルは、最も広くかつ一貫して引用されている。意識25内リンパの収集に続いて、または22ラットおよびマウス15,27を麻酔腸間膜リンパ管のカニューレ挿入のための詳細なプロトコールは、以前に公開されており、興味のある読者は、これらのプロトコルを対象とする。このプロトコルは、可視化された形式で技術を実証する最初のです。

リンパカニューレラットモデルは、費用の点で大きな動物モデル、外科的および倫理的考慮事項を容易に勝る利点を有する。マウスモデルと比較すると、マウスモデルは、トランスジェニック動物27でより詳細な研究が可能になりますが、腸間膜リンパカニュレーション手術はまた、ラットで簡単です。それにもかかわらず、ラットモデル、生理学の違いに関連した特に、そのリミットextrapolatのいくつかの制限があります他の前臨床および臨床状況にイオン。高い種食品又は脂質、胆汁の流れ32を刺激するのに対し、例えば、ラット胆汁流量が一定と食物摂取と無関係である。これは、より大きな種とヒトに見られるものを反映ラットにおける代表前と食後の環境を得るための課題を作成します。現実的な人間の剤形25の投与後のリンパ輸送を評価する場合、薬物送達研究のために、より大きな種が好ましい場合がある。最近の研究では、腸間膜リンパ節中の脂質輸送速度は、種27を横切っ脂質輸送データを外挿することで、いくつかの信頼性を提供する等価質量と脂質のタイプの投与後の種(マウス、ラット、イヌ)全体で同等であることが見出された。しかし、動物の大きさ( すなわち、犬>ラット>マウス)の順にランク付けモデル親油性薬物、ハロファントリンの輸送、。スケーリング係数は、このように元に必要とされ得る他の種にラットからのリンパ薬物輸送データをtrapolate。

リンパカニュレーションモデルの制限は、一般に、リンパ管は容器33にカニューレを挿入されると、変更された圧力勾配に対して作用するので、直接リンパ管から受動リンパコレクションはリンパ流および輸送を変更することができるということである。リンパカニュレーションモデルは、技術に精通していない研究室で確立することは困難である。代替モデルは、このように記載されている。例えば、このようなリポタンパク質および親油性分子腸リンパ系を介した因子の輸送は、間接的に採血を介して研究されている。一つのこのようなモデルは、リンパ輸送ブロック34腸リポタンパク質の産生の(シクロヘキシミドを、例えば、コルヒチン、プルロニックL81)を阻害剤の存在下および非存在下での経口投与後の脂質および/ ​​または薬物の血中濃度を比較することを含む。利点血液サンプルの収集を介して間接的にリンパ輸送を定量化モデルの侵襲的手術が35を必要としないように、それは、ヒトにおけるリンパ輸送のいくつかの評価を可能にすることである。しかし、リンパ輸送の阻害剤は特異的ではないとリンパ管を介して輸送される要因は、そのような評価を複雑にし、全身循環中に希釈し、修飾されている。 インビトロ代替物も記載されている。例えば、Caco-2細胞または単離された腸細胞培養物は、より詳細にリンパ36-38に入る分子の腸分泌を研究するために利用されてきた。ヒト腸微小環境のより代表的である高度なin vitroモデルも最近39を説明した。このモデルにおいて、リンパ内皮細胞層は、リンパ管への腸からの物質の移動のより詳細な分析を可能にするのCaco-2細胞と共培養する。しかし、vitrでOセルシステムは、交換の流れを欠き、腸管腔、基礎となる血液とリンパ血管供給にすなわち相互接続を転送します。別のアプローチでは、Kassis 血管収縮、リンパ流および腸間膜リンパ管33内の蛍光脂質濃度との定量比較を可能にする、その場イメージングシステムにおけるデュアルチャネル(高速明視野ビデオおよび蛍光)を確立した。 インビトロ系における上記に対するこのモデルの利点は、リンパ管を介して免疫細胞の継代の正確な追跡を可能にすることである。質量脂質(または薬物)の絶対測定輸送は、しかしながら、まだイメージング法を使用して確立されていない。 インビトロおよびインシリコ腸リンパ管も40-42公開されているを介して特異的に親油性の薬物輸送の程度を予測することに近づく。いくつかのcは、例えば、ex vivoでの親和性プラズマキロミクロンのためのompoundsは、生体内 41 でのリンパ輸送と合理的に相関することが見出された。その後、同グループは、複数の物理化学的性質40に基づいて、カイロミクロンのための薬物親和性を予測するためにシリコモデル設立さ。ホルムらもあからさまな分子記述42に基づいて親油性化合物のリンパ輸送を予測するために、 インシリコモデル比較的複雑なを設立しました。これらのモデルは、未知の薬物のリンパ輸送の程度を予測するための有用なアプローチを提供してもよい。薬物の広い範囲で、別の研究室全体でのモデルの妥当性は、しかし、それらの精度と再現性を確認するために必要とされる。

腸間膜リンパ管のカニューレ挿入は、このように直接小腸および因子(細胞​​、タンパク質の複雑な配列の走行速度を排出リンパのコンテンツを検査する唯一の手段で残るin vivoの状況でリンパ中のペプチド、脂質、薬物)。 】ここで我々を麻酔ラットから腸間膜リンパおよび全身の血液の収集を可能にする腸間膜リンパ管と頸動脈のカニューレ挿入するためのプロトコルについて説明します。代表的なデータは、モデルが腸間膜リンパ系を介して腸からの脂質および薬物輸送を調べるために使用することができる方法を示します。これは、モデルとトラブルシューティングガイドを確立する際に遭遇することができ困難の議論が続いている。確立された後は、モデルは、腸リンパ輸送を調査するための強力なツールです。

Protocol

この原稿に記載された研究は、地元の動物倫理委員会によって承認されたと研究教育ガイドラインにおける動物の管理のためにオーストラリアとニュージーランド評議に従って行った。任意の動物手順を開始する前に、適切な許可がローカルの機関/団体を介して取得されていることを確認する。すべての動物の手術と同様に、手術は無菌条件下で、倫理的かつ成功した結果を確実にするため…

Representative Results

腸間膜リンパカニュレーションモデルを使用して、腸送達の後リンパ系を介して脂質および薬物輸送の累積範囲および速度を定量するための代表的な実験の結果を図4および図5に示す。この実験では、モデルの親油性200μgのとリン酸緩衝5 mMのタウロコール酸ナトリウムの5.6ミリリットル中に分散7.1 mgの2-モノオレイン-薬物ハロファントリンは、40mgの(5μCiの14</sup…

Discussion

ラット腸間膜リンパカニュレーションモデルは、直接リンパに腸から(例えば脂質および薬物のような)種々の細胞および分子の輸送の濃度及び割合の定量化および種々の物質の投与に応答して発生し、これらの変化(食事を可能に、抗原、薬物、配合物など 10,27および疾患(癌、ウイルス、大腸炎、インスリン抵抗性、 )5-7。リンパ収集コン?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funding from the Australian Research Council (ARC) and National Health and Medical Research Council (NHMRC) is gratefully acknowledged.

Materials

Sterile saline Baxter healthcare AHB 1307 Any brand can be used. Example here is Baxter 100 ml saline bags, box of 50
70 % ethanol in water Any Any brand can be used
Chlorhexidine gluconate solution (Microshield 4) Livingstone International JJ60243L Any brand can be used. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=JJ60243L
Betadine solution Livingstone International BU0510 Any brand can be used. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=BU0510
Ilium Ketamil (Ketamine 100 mg/ml) PROVET VICTORIA  KETA I 1 http://www.provet.com.au/
Ilium Xylazil (Xylazine 100 mg/ml) PROVET VICTORIA  TRO-3828 http://www.provet.com.au/
ACP 10 Injection (Acepromazine 10 mg/ml) PROVET VICTORIA  VTG-DACP010020 http://www.provet.com.au/
Sodium pentobarbitone PROVET VICTORIA  24529 Any brand can be used. Example here is Lethabarb® 325 mg/ml sodium pentobarbitone, Virbac Animal Health. http://www.provet.com.au
Heparin (35000I.U. in 35 mL) Sigma Pharmaceuticals 337220 http://sigmaco.com.au/
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) disodium salt dihydrate Sigma-Aldrich E1644 Any brand can be used. Example here is disodium salt of EDTA from Sigma. 
Polyethylene (PE) cannula o.d. 0.96 mm x i.d. 0.58 mm Microtube extensions PE8050 Any brand can be used. Example here is PE tubing 0.8×0.5 mm, 30 m
Polyethylene (PE) cannula o.d. 0.8 mm x i.d. 0.5 mm Microtube extensions PE9658 Any brand can be used. Example here is PE tubing 0.96×0.58 mm, 30 m
Ruler Any Any brand can be used
Markers Any Any brand can be used
Cigarette lighter Any Any brand can be used
Cyanoacrylate glue Any Any brand can be used
23 gauge needles Livingstone International DN23GX0.75LV Any brand can be used. Example here is Livingstone Disposable Needle, Sterile, 23GX0.75inch, 100/BOX. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=
6&search=DN23GX0.75LV
25 gauge needles Livingstone International DN25GX1.0LV Any brand can be used. Example here is Livingstone Disposable Needle, Sterile, 25GX1.0inch, 100/BOX. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search=
DN25GX1.0LV
1 ml syringe Livingstone International T3SS01TA Any brand can be used. Example here is Terumo syringe 1 ml Slip Tuberculin 100/Box. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=T3SS01TA
10 ml syringe Livingstone International T3SS10SA Any brand can be used. Example here is Terumo syringe 10 ml Slip 100/Box. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=T3SS10SA
Gauze swabs Livingstone International GSC075 Any brand can be used and cut to required size. Example here is gauze swabs cotton filled 7.5×7.5 cm, 8 ply. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=GSC075
Cotton buds Livingstone International CTAST075DP Any brand can be used. Example here is Livingstone cotton applicator plastic double tipped. 75MM. 100/PK. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=CTAST075DP
Heating pad Ratek WT1 Any brand that keeps temperature at 37C can be used. Example here is Ratek warming tray.
Surgical light Harvard Apparatus 72-0215 with 72-0267 Any brand can be used. Example here is Harvard apparatus V-Lux 1000 Cold Light Source with Bifurcated Gooseneck Light Guide, Black, 4.7 mm fiber diameter (each arm). http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/product_11051_10001_50601_
-1_HAI_ProductDetail and  http://www.harvardapparatus.com/webapp/wcs/stores/servlet/product_11051_10001_35487_
-1_HAI_ProductDetail___
Surgical microscope Zeiss 495005-0014-000 Any brand can be used. Example here is Zeiss Stereomicroscope Stemi 2000-C with Stand S Double Spot and KL 300 LED. https://www.micro-shop.zeiss.com/?l=en&p=us&f=e&i=10143
Silk suture Livingstone International DTSK163019F4 Any brand can be used. Example here is * 
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3/8 Circle Reverse Cut Silk Suture 3/0 Thread 19mm. http://www.livingstone.com.au/?PG=search_result&CAT=6&search
=DTSK163019F4
Scalpel blades Fine Science Tools (FST) 10020-00 Any brand can be used. Example here is FST Scalpel Blade #20. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=191
Scalpel handle Fine Science Tools (FST) 10004-13 Any brand can be used. Example here is FST Scalpel Handle #4. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=298&CategoryId=51
1 x Small surgical scissors Fine Science Tools (FST) 14060-09 Any brand can be used. Example here is FST Fine Scissors, 9 cm with 21 mm cutting edge, sharp, straight. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=40&CategoryId=17
2 x Forceps with serrated curved tip Fine Science Tools (FST) 11001-13 Any brand can be used. Example here is FST 13 cm standard pattern forceps with curved 2.8×1.4 mm tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=405&CategoryId=32
1 x Iridectomy scissors Fine Science Tools (FST) 15000-08 Any brand can be used. Example here is FST Vannas Spring Scissors – 2.5mm Cutting Edge, Straight. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=17&CategoryId=16 
1 x Forceps with straight serated tip Fine Science Tools (FST) 11650-10 Any brand can be used. Example here is FST Graefe 10 cm straight with serrated 1 x 0.99 mm tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=390&CategoryId=32
1 x Forceps with smooth sharp straight fine tip Fine Science Tools (FST) 11251-10 Any brand can be used. Example here is FST Dumont #5 forceps straight 11cm with 0.08 x 0.04mm tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=335&CategoryId=29
1 x Forceps with smooth fine curved forceps Fine Science Tools (FST) 11063-07 Any brand can be used. Example here is FST Delicate Forceps 9 cm with smooth 0.4 x 0.3mm tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=360
2 x Hemostats Fine Science Tools (FST) 13010-12 Any brand can be used. Not all operators use the hemostats. Example here is FST 12 cm Micro-Mosquito Hemostats with 20 mm length x 1.3 mm width serrated, straight tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=377&CategoryId=33
1 x Suture needle holder Fine Science Tools (FST) 12001-13 Any brand can be used. Example here is FST 13cm Hasley Needle Holder with 16 mm length x 1.9 mm width tip. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=254&CategoryId=70
1 x Artery clamp Fine Science Tools (FST) 18050-28 Any brand can be used. Example here is FST Bulldog Serrefines straight, 28 mm long, 9×1.6 mm jaw dimension with medium clamp press. http://www.finescience.ca/Special-Pages/Products.aspx?ProductId=270&CategoryId=82
Oleic acid Sigma Aldrich O1008 When required, any brand can be used. Example here is 99% pure oleic acid. http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/o1008?lang=en&region=AU
14C-oleic acid Perkin  NEC317050UC  Any brand can be used. Example here is Oleic Acid, [1-14C]-, 50µCi (1.85MBq). http://www.perkinelmer.com/Catalog/Product/ID/NEC317050UC
Sodium taurocholate Sigma Aldrich T4009 Any brand can be used. Example here is taurocholic acid sodium salt hydrate ≥95% (TLC) . http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t4009?lang=en&region=AU
Halofantrine Glaxo Smith Kline Halofantrine was kindly provided as a gift from Glaxo Smith Kline
Sodium phosphate monobasic Sigma Aldrich 71507 Any brand can be used. Example here is sodium phosphate monobasic monohydrate, BioXtra, for molecular biology, >99.5%. http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/71643?lang=en&region=AU
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich 71643 Any brand can be used. Example here is sodium phosphate dibasic dihydrate, BioUltra, for molecular biology, >99%. http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/71507?lang=en&region=AU

Riferimenti

  1. Barrowman, J. A., Tso, P. Gastrointestinal lymphatics. Comprehensive Physiology. , 1733-1777 (2010).
  2. Karaman, S., Detmar, M. Mechanisms of lymphatic metastasis. J Clin Invest. 124 (3), 922-928 (2014).
  3. Mossel, E. C., Ramig, R. F. A lymphatic mechanism of rotavirus extraintestinal spread in the neonatal mouse. J Virol. 77 (22), 12352-12356 (2003).
  4. Pantaleo, G., et al. Hiv-Infection Is Active and Progressive in Lymphoid-Tissue during the Clinically Latent Stage of Disease. Nature. 362 (6418), 355-358 (1993).
  5. Chakraborty, S., Zawieja, S., Wang, W., Zawieja, D. C., Muthuchamy, M. Lymphatic system: a vital link between metabolic syndrome and inflammation. Annals of the New York Academy of Sciences. 1207, R94-R102 (2010).
  6. Dixon, J. B. Lymphatic lipid transport: sewer or subway. Trends Endocrinol Metab. 21 (8), 480-487 (2010).
  7. Weid, P. -. Y., Rehal, S., Ferraz, J. G. Role of the lymphatic system in the pathogenesis of Crohn’s disease. Current Opinion in Gastroenterology. 27 (4), 335-341 (2011).
  8. Wang, Y., et al. Chylomicrons promote intestinal absorption and systemic dissemination of dietary antigen (ovalbumin) in mice. PloS one. 4 (12), e8442 (2009).
  9. Ji, Y., et al. Activation of rat intestinal mucosal mast cells by fat absorption. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 302 (11), G1292-G1300 (2012).
  10. Kohan, A., Yoder, S., Tso, P. Lymphatics in intestinal transport of nutrients and gastrointestinal hormones. Ann N Y Acad Sci. 1207, E44-E51 (2010).
  11. Trevaskis, N. L., Charman, W. N., Porter, C. J. Targeted drug delivery to lymphocytes: a route to site-specific immunomodulation. Mol Pharm. 7 (6), 2297-2309 (2010).
  12. Rothkotter, H. J., Huber, T., Barman, N. N., Pabst, R. Lymphoid cells in afferent and efferent intestinal lymph: lymphocyte subpopulations and cell migration. Clin Exp Immunol. 92 (2), 317-322 (1993).
  13. Trevaskis, N. L., Charman, W. N., Porter, C. J. Lipid-based delivery systems and intestinal lymphatic drug transport: a mechanistic update. Adv Drug Deliv Rev. 60 (6), 702-716 (2008).
  14. Mansbach, C. M., Dowell, R. F., Pritchett, D. Portal transport of absorbed lipids in rats. Am J Physiol. 261 (3 Pt 1), G530-G538 (1991).
  15. Kohan, A. B., Howles, P. N., Tso, P. Methods for studying rodent intestinal lipoprotein production and metabolism. Curr Protoc Mouse Biol. 2, 219-230 (2012).
  16. Porter, C. J., Trevaskis, N. L., Charman, W. N. Lipids and lipid-based formulations: optimizing the oral delivery of lipophilic drugs. Nat Rev Drug Discov. 6 (3), 231-248 (2007).
  17. Trevaskis, N. L., et al. The role of the intestinal lymphatics in the absorption of two highly lipophilic cholesterol ester transfer protein inhibitors (CP524,515 and CP532,623). Pharm Res. 27 (5), 878-893 (2010).
  18. Choo, E. F., et al. The Role of Lymphatic Transport on the. Systemic Bioavailability of the Bcl-2 Protein Family Inhibitors Navitoclax (ABT-263) and ABT-199. Drug Metabolism and Disposition. 42 (2), 207-212 (2014).
  19. Han, S., et al. Targeted delivery of a model immunomodulator to the lymphatic system: comparison of alkyl ester versus triglyceride mimetic lipid prodrug strategies. J Control Release. 177, 1-10 (2014).
  20. Bollman, J. L., Cain, J. C., Grindlay, J. H. Techniques for the collection of lymph from the liver, small intestine, or thoracic duct of the rat. J Lab Clin Med. 33 (10), 1349-1352 (1948).
  21. Porter, C. J., Charman, S. A., Charman, W. N. Lymphatic transport of halofantrine in the triple-cannulated anesthetized rat model: effect of lipid vehicle dispersion. J Pharm Sci. 85 (4), 351-356 (1996).
  22. Boyd, M., Risovic, V., Jull, P., Choo, E., Wasan, K. M. A stepwise surgical procedure to investigate the lymphatic transport of lipid-based oral drug formulations: Cannulation of the mesenteric and thoracic lymph ducts within the rat. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 49 (2), 115-120 (2004).
  23. Porter, C. J., Charman, S. A., Humberstone, A. J., Charman, W. N. Lymphatic transport of halofantrine in the conscious rat when administered as either the free base or the hydrochloride salt: effect of lipid class and lipid vehicle dispersion. J Pharm Sci. 85 (4), 357-361 (1996).
  24. Caliph, S. M., Charman, W. N., Porter, C. J. Effect of short-, medium-, and long-chain fatty acid-based vehicles on the absolute oral bioavailability and intestinal lymphatic transport of halofantrine and assessment of mass balance in lymph-cannulated and non-cannulated rats. J Pharm Sci. 89 (8), 1073-1084 (2000).
  25. Edwards, G. A., Porter, C. J., Caliph, S. M., Khoo, S. M., Charman, W. N. Animal models for the study of intestinal lymphatic drug transport. Adv Drug Deliv Rev. 50 (1-2), 45-60 (2001).
  26. Noguchi, T., Charman, W. N. A., Stella, V. J. Lymphatic Appearance of Ddt in Thoracic or Mesenteric Lymph Duct Cannulated Rats. International Journal of Pharmaceutics. 24 (2-3), 185-192 (1985).
  27. Trevaskis, N. L., et al. A mouse model to evaluate the impact of species, sex, and lipid load on lymphatic drug transport. Pharm Res. 30 (12), 3254-3270 (2013).
  28. Kota, J., et al. Lymphatic absorption of subcutaneously administered proteins: influence of different injection sites on the absorption of darbepoetin alfa using a sheep model. Drug Metab Dispos. 35 (12), 2211-2217 (2007).
  29. McHale, N. G., Adair, T. H. Reflex modulation of lymphatic pumping in sheep. Circ Res. 64 (6), 1165-1171 (1989).
  30. White, D. G., Story, M. J., Barnwell, S. G. An Experimental Animal-Model for Studying the Effects of a Novel Lymphatic Drug Delivery System for Propranolol. International Journal of Pharmaceutics. 69 (2), 169-174 (1991).
  31. Khoo, S. M., Edwards, G. A., Porter, C. J., Charman, W. N. A conscious dog model for assessing the absorption, enterocyte-based metabolism, and intestinal lymphatic transport of halofantrine. J Pharm Sci. 90 (10), 1599-1607 (2001).
  32. Kararli, T. T. Comparison of the gastrointestinal anatomy, physiology, and biochemistry of humans and commonly used laboratory animals. Biopharm Drug Dispos. 16 (5), 351-380 (1995).
  33. Kassis, T., et al. Dual-channel in-situ optical imaging system for quantifying lipid uptake and lymphatic pump function. J Biomed Opt. 17 (8), 086005 (2012).
  34. Dahan, A., Hoffman, A. Evaluation of a chylomicron flow blocking approach to investigate the intestinal lymphatic transport of lipophilic drugs. Eur J Pharm Sci. 24 (4), 381-388 (2005).
  35. Xiao, C., Lewis, G. F. Regulation of chylomicron production in humans. Biochim Biophys Acta. 1821 (5), 736-746 (2012).
  36. Seeballuck, F., Ashford, M., O’Driscoll, C. The Effects of Pluronic® Block Copolymers and Cremophor EL on Intestinal Lipoprotein Processing and the Potential Link with P-Glycoprotein in Caco-2 Cells. Pharmaceutical Research. 20 (7), 1085-1092 (2003).
  37. Levy, E., Mehran, M., Seidman, E. Caco-2 cells as a model for intestinal lipoprotein synthesis and secretion. The FASEB Journal. 9 (8), 626-635 (1995).
  38. Cartwright, I. J., Higgins, J. A. Isolated rabbit enterocytes as a model cell system for investigations of chylomicron assembly and secretion. Journal of Lipid Research. 40 (7), 1357-1365 (1999).
  39. Dixon, J. B., Raghunathan, S., Swartz, M. A. A Tissue-Engineered Model of the Intestinal Lacteal for Evaluating Lipid Transport by Lymphatics. Biotechnology and Bioengineering. 103 (6), 1224-1235 (2009).
  40. Gershkovich, P., et al. The role of molecular physicochemical properties and apolipoproteins in association of drugs with triglyceride-rich lipoproteins: in-silico prediction of uptake by chylomicrons. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 61 (1), 31-39 (2009).
  41. Gershkovich, P., Hoffman, A. Uptake of lipophilic drugs by plasma derived isolated chylomicrons: Linear correlation with intestinal lymphatic bioavailability. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 26 (5), 394-404 (2005).
  42. Holm, R., Hoest, J. Successful in silico predicting of intestinal lymphatic transfer. International Journal of Pharmaceutics. 272 (1-2), 189-193 (2004).
  43. Trevaskis, N. L., Porter, C. J., Charman, W. N. Bile increases intestinal lymphatic drug transport in the fasted rat. Pharm Res. 22 (11), 1863-1870 (2005).
  44. Miura, S., et al. Increased proliferative response of lymphocytes from intestinal lymph during long chain fatty acid absorption. Immunology. 78 (1), 142-146 (1993).
  45. Caliph, S. M., et al. The impact of lymphatic transport on the systemic disposition of lipophilic drugs. J Pharm Sci. 102 (7), 2395-2408 (2013).
  46. Caliph, S. M., Trevaskis, N. L., Charman, W. N., Porter, C. J. Intravenous dosing conditions may affect systemic clearance for highly lipophilic drugs: implications for lymphatic transport and absolute bioavailability studies. J Pharm Sci. 101 (9), 3540-3546 (2012).
  47. Trevaskis, N. L., et al. Tissue uptake of DDT is independent of chylomicron metabolism. Arch Toxicol. 80 (4), 196-200 (2006).
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Trevaskis, N. L., Hu, L., Caliph, S. M., Han, S., Porter, C. J. The Mesenteric Lymph Duct Cannulated Rat Model: Application to the Assessment of Intestinal Lymphatic Drug Transport. J. Vis. Exp. (97), e52389, doi:10.3791/52389 (2015).

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