Here we present techniques for imaging local IP3-mediated Ca2+ events using fluorescence microscopy in intact mammalian cells loaded with Ca2+ indicators together with an algorithm that automates identification and analysis of these events.
Cytosolisk Ca 2 + ioner regulerer mange aspekter av cellulær aktivitet i nesten alle celletyper, kontrollerende prosesser som vidtrekk som gentranskripsjon, elektrisk oppstemthet og celledeling. Mangfoldet og spesifisitet av Ca 2+ signale stammer fra mekanismer som Ca 2 + signaler genereres til å handle over ulike tids og romlige skalaer, fra celle-wide svingninger og bølger som oppstår i løpet av de perioder av minutter til lokale forbigående Ca 2 + mikroområder (Ca 2+ puffs) varige millisekunder. Nylige fremskritt i elektron multiplisert CCD (EMCCD) kameraer nå tillate for avbildning av lokale Ca 2+ signaler med en 128 x 128 pikslers romlig oppløsning ved hastigheter på> 500 rammer sek -1 (fps). Denne fremgangsmåten er svært parallelle og muliggjør samtidig overvåkning av flere hundre kanaler eller puff områder i et enkelt eksperiment. Men de enorme mengder data som genereres (ca 1 Gb per min) gjengi visuell identifisering og analyse av lokale Ca 2+ hendelser upraktisk. Her beskriver vi og demonstrere prosedyrene for erverv, deteksjon og analyse av lokal IP 3-formidlet Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller lastet med Ca 2+ indikatorer som bruker både vidvinkel epi-fluorescens (WF) og total intern refleksjon fluorescens (TIRF) mikroskopi. Videre beskriver vi en algoritme utviklet innen åpen kildekode miljøet Python som automatiserer identifisering og analyse av disse lokale Ca 2+ signaler. Algoritmen lokaliserer områder av Ca 2+ utgivelsen med sub-piksler; lar brukeren gjennomgang av data; og utganger tids sekvenser av fluorescens ratio signaler sammen med amplitude og kinetiske data i et Excel-kompatibelt tabellen.
Kalsiumioner (Ca 2+) ubiquitously regulere et mangfoldig utvalg av biologiske prosesser, herunder genuttrykk, sekresjon og varige endringer i synaptisk plastisitet en. En måte gjennom hvilke Ca 2+ kan opptre på en slik mangfoldig måte er gjennom de ulike romlige og tidsmessige mønstre av Ca 2+ signaliserer en celle kan generere. For eksempel globale økninger i cytosolisk [Ca 2+] trigger sammentrekning i glatt muskelvev a mens mindre, lokale Forbigående økning (lokale Ca 2+ mikroområder) stimulere genuttrykk viktig for læring og hukommelse tre.
Cytosolisk fri [Ca2 +] holdes ved ~ 100 nM ved hvile, men kan raskt stige til flere mikro molar etter tilførsel av Ca2 + inn i cytosol gjennom Ca 2+ -permeable ionekanaler lokalisert i plasmamembranen og etter frigjøringen av Ca 2+ fra intracellulære sTores. Laboratoriet fokuserer på inositol 1,4,5-trisphosphate reseptor (IP 3 R), som danner en Ca2 + frigivelse kanal plassert i det endoplasmatiske retikulum (ER) membran. Ved binding av både IP 3 og Ca 2+ til cytosoliske aktiverende områder av reseptoren, åpnes IP 3 R-kanal for å frigjøre Ca 2+ sekvestrert innenfor ER lumen. Utgivelsen av Ca 2+ kan forbli romlig begrenset til en liten klynge av IP 3 R for å generere en lokal cytosolisk microdomain av Ca 2+ (Ca 2+ puff 4) eller, avhengig av nærhet til nabo klynger av IP 3 R, kan forplante gjennom en celle ved å rekruttere flere puffsider gjennom en prosess med Ca 2+ -indusert Ca 2+ -release (CICR) 5,6.
Innføringen av fluorescerende lite molekyl Ca 2+ indikatorfarger utviklet av Roger Tsien 7, kombinert med avansert mikros Imaging teknikker, har i stor grad vår forståelse av Ca 2+ signalering. Nylige fremskritt i kameraene som brukes for mikros nå tillate for avbildning forbigående lokale Ca 2+ arrangementer som puffs med enestående romlig og tidsmessig oppløsning. For tiden tilgjengelige EMCCD kameraer aktiver bildebehandling med 128 x 128 piksler på> 500 rammer sek -1 (fps) og den nye generasjonen av Complementary Metal Oxide Semiconductor (CMOS) kameraer gir høyere pikseloppløsning, og enda raskere hastighet på bekostning av noe høyere støynivå. I forbindelse med total intern refleksjon (TIRF) mikroskopi er det nå mulig å avbilde enkelt Ca 2+ kanal hendelser 8,9. Denne tilnærmingen gjør det mulig for avbildning av hundrevis av kanaler / hendelser samtidig, mens generere store datasett (ca. 1 Gb per min) som gjør manuell behandling, visuell identifisering og analyse upraktisk og plassere en tyngende på utvikling av automatiserte algoritmer.
<p class = "jove_content"> Her presenterer vi prosedyrer og protokoller for bildebehandling lokale Ca 2+ signaler i intakte pattedyrceller ved hjelp av fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Vi ytterligere demonstrere en algoritme utviklet i åpen kildekode-miljøet Python som automatiserer identifisering og analyse av lokale Ca 2+ hendelser fotografert av både TIRF og konvensjonell bredt felt epi-fluorescens (WF) mikroskopi. Selv om vi beskrive disse tilnærminger i sammenheng med IP 3 dannede Ca 2+ signaler, de er lett mottagelig for å studere lokale endringer i cytosol [Ca2 +] som utgår fra en rekke Ca 2+ -permeable ionekanaler lokalisert i enten overflaten membran eller intracellulære organeller 8-10.Vi beskriver her protokoller for avbildning lokale Ca 2+ hendelser i dyrkede pattedyrceller ved hjelp av fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Videre beskriver vi en algoritme med et intuitivt brukergrensesnitt som automatiserer identifisering og analyse av innsamlede data. Fremgangsmåten beskrevet her utnytte den fluorescerende Ca 2+ indikator Cal-520, men mange andre Ca 2+ følsomme fargestoffer som Fluo-3, Fluo-4, Fluo-8 og Oregon Grønn BAPTA-1 utføre tilstrekkelig godt til…
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by National Institutes of Health grants GM 100201 to I.F.S, and GM 048071 and GM 065830 to I.P.
Name | Company | Catalogue No. |
Human Neuroblastoma SH-SY5Y cells | ATCC | CRL-2266 |
Cal-520/AM | AAT Bioquest Inc. | 21130 |
ci-IP3 (D-23-O-Isopropylidene-6-O-(2-nitro-4.5-dimethoxy)benzyl-myo-Inositol 145-trisphosphate-Hexakis(propionoxymethyl) | SiChem | cag-iso-2-145-10 |
DMSO/20% pluronic F127 | Invitrogen | P-3000MP |
EGTA/AM | Invitrogen | E-1219 |
35 mm glass-bottom imaging dishes | MatTek | P35-1.5-14-C |