Summary

Imaging Lokal Ca<sup> 2+</sup> Signaler i dyrkede pattedyrceller

Published: March 03, 2015
doi:

Summary

Here we present techniques for imaging local IP3-mediated Ca2+ events using fluorescence microscopy in intact mammalian cells loaded with Ca2+ indicators together with an algorithm that automates identification and analysis of these events.

Abstract

Cytosolisk Ca 2 + ioner regulerer mange aspekter av cellulær aktivitet i nesten alle celletyper, kontrollerende prosesser som vidtrekk som gentranskripsjon, elektrisk oppstemthet og celledeling. Mangfoldet og spesifisitet av Ca 2+ signale stammer fra mekanismer som Ca 2 + signaler genereres til å handle over ulike tids og romlige skalaer, fra celle-wide svingninger og bølger som oppstår i løpet av de perioder av minutter til lokale forbigående Ca 2 + mikroområder (Ca 2+ puffs) varige millisekunder. Nylige fremskritt i elektron multiplisert CCD (EMCCD) kameraer nå tillate for avbildning av lokale Ca 2+ signaler med en 128 x 128 pikslers romlig oppløsning ved hastigheter på> 500 rammer sek -1 (fps). Denne fremgangsmåten er svært parallelle og muliggjør samtidig overvåkning av flere hundre kanaler eller puff områder i et enkelt eksperiment. Men de enorme mengder data som genereres (ca 1 Gb per min) gjengi visuell identifisering og analyse av lokale Ca 2+ hendelser upraktisk. Her beskriver vi og demonstrere prosedyrene for erverv, deteksjon og analyse av lokal IP 3-formidlet Ca 2 + signaler i intakte pattedyrceller lastet med Ca 2+ indikatorer som bruker både vidvinkel epi-fluorescens (WF) og total intern refleksjon fluorescens (TIRF) mikroskopi. Videre beskriver vi en algoritme utviklet innen åpen kildekode miljøet Python som automatiserer identifisering og analyse av disse lokale Ca 2+ signaler. Algoritmen lokaliserer områder av Ca 2+ utgivelsen med sub-piksler; lar brukeren gjennomgang av data; og utganger tids sekvenser av fluorescens ratio signaler sammen med amplitude og kinetiske data i et Excel-kompatibelt tabellen.

Introduction

Kalsiumioner (Ca 2+) ubiquitously regulere et mangfoldig utvalg av biologiske prosesser, herunder genuttrykk, sekresjon og varige endringer i synaptisk plastisitet en. En måte gjennom hvilke Ca 2+ kan opptre på en slik mangfoldig måte er gjennom de ulike romlige og tidsmessige mønstre av Ca 2+ signaliserer en celle kan generere. For eksempel globale økninger i cytosolisk [Ca 2+] trigger sammentrekning i glatt muskelvev a mens mindre, lokale Forbigående økning (lokale Ca 2+ mikroområder) stimulere genuttrykk viktig for læring og hukommelse tre.

Cytosolisk fri [Ca2 +] holdes ved ~ 100 nM ved hvile, men kan raskt stige til flere mikro molar etter tilførsel av Ca2 + inn i cytosol gjennom Ca 2+ -permeable ionekanaler lokalisert i plasmamembranen og etter frigjøringen av Ca 2+ fra intracellulære sTores. Laboratoriet fokuserer på inositol 1,4,5-trisphosphate reseptor (IP 3 R), som danner en Ca2 + frigivelse kanal plassert i det endoplasmatiske retikulum (ER) membran. Ved binding av både IP 3 og Ca 2+ til cytosoliske aktiverende områder av reseptoren, åpnes IP 3 R-kanal for å frigjøre Ca 2+ sekvestrert innenfor ER lumen. Utgivelsen av Ca 2+ kan forbli romlig begrenset til en liten klynge av IP 3 R for å generere en lokal cytosolisk microdomain av Ca 2+ (Ca 2+ puff 4) eller, avhengig av nærhet til nabo klynger av IP 3 R, kan forplante gjennom en celle ved å rekruttere flere puffsider gjennom en prosess med Ca 2+ -indusert Ca 2+ -release (CICR) 5,6.

Innføringen av fluorescerende lite molekyl Ca 2+ indikatorfarger utviklet av Roger Tsien 7, kombinert med avansert mikros Imaging teknikker, har i stor grad vår forståelse av Ca 2+ signalering. Nylige fremskritt i kameraene som brukes for mikros nå tillate for avbildning forbigående lokale Ca 2+ arrangementer som puffs med enestående romlig og tidsmessig oppløsning. For tiden tilgjengelige EMCCD kameraer aktiver bildebehandling med 128 x 128 piksler på> 500 rammer sek -1 (fps) og den nye generasjonen av Complementary Metal Oxide Semiconductor (CMOS) kameraer gir høyere pikseloppløsning, og enda raskere hastighet på bekostning av noe høyere støynivå. I forbindelse med total intern refleksjon (TIRF) mikroskopi er det nå mulig å avbilde enkelt Ca 2+ kanal hendelser 8,9. Denne tilnærmingen gjør det mulig for avbildning av hundrevis av kanaler / hendelser samtidig, mens generere store datasett (ca. 1 Gb per min) som gjør manuell behandling, visuell identifisering og analyse upraktisk og plassere en tyngende på utvikling av automatiserte algoritmer.

<p class = "jove_content"> Her presenterer vi prosedyrer og protokoller for bildebehandling lokale Ca 2+ signaler i intakte pattedyrceller ved hjelp av fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Vi ytterligere demonstrere en algoritme utviklet i åpen kildekode-miljøet Python som automatiserer identifisering og analyse av lokale Ca 2+ hendelser fotografert av både TIRF og konvensjonell bredt felt epi-fluorescens (WF) mikroskopi. Selv om vi beskrive disse tilnærminger i sammenheng med IP 3 dannede Ca 2+ signaler, de er lett mottagelig for å studere lokale endringer i cytosol [Ca2 +] som utgår fra en rekke Ca 2+ -permeable ionekanaler lokalisert i enten overflaten membran eller intracellulære organeller 8-10.

Protocol

Vi presenterer detaljerte prosedyrer for bildebehandling lokale Ca 2+ hendelser i menneskelig neuroblastom SH-SY5Y celler. Disse fremgangsmåtene kan tilpasses bilde intracellulær Ca2 + signaler i mange celletyper 8-10. 1. Fremstilling av cellene Kultur cellene som skal avbildes i henhold til instruksjonene oppført på deres leverandør hjemmeside. Et par dager før bildebehandling, slakte celler dyrket i et vevskulturkolbe bruker 1 ml …

Representative Results

Figur 1a viser en WF bilde av hvile Cal-520 fluorescens i menneskelige neuroblastom SH-SY5Y celler også lastet med ci-IP 3. Eksponering av disse cellene til en 100 msek UV flash til foto-release i-IP 3 fremkalte forbigående Ca 2 + puff ved diskrete områder (fremgår av de hvite sirklene i figur 1A). Fluorescens spor, målt på disse stedene viste en hurtig stigende fase på grunn av forbigående åpninger av IP 3 R, etterfulgt av en mye lan…

Discussion

Vi beskriver her protokoller for avbildning lokale Ca 2+ hendelser i dyrkede pattedyrceller ved hjelp av fluorescerende Ca 2 + indikatorer. Videre beskriver vi en algoritme med et intuitivt brukergrensesnitt som automatiserer identifisering og analyse av innsamlede data. Fremgangsmåten beskrevet her utnytte den fluorescerende Ca 2+ indikator Cal-520, men mange andre Ca 2+ følsomme fargestoffer som Fluo-3, Fluo-4, Fluo-8 og Oregon Grønn BAPTA-1 utføre tilstrekkelig godt til…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health grants GM 100201 to I.F.S, and GM 048071 and GM 065830 to I.P.

Materials

Name Company Catalogue No.
Human Neuroblastoma SH-SY5Y cells ATCC CRL-2266
Cal-520/AM AAT Bioquest Inc. 21130
ci-IP3 (D-23-O-Isopropylidene-6-O-(2-nitro-4.5-dimethoxy)benzyl-myo-Inositol 145-trisphosphate-Hexakis(propionoxymethyl) SiChem cag-iso-2-145-10
DMSO/20% pluronic F127 Invitrogen P-3000MP
EGTA/AM Invitrogen E-1219
35 mm glass-bottom imaging dishes MatTek P35-1.5-14-C

Riferimenti

  1. Berridge, M. J., Lipp, P., Bootman, M. D. The versatility and universality of calcium signalling. Nat Rev Mol Cell Biol. 1 (1), 11-21 (2000).
  2. Hill-Eubanks, D. C., Werner, M. E., Heppner, T. J., Nelson, M. T. Calcium signaling in smooth muscle. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (9), a004549 (2011).
  3. Hagenston, A. M., Bading, H. Calcium signaling in synapse-to-nucleus communication. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (11), a004564 (2011).
  4. Berridge, M. J. Elementary and global aspects of calcium signalling. J Physiol. 499 (Pt 2), 291-306 (1997).
  5. Lipp, P., Niggli, E. A hierarchical concept of cellular and subcellular calcium signalling). Prog Biophys Mol Biol. 65 (3), 265-296 (1996).
  6. Parker, I., Yao, Y., Ilyin, V. Fast kinetics of calcium liberation induced in Xenopus oocytes by photoreleased inositol trisphosphate. Biophys J. 70 (1), 222-237 (1996).
  7. Minta, A., Kao, J. P., Tsien, R. Y. Fluorescent indicators for cytosolic calcium based on rhodamine and fluorescein chromophores. J Biol Chem. 264 (14), 8171-8178 (1989).
  8. Demuro, A., Parker, I. Imaging the activity and localization of single voltage-gated Ca(2+) channels by total internal reflection fluorescence microscopy. Biophys J. 86 (5), 3250-3259 (2004).
  9. Smith, I. F., Parker, I. Imaging the quantal substructure of single inositol trisphosphate receptor channel activity during calcium puffs in intact mammalian cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (15), 6404-6409 (2009).
  10. Reissner, K. J., et al. A novel postsynaptic mechanism for heterosynaptic sharing of short-term plasticity. J Neurosci. 30 (26), 8797-8806 (2010).
  11. Ellefson, K. S., Parker, B., Smith, I., F, I. An algorithm for automated detection, localization and measurement of local calcium signals from camera-based imaging. Cell Calcium. , (2014).
  12. Smith, I. F., Wiltgen, S. M., Parker, I. Localization of puff sites adjacent to the plasma membrane: Functional and spatial characterization of calcium signaling in SH-SY5Y cells utilizing membrane-permeant caged inositol trisphosphate. Cell Calcium. 45, 65-76 (2009).
  13. Shuai, J., Parker, I. Optical single-channel recording by imaging calcium flux through individual ion channels: theoretical considerations and limits to resolution. Cell Calcium. 37 (4), 283-299 (2005).
check_url/it/52516?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lock, J. T., Ellefsen, K. L., Settle, B., Parker, I., Smith, I. F. Imaging Local Ca2+ Signals in Cultured Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (97), e52516, doi:10.3791/52516 (2015).

View Video