Summary

培养HL-1心房肌细胞单层的电压和钙双通道光映射

Published: March 23, 2015
doi:

Summary

This article describes the technique used to perform dual channel optical mapping in cultured HL-1 atrial cell monolayers. This unique protocol allows the simultaneous visualization of both calcium (Ca) and voltage (Vm) activity in the same area for the detailed detection and analysis of electrophysiological properties of culture monolayers.

Abstract

光学映射已被证明是有价值的技术来检测心电活动上都完好体外心和在培养的心肌细胞单层。的HL-1细胞已被广泛地用作用于研究心脏生理学的各个方面的2维细胞模型。但是,它已经受到了极大的挑战光学地图钙(Ca)瞬态和动作电位同时从相同的视野中培养HL-1心房细胞单层。这是因为特殊的处理和护理,需要准备一个可以电捕获并光学映射健康细胞。因此,我们已开发了一种最佳的工作协议进行双通道光学测绘的。在这个手稿中,我们已经详细介绍了如何进行双通道光的映射实验。这个协议是一个有用的工具,以提高动作电位传播和Ca动力学心律失常发展的理解。

Introduction

独特的钙(Ca)和电压(V M)双通道光映射技术1-5正在成为一种有效的工具,同时记录V M和钙信号在两个完整的心和培养细胞单层。该技术使得有可能获得关于钙瞬变和动作电位之间的关系,以便更好地理解心律失常的底层电机制有力的信息。

培养的细胞单层已被证明是研究心脏电生理和心律失常的基本机制的有用的细胞模型。4,6-8的HL-1细胞是充分表征的心房肌细胞培养线。 HL-1细胞也保持着独特的差异化基因型和表现型,包括形态,电生理和成人心房肌细胞的药理特性。这些细胞表达心肌基因和蛋白质,包括性重要nt的心脏离子通道( ,L和T型钙通道)9和肌节收缩蛋白的成熟异构体通常在成人心房肌细胞作为其他人发现,我们以前曾报道10-13此外,HL-1细胞可以是培养,以形成一个2维(2-D)的肌细胞单层。因此,使用培养的HL-1单层的优点包括:1)较低的成本,更容易保持一个心肌细胞培养系不是分离和培养原代新生心肌细胞; 2)细胞的汇合单层减少而导致的心脏的3-D结构的结构的复杂性; 3)细胞单层可以消除间质纤维化的发生在完整心脏的干扰。这可以用来解剖一组肌细胞的特定电功能,而不成纤维细胞和间质基质的干扰; 4)药物或基因操纵的小路评估功能的后果捕获的原始图像的细胞单层,可以有效地实现。因此,HL-1细胞已经成为研究肌细胞生理学的各个方面以及起搏诱导的异常电活动的一个广泛使用的细胞模型13-16然而,特殊的处理和护理需要培养健康细胞单层,为了响应外部电起搏光学定位研究。此外,双荧光染料染色过程可能会很容易损坏的培养融合细胞单层的完整性。因此,在执行V 米/ CA双通道培养HL-1单层光学标测受到了极大的挑战。

该方法的目标是提供的关键步骤为在培养的HL-1单层成功执行双通道光学测绘的。在这里,我们提供了大量具体的细节上的优化协议HL-1细胞单层的准备,培养的细胞单层双通道光学测绘,测绘数据处理。

Protocol

1.溶液制备去甲肾上腺素(NP)溶液溶解40毫克的NP的成将25ml 30mM的抗坏血酸(0.1475克抗坏血酸在25ml纯化的Milli-Q(MQ)水。该溶液在制备过程中避免直接光照,因为去甲肾上腺素(NP)是光敏感的。 过滤用0.22μm注射器滤器对NP溶液。分装,在-20℃下将溶液在1ml无菌微量管和存储。一旦冻结,NP为稳定一个月。 辅以洗净,最后Claycomb媒体先从43.5毫升Claycomb培养?…

Representative Results

有文化的融合单层呈现有规律的内在节奏表现在电影1。然后,我们执行的V 米/钙双通道光映射在一个完全融合的HL-1的单层。 图1A显示了V M和钙信号的例子痕迹从记录单击败。均匀地传播V M和使用该双通道光学测绘系统的Ca信号代表等时的地图显示在图1B和1C。均匀地传播动作电位和钙瞬变代表时间顺序的图像是从同一的HL-…

Discussion

本文介绍了培养HL-1心房肌细胞单层染色钙和电压敏感的荧光染料的光映射的关键方面。它包括培养的最佳的HL-1细胞单层,设置的映射设备,映射培养单层,和数据分析。

要成功映射培养细胞,关键是要准备一个均匀分布的单层细胞。当播种到盖玻片细胞,一定要均匀地分散细胞。始终映射完全长大,完​​全融合细胞单层,因为这些将最好的电起搏回应。同样重要的是,保…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们要感谢Claycomb博士提供HL-1细胞和详细的维护协议。我们还要感谢埃琳娜·卡里略女士和赛斯Robia博士为他们与产生细胞电影和皮特卡隆先生的协助做一些配件为双通道光学标测系统的援助。

这项工作是由美国心脏协会(10GRNT3770030&12GRNT12050478为XA),国立卫生研究院(HL113640到XA),和Loyola大学的研究发展基金(以XA)的支持。

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Rhod2 dry powder  AAT Bioquest 21062
pluronic AAT Bioquest 20050
DMSO sigma 276855
Rh237 Invitrogen  S-1109
NaCl sigma S7653
KCl sigma P3911
KH2PO4  sigma P0662
NaH2PO4 sigma S9638
MgSO4  sigma M7506
D-Glucose sigma G8270
NaHCO3 sigma S6014
CaCl2 sigma C3881
HEPEs sigma H3375

Riferimenti

  1. Efimov, I. R., Nikolski, V. P., Salama, G. Optical imaging of the heart. Circ Res. 95 (1), 21-33 (2004).
  2. Salama, G., Hwang, S. M., et al. Simultaneous optical mapping of intracellular free calcium and action potentials from Langendorff perfused hearts. Current protocols in cytometry / editorial board, J. Paul Robinson, managing editor … [et al.]. 12 (Unit 12 17), (2009).
  3. Laurita, K. R., Singal, A. Mapping action potentials and calcium transients simultaneously from the intact heart. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 280 (5), H2053-H2060 (2001).
  4. Fast, V. G. Simultaneous optical imaging of membrane potential and intracellular calcium. J Electrocardiol. 38 (4 Suppl), 107-112 (2005).
  5. Sowell, B., Fast, V. G. Ionic mechanism of shock-induced arrhythmias: role of intracellular calcium. Heart Rhythm. 9 (1), 96-104 (2012).
  6. Fast, V. G., Kleber, A. G. Microscopic conduction in cultured strands of neonatal rat heart cells measured with voltage-sensitive dyes. Circ Res. 73 (5), 914-925 (1993).
  7. Hou, L., et al. A major role for HERG in determining frequency of reentry in neonatal rat ventricular myocyte monolayer. Circ Res. 107 (12), 1503-1511 (2010).
  8. Beauchamp, P., et al. Relative contributions of connexins 40 and 43 to atrial impulse propagation in synthetic strands of neonatal and fetal murine cardiomyocytes. Circ Res. 99 (11), 1216-1224 (2006).
  9. Xia, M., et al. Functional expression of L- and T-type Ca2+ channels in murine HL-1 cells. J Mol Cell Cardiol. 36 (1), 111-119 (2004).
  10. Claycomb, W. C., et al. HL-1 cells: a cardiac muscle cell line that contracts and retains phenotypic characteristics of the adult cardiomyocyte. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (6), 2979-2984 (1998).
  11. Fahrenbach, J. P., Ai, X., Banach, K. Decreased intercellular coupling improves the function of cardiac pacemakers derived from mouse embryonic stem cells. J Mol Cell Cardiol. 45 (5), 642-649 (2008).
  12. Yan, J., et al. c-Jun N-terminal kinase activation contributes to reduced connexin43 and development of atrial arrhythmias. Cardiovasc Res. 97 (3), 589-597 (2013).
  13. White, S. M., Constantin, P. E., Claycomb, W. C. Cardiac physiology at the cellular level: use of cultured HL-1 cardiomyocytes for studies of cardiac muscle cell structure and function. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 286 (3), H823-H829 (2004).
  14. Yang, Z., Shen, W., Rottman, J. N., Wikswo, J. P., Murray, K. T. Rapid stimulation causes electrical remodeling in cultured atrial myocytes. J Mol Cell Cardiol. 38 (2), 299-308 (2005).
  15. Brundel, B. J., Kampinga, H. H., Henning, R. H. Calpain inhibition prevents pacing-induced cellular remodeling in a HL-1 myocyte model for atrial fibrillation. Cardiovasc Res. 62 (3), 521-528 (2004).
  16. Umapathy, K., et al. Electrogram fractionation in murine HL-1 atrial monolayer model. Heart Rhythm. 5 (7), 1029-1035 (2008).
  17. Fast, V. G., Cheek, E. R. Optical mapping of arrhythmias induced by strong electrical shocks in myocyte cultures. Circ Res. 90 (6), 664-670 (2002).
  18. Bayly, P. V., et al. Estimation of conduction velocity vector fields from epicardial mapping data. IEEE Trans Biomed Eng. 45 (5), 563-571 (1998).

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Citazione di questo articolo
Yan, J., Thomson, J. K., Zhao, W., Fast, V. G., Ye, T., Ai, X. Voltage and Calcium Dual Channel Optical Mapping of Cultured HL-1 Atrial Myocyte Monolayer. J. Vis. Exp. (97), e52542, doi:10.3791/52542 (2015).

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