Summary

Live avbildning av nikotin inducerad kalciumsignalering och frisättning av signalsubstans Längs Ventral Hippocampus Axoner

Published: June 24, 2015
doi:

Summary

We developed a gene-chimeric preparation of ventral hippocampal – accumbens circuit in vitro that allows direct live imaging to analyze presynaptic mechanisms of nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) mediated synaptic transmission. This preparation also provides an informative approach to study the pre- and post-synaptic mechanisms of synaptic plasticity.

Abstract

Sustained enhancement of axonal signaling and increased neurotransmitter release by the activation of pre-synaptic nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) is an important mechanism for neuromodulation by acetylcholine (ACh). The difficulty with access to probing the signaling mechanisms within intact axons and at nerve terminals both in vitro and in vivo has limited progress in the study of the pre-synaptic components of synaptic plasticity. Here we introduce a gene-chimeric preparation of ventral hippocampal (vHipp)–accumbens (nAcc) circuit in vitro that allows direct live imaging to analyze both the pre- and post-synaptic components of transmission while selectively varying the genetic profile of the pre- vs post-synaptic neurons. We demonstrate that projections from vHipp microslices, as pre-synaptic axonal input, form multiple, reliable glutamatergic synapses with post-synaptic targets, the dispersed neurons from nAcc. The pre-synaptic localization of various subtypes of nAChRs are detected and the pre-synaptic nicotinic signaling mediated synaptic transmission are monitored by concurrent electrophysiological recording and live cell imaging. This preparation also provides an informative approach to study the pre- and post-synaptic mechanisms of glutamatergic synaptic plasticity in vitro.

Introduction

Cholinergic modulering av kretsen retbarhet bidrar till grundläggande aspekter av kognition, och förändrat kolinerga modulering är en funktion av neurodegenerativa och neuropsykiatriska störningar, inklusive Alzheimers sjukdom, Parkinsons sjukdom, schizofreni och missbruk 1-4. En etablerad mekanism för kolinerga underlättande av synaptisk transmission i CNS är via direkt aktivering av nAChRs lokaliserade vid presynaptiska webbplatser. Aktivering av dessa presynaptiska receptorer leder till ökad intracellulär Ca2 + ([Ca2 +] i) i presynaptiska terminaler – både direkt, på grund av den relativt höga kalcium konduktansen hos vissa nAChR-subtyper, och indirekt, via intracellulära signaleringskaskader 5, och därigenom öka neurotransmittorfrisättning. I själva verket har aktiveringen av presynaptiska nAChRs kopplats till förändringar i frisättning av ett stort antal olika signalsubstanser inklusive glutamat, GABA, ACh, ennd dopamin 6-10. Även om denna process har studerats indirekt med hjälp av elektrofysiologiska metoder vid olika synapser, optiska reportrar i [Ca2 +] i och synaptiska vesikler återvinning möjliggöra mer direkt och tidsmässigt exakt mätning av presynaptiska företeelser.

Pre-synaptiska lokalisering av nAChRs har visats på ett övertygande sätt med direkt immun guld märkning av nAChRs på elektronmikroskopiska (EM) nivå 11,12. Flera andra tekniker har också använts för att behandla nAChR lokalisering indirekt, inklusive detektering placeringarna av nAChRs subunit- fluorescerande proteinchimärer i odlade neuroner 13,14, elektrofysiologiska inspelning av nAChR-strömmar i synaptiska ändarna 15,16, övervakning nikotin inducerade förändringar i [Ca 2 +] i i synaptiska nervterminaler efter levande cell imaging 17, och indirekt kontroll av neurotransmittorfrisättning vid synaptiska terminalen genomlevande cell avbildningstekniker med fluorescerande indikatorer, däribland exocytos av synaptiska vesiklar ses av styrylfärgämnen amfipatiska FM färgämnen (FM1-43 och FM4-64) och / eller synapto-pHluorin och specifika fluorescerande signalsubstans reportrar, såsom CNiFERs för ACh och iGluSnFr för glutamat 18-20. Sammantaget dessa aktuella metoder för att identifiera presynaptisk lokalisering av nAChRs är komplicerade och kräver särskilda system och tekniker för att möjliggöra säker identifiering och fysiologisk övervakning av presynaptisk aktivitet.

Här beskriver vi protokoll och utrustning för ett in vitro samodlingssystemet av en ventrala hippocampus (vHipp) – nucleus accumbens (NACC) krets som ger direkt tillgång till kartlägga och analysera både före och postsynaptiska komponenter i synaptisk transmission. Vi visar exempel på presynaptisk lokalisering av nAChRs och levande cell imaging av nAChR medierad Ca2 + signalering och neurotransmittorfrisättning along vHipp axoner. En naturlig (och enkelt) förlängning av protokollet presenteras här är framställningen av före och efter synaptiska kontakter som består av nervceller från olika genotyper. På detta sätt kan bedömas bidraget av en viss gen produkt till för- och / eller postsynaptiska mekanismer moduleringen direkt.

Protocol

Alla djurförsök utfördes i enlighet med National Institutes of Health Guide för skötsel och användning av försöksdjur (NIH publikationerna nr 80-23, reviderad 2012) och undersökningar har godkänts av Institutional Animal Care och användning för forskning kommittéer vid Stony Brook University (# 1618 och # 1792). 1. vHipp-NACC Synaptic Samkulturer Sacrifice möss (postnatal dag 0 – 3 från vildtypen (WT) eller α7 nAChRs transgen mus linje) med CO2. Halshugg…

Representative Results

Beredningen användes består av gen chimär samkulturer av vHipp-NACC kretsar in vitro. Prognoser som härrör från vHipp microslices, som presynaptisk axonal ingång, kan göra synaptiska kontakter med postsynaptiska mål, de spridda neuroner från NACC. Nikotin framkallade en ihållande (≥ 30 min) underlättande av glutamaterg överföring från NACC nervceller innerverade av vHipp axoner 21 och långvarig kalcium signalering längs vHipp axoner 5 via presynaptisk α7 * nAChRs. <…

Discussion

Det co-kultur preparat som beskrivs åter kapitulerar ventrala hippocampus-accumbens kretsar in vitro. Detta möjliggör en relativt enkel och tillförlitlig undersökning av rumsliga och tidsmässiga profiler genom vilka aktivering av presynaptiska nAChRs framkalla förbättrade glutamaterg transmission 5, 21.

Samodlingar definieras som tillväxten av olika specifika celltyper i en maträtt som kan ge fysiologiska betingelser in vitro för att demonstrera in…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Yehui Qin and Mallory Myers for technical support. We also thank Dr. Sigismund Huck for providing us the anti-α4-ECD antibody. This work is supported by National Institutes of Health grant NS22061 to L. W. R.

Materials

1, Culture Media (50 ml)
Neurobasal  GIBCO 10888022 48 ml
B-27 Supplements GIBCO 0080085-SA 1 ml
Penicillin-Streptomycin GIBCO 10908-010 0.5 ml
GlutaMAX Supplement GIBCO 35050-061 0.5 ml
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) GIBCO 15140-122 20 ng/ml
2, washing media (HBSS, 100 ml)
HBSS, no calcium, no magnesium, no phenol red  GIBCO 14175-095 99 ml
HEPES ( 1M) GIBCO 15630-130 1 ml
3, HEPES buffered saline  (HBS)   pH=7.3
NaCl Sigma S9888  135 mM
KCl Sigma P9333  5 mM
MgCl2 Sigma M8266  1 mM
CaCl2, Sigma C1016  2 mM
HEPES Sigma H3375  10 mM
Glucose Sigma G0350500  10 mM
4, HBS Cocktail for live imaging pH=7.3
NaCl Sigma S9888  135 mM
KCl Sigma P9333  5 mM
MgCl2 Sigma M8266  1 mM
CaCl2, Sigma C1016  2 mM
HEPES Sigma H3375  10 mM
Glucose Sigma G0350500  10 mM
tetrodotoxin  Tocris 1078 2 µM
bicuculline Tocris 131 10 µM
D-AP-5 Tocris 105 50 µM
CNQX Tocris 1045 20 µM
LY341495 Tocris 1209 10 µM
5, Calcium-free  HBS   pH=7.3
NaCl Sigma S9888  135 mM
KCl Sigma P9333  5 mM
MgCl2 Sigma M8266  1 mM
HEPES Sigma H3375  10 mM
Glucose Sigma G0350500  10 mM
6, 56 mM Potassium ACSF pH=7.4
NaCl Sigma S9888 119 mM
KCl Sigma P9333 56 mM
MgSO4.7H Sigma M1880 1.3 mM
CaCl2 Sigma C1016 2.5 mM
NaH2PO4 Sigma S8282 1 mM
NaHCO3 Sigma S5761 26.2 mM
Glucose Sigma G0350500  10 mM

Riferimenti

  1. Changeux, J. P., et al. Brain nicotinic receptors: structure and regulation, role in learning and reinforcement. Brain Res Brain Res Rev. 26 (2-3), 198-216 (1998).
  2. Levin, E. D. Nicotinic receptor subtypes and cognitive function. J Neurobiol. 53 (4), 633-640 (2002).
  3. Dani, J. A., Bertrand, D. Nicotinic acetylcholine receptors and nicotinic cholinergic mechanisms of the central nervous system. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 47, 699-729 (2007).
  4. Mineur, Y. S., Picciotto, M. R. Nicotine receptors and depression: revisiting and revising the cholinergic hypothesis. Trends Pharmacol Sci. 31 (12), 580-586 (2010).
  5. Zhong, C., Talmage, D. A., Role, L. W. Nicotine elicits prolonged calcium signaling along ventral hippocampal axons. PloS one. 8 (12), e82719 (2013).
  6. McGehee, D. S., Heath, M. J., Gelber, S., Devay, P., Role, L. W. Nicotine enhancement of fast excitatory synaptic transmission in CNS by presynaptic receptors. Science. 269 (5231), 1692-1696 (1995).
  7. Gray, R., Rajan, A. S., Radcliffe, K. A., Yakehiro, M., Dani, J. A. Hippocampal synaptic transmission enhanced by low concentrations of nicotine. Nature. 383 (6602), 713-716 (1996).
  8. Dickinson, J. A., Kew, J. N., Wonnacott, S. Presynaptic alpha 7- and beta 2-containing nicotinic acetylcholine receptors modulate excitatory amino acid release from rat prefrontal cortex nerve terminals via distinct cellular mechanisms. Mol Pharmacol. 74 (2), 348-359 (2008).
  9. Zappettini, S., Grilli, M., Salamone, A., Fedele, E., Marchi, M. Pre-synaptic nicotinic receptors evoke endogenous glutamate and aspartate release from hippocampal synaptosomes by way of distinct coupling mechanisms. Br J Pharmacol. 161 (5), 1161-1171 (2010).
  10. Zappettini, S., et al. Presynaptic nicotinic alpha7 and non-alpha7 receptors stimulate endogenous GABA release from rat hippocampal synaptosomes through two mechanisms of action. PloS one. 6 (2), e16911 (2011).
  11. Fabian-Fine, R., et al. Ultrastructural distribution of the alpha7 nicotinic acetylcholine receptor subunit in rat hippocampus. J Neurosci. 21 (20), 7993-8003 (2001).
  12. Jones, I. W., Barik, J., O’Neill, M. J., Wonnacott, S. Alpha bungarotoxin-1.4 nm gold: a novel conjugate for visualising the precise subcellular distribution of alpha 7* nicotinic acetylcholine receptors. J Neurosci Methods. 134 (1), 65-74 (2004).
  13. Nashmi, R., et al. Assembly of alpha4beta2 nicotinic acetylcholine receptors assessed with functional fluorescently labeled subunits: effects of localization, trafficking, and nicotine-induced upregulation in clonal mammalian cells and in cultured midbrain neurons. J Neurosci. 23 (37), 11554-11567 (2003).
  14. Drenan, R. M., et al. Subcellular trafficking, pentameric assembly, and subunit stoichiometry of neuronal nicotinic acetylcholine receptors containing fluorescently labeled alpha6 and beta3 subunits. Mol Pharmacol. 73 (1), 27-41 (2008).
  15. Wu, J., et al. Electrophysiological, pharmacological, and molecular evidence for alpha7-nicotinic acetylcholine receptors in rat midbrain dopamine neurons. J Pharmacol Exp Ther. 311 (1), 80-91 (2004).
  16. Parikh, V., Ji, J., Decker, M. W., Sarter, M. Prefrontal beta2 subunit-containing and alpha7 nicotinic acetylcholine receptors differentially control glutamatergic and cholinergic signaling. J Neurosci. 30 (9), 3518-3530 (2010).
  17. Nayak, S. V., Dougherty, J. J., McIntosh, J. M., Nichols, R. A. Ca(2+) changes induced by different presynaptic nicotinic receptors in separate populations of individual striatal nerve terminals. J Neurochem. 76 (6), 1860-1870 (2001).
  18. Richards, C. I., et al. Trafficking of alpha4* nicotinic receptors revealed by superecliptic phluorin: effects of a beta4 amyotrophic lateral sclerosis-associated mutation and chronic exposure to nicotine. J Biol Chem. 286 (36), 31241-31249 (2011).
  19. Colombo, S. F., Mazzo, F., Pistillo, F., Gotti, C. Biogenesis, trafficking and up-regulation of nicotinic ACh receptors. Biochem Pharmacol. 86 (8), 1063-1073 (2013).
  20. St John, P. A. Cellular trafficking of nicotinic acetylcholine receptors. Acta Pharmacol Sin. 30 (6), 656-662 (2009).
  21. Zhong, C., et al. Presynaptic type III neuregulin 1 is required for sustained enhancement of hippocampal transmission by nicotine and for axonal targeting of alpha7 nicotinic acetylcholine receptors. J Neurosci. 28 (37), 9111-9116 (2008).
  22. Jacobowitz, D. M., Abbott, L. C. . Chemoarchitectonic Atlas of the Developing Mouse Brain. , (1998).
  23. Betz, W. J., Mao, F., Bewick, G. S. Activity-dependent fluorescent staining and destaining of living vertebrate motor nerve terminals. J Neurosci. 12 (2), 363-375 (1992).
  24. Amaral, E., Guatimosim, S., Guatimosim, C. Using the fluorescent styryl dye FM1-43 to visualize synaptic vesicles exocytosis and endocytosis in motor nerve terminals. Methods Mol Biol. 689, 137-148 (2011).
  25. Garduno, J., et al. Presynaptic alpha4beta2 nicotinic acetylcholine receptors increase glutamate release and serotonin neuron excitability in the dorsal raphe nucleus. J Neurosci. 32 (43), 15148-15157 (2012).
  26. Guo, J. Z., Liu, Y., Sorenson, E. M., Chiappinelli, V. A. Synaptically released and exogenous ACh activates different nicotinic receptors to enhance evoked glutamatergic transmission in the lateral geniculate nucleus. J Neurophysiol. 94 (4), 2549-2560 (2005).
  27. Szabo, S. I., Zelles, T., Vizi, E. S., Lendvai, B. The effect of nicotine on spiking activity and Ca2+ dynamics of dendritic spines in rat CA1 pyramidal neurons. Hippocampus. 18 (4), 376-385 (2008).
check_url/it/52730?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Zhong, C., Talmage, D. A., Role, L. W. Live Imaging of Nicotine Induced Calcium Signaling and Neurotransmitter Release Along Ventral Hippocampal Axons. J. Vis. Exp. (100), e52730, doi:10.3791/52730 (2015).

View Video