We developed a gene-chimeric preparation of ventral hippocampal – accumbens circuit in vitro that allows direct live imaging to analyze presynaptic mechanisms of nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) mediated synaptic transmission. This preparation also provides an informative approach to study the pre- and post-synaptic mechanisms of synaptic plasticity.
Sustained enhancement of axonal signaling and increased neurotransmitter release by the activation of pre-synaptic nicotinic acetylcholine receptors (nAChRs) is an important mechanism for neuromodulation by acetylcholine (ACh). The difficulty with access to probing the signaling mechanisms within intact axons and at nerve terminals both in vitro and in vivo has limited progress in the study of the pre-synaptic components of synaptic plasticity. Here we introduce a gene-chimeric preparation of ventral hippocampal (vHipp)–accumbens (nAcc) circuit in vitro that allows direct live imaging to analyze both the pre- and post-synaptic components of transmission while selectively varying the genetic profile of the pre- vs post-synaptic neurons. We demonstrate that projections from vHipp microslices, as pre-synaptic axonal input, form multiple, reliable glutamatergic synapses with post-synaptic targets, the dispersed neurons from nAcc. The pre-synaptic localization of various subtypes of nAChRs are detected and the pre-synaptic nicotinic signaling mediated synaptic transmission are monitored by concurrent electrophysiological recording and live cell imaging. This preparation also provides an informative approach to study the pre- and post-synaptic mechanisms of glutamatergic synaptic plasticity in vitro.
Cholinergic modulering av kretsen retbarhet bidrar till grundläggande aspekter av kognition, och förändrat kolinerga modulering är en funktion av neurodegenerativa och neuropsykiatriska störningar, inklusive Alzheimers sjukdom, Parkinsons sjukdom, schizofreni och missbruk 1-4. En etablerad mekanism för kolinerga underlättande av synaptisk transmission i CNS är via direkt aktivering av nAChRs lokaliserade vid presynaptiska webbplatser. Aktivering av dessa presynaptiska receptorer leder till ökad intracellulär Ca2 + ([Ca2 +] i) i presynaptiska terminaler – både direkt, på grund av den relativt höga kalcium konduktansen hos vissa nAChR-subtyper, och indirekt, via intracellulära signaleringskaskader 5, och därigenom öka neurotransmittorfrisättning. I själva verket har aktiveringen av presynaptiska nAChRs kopplats till förändringar i frisättning av ett stort antal olika signalsubstanser inklusive glutamat, GABA, ACh, ennd dopamin 6-10. Även om denna process har studerats indirekt med hjälp av elektrofysiologiska metoder vid olika synapser, optiska reportrar i [Ca2 +] i och synaptiska vesikler återvinning möjliggöra mer direkt och tidsmässigt exakt mätning av presynaptiska företeelser.
Pre-synaptiska lokalisering av nAChRs har visats på ett övertygande sätt med direkt immun guld märkning av nAChRs på elektronmikroskopiska (EM) nivå 11,12. Flera andra tekniker har också använts för att behandla nAChR lokalisering indirekt, inklusive detektering placeringarna av nAChRs subunit- fluorescerande proteinchimärer i odlade neuroner 13,14, elektrofysiologiska inspelning av nAChR-strömmar i synaptiska ändarna 15,16, övervakning nikotin inducerade förändringar i [Ca 2 +] i i synaptiska nervterminaler efter levande cell imaging 17, och indirekt kontroll av neurotransmittorfrisättning vid synaptiska terminalen genomlevande cell avbildningstekniker med fluorescerande indikatorer, däribland exocytos av synaptiska vesiklar ses av styrylfärgämnen amfipatiska FM färgämnen (FM1-43 och FM4-64) och / eller synapto-pHluorin och specifika fluorescerande signalsubstans reportrar, såsom CNiFERs för ACh och iGluSnFr för glutamat 18-20. Sammantaget dessa aktuella metoder för att identifiera presynaptisk lokalisering av nAChRs är komplicerade och kräver särskilda system och tekniker för att möjliggöra säker identifiering och fysiologisk övervakning av presynaptisk aktivitet.
Här beskriver vi protokoll och utrustning för ett in vitro samodlingssystemet av en ventrala hippocampus (vHipp) – nucleus accumbens (NACC) krets som ger direkt tillgång till kartlägga och analysera både före och postsynaptiska komponenter i synaptisk transmission. Vi visar exempel på presynaptisk lokalisering av nAChRs och levande cell imaging av nAChR medierad Ca2 + signalering och neurotransmittorfrisättning along vHipp axoner. En naturlig (och enkelt) förlängning av protokollet presenteras här är framställningen av före och efter synaptiska kontakter som består av nervceller från olika genotyper. På detta sätt kan bedömas bidraget av en viss gen produkt till för- och / eller postsynaptiska mekanismer moduleringen direkt.
Det co-kultur preparat som beskrivs åter kapitulerar ventrala hippocampus-accumbens kretsar in vitro. Detta möjliggör en relativt enkel och tillförlitlig undersökning av rumsliga och tidsmässiga profiler genom vilka aktivering av presynaptiska nAChRs framkalla förbättrade glutamaterg transmission 5, 21.
Samodlingar definieras som tillväxten av olika specifika celltyper i en maträtt som kan ge fysiologiska betingelser in vitro för att demonstrera in…
The authors have nothing to disclose.
We thank Yehui Qin and Mallory Myers for technical support. We also thank Dr. Sigismund Huck for providing us the anti-α4-ECD antibody. This work is supported by National Institutes of Health grant NS22061 to L. W. R.
1, Culture Media (50 ml) | |||
Neurobasal | GIBCO | 10888022 | 48 ml |
B-27 Supplements | GIBCO | 0080085-SA | 1 ml |
Penicillin-Streptomycin | GIBCO | 10908-010 | 0.5 ml |
GlutaMAX Supplement | GIBCO | 35050-061 | 0.5 ml |
Brain-derived neurotrophic factor (BDNF) | GIBCO | 15140-122 | 20 ng/ml |
2, washing media (HBSS, 100 ml) | |||
HBSS, no calcium, no magnesium, no phenol red | GIBCO | 14175-095 | 99 ml |
HEPES ( 1M) | GIBCO | 15630-130 | 1 ml |
3, HEPES buffered saline (HBS) pH=7.3 | |||
NaCl | Sigma | S9888 | 135 mM |
KCl | Sigma | P9333 | 5 mM |
MgCl2 | Sigma | M8266 | 1 mM |
CaCl2, | Sigma | C1016 | 2 mM |
HEPES | Sigma | H3375 | 10 mM |
Glucose | Sigma | G0350500 | 10 mM |
4, HBS Cocktail for live imaging pH=7.3 | |||
NaCl | Sigma | S9888 | 135 mM |
KCl | Sigma | P9333 | 5 mM |
MgCl2 | Sigma | M8266 | 1 mM |
CaCl2, | Sigma | C1016 | 2 mM |
HEPES | Sigma | H3375 | 10 mM |
Glucose | Sigma | G0350500 | 10 mM |
tetrodotoxin | Tocris | 1078 | 2 µM |
bicuculline | Tocris | 131 | 10 µM |
D-AP-5 | Tocris | 105 | 50 µM |
CNQX | Tocris | 1045 | 20 µM |
LY341495 | Tocris | 1209 | 10 µM |
5, Calcium-free HBS pH=7.3 | |||
NaCl | Sigma | S9888 | 135 mM |
KCl | Sigma | P9333 | 5 mM |
MgCl2 | Sigma | M8266 | 1 mM |
HEPES | Sigma | H3375 | 10 mM |
Glucose | Sigma | G0350500 | 10 mM |
6, 56 mM Potassium ACSF pH=7.4 | |||
NaCl | Sigma | S9888 | 119 mM |
KCl | Sigma | P9333 | 56 mM |
MgSO4.7H | Sigma | M1880 | 1.3 mM |
CaCl2 | Sigma | C1016 | 2.5 mM |
NaH2PO4 | Sigma | S8282 | 1 mM |
NaHCO3 | Sigma | S5761 | 26.2 mM |
Glucose | Sigma | G0350500 | 10 mM |