Summary

Культивирование мыши сердечных клапанов в миниатюре культуры тканевой системе

Published: October 19, 2015
doi:

Summary

Here, we present an ex vivo flow model in which murine cardiac valves can be cultured allowing the study of the biology of the valve.

Abstract

Heart valve disease is a major burden in the Western world and no effective treatment is available. This is mainly due to a lack of knowledge of the molecular, cellular and mechanical mechanisms underlying the maintenance and/or loss of the valvular structure.

Current models used to study valvular biology include in vitro cultures of valvular endothelial and interstitial cells. Although, in vitro culturing models provide both cellular and molecular mechanisms, the mechanisms involved in the 3D-organization of the valve remain unclear. While in vivo models have provided insight into the molecular mechanisms underlying valvular development, insight into adult valvular biology is still elusive.

In order to be able to study the regulation of the valvular 3D-organization on tissue, cellular and molecular levels, we have developed the Miniature Tissue Culture System. In this ex vivo flow model the mitral or the aortic valve is cultured in its natural position in the heart. The natural configuration and composition of the leaflet are maintained allowing the most natural response of the valvular cells to stimuli. The valves remain viable and are responsive to changing environmental conditions. This MTCS may provide advantages on studying questions including but not limited to, how does the 3D organization affect valvular biology, what factors affect 3D organization of the valve, and which network of signaling pathways regulates the 3D organization of the valve.

Introduction

Болезнь сердца клапан является основной причиной заболеваемости и смертности в западном мире; его распространенность увеличивается с возрастом, и это влияет на более чем 10% населения 75 лет и старше 1. Клапаны системной части сердца, аортального и митрального клапанов, в основном пострадали. Сердечно-сосудистые заболевания клапанов характеризуется потерей высокоорганизованной структуре клапанов, что приводит к изменению механических свойств 2. Структурная целостность Поэтому крайне важно для функции клапана.

Створки клапана состоят из клапанов интерстициальных клеток (ВМЦ), клапанов эндотелиальных клеток (VEC), и внеклеточного матрикса, который высоко организованной в слоистой рисунком 3,4. ВИК отвечают за синтез ЕСМ, деградации и организации. Факторы, исходящий из крови, ЭК или проживающих в ECM действуют на ВИНК оркестровки свою функцию. В дополнение,механические силы действуют на листовке во время сердечного цикла, в результате чего ламинарный или колебательного напряжения сдвига, сжатия или растягивающих напряжений, влияющих на поведение ВИНК 5.

Для того, чтобы понять, как структура клапана регулируется, то сначала следует понимать, как ВИНК реагировать на разнообразный набор стимулов опытных во время сердечного цикла. В пробирке исследования были очень информативными о характеристиках и способностях клапанов клеток. Реакция этих клеток в пробирке, однако, может не всегда точно имитировать ответ в естественных условиях 6; Например, реакция на раздражители VIC зависит от наличия ЭК и ECM состава 5. Кроме того, реакция клапанного клеток на стимулы, зависит от их конкретного места в листовке 7. В дополнение к биохимических раздражителей, поведение клапанных элементов определяется механическими силами, действующими Oп клапан 8. Каждая область клапана подвергается ее собственный набор гемодинамических нагрузок. Хотя нынешние экс естественных условиях модели показали, что механические силы являются важными факторами, определяющими структуру клапанов 5, связанные механизмы до сих пор неясно. В то время как модели в естественных условиях обеспечили понимание молекулярных механизмов, лежащих в основе развития клапанной 9,10, способность проникновения в суть взрослых клапанной биологии до сих пор не удается.

Таким образом, экс виво модель потока была разработана в котором клапаны сердца могут быть культивированы в их естественном положении в центре в течение длительного периода времени 11. Это имеет то преимущество, что клапаны остаются в их естественной конфигурации и ИКС испытать ту же среду, что и в естественных условиях, что делает ответов на стимулы VICS как можно более естественным. Кроме того, культура клапанов в их естественном положении в центре облегчает подвергая другклапанов регион соответствующих гемодинамики напряжений. В этом экс виво модели, т.е. Миниатюрный культуры ткани Система (MTCS), клапаны могут быть подвергнуты различным биохимическим и гемодинамических стимулов, позволяющих исследование их роли в ремоделирования сердца клапана.

Protocol

Этот протокол следует рекомендациям LUMC животного исследования Комитетом по этике. 1. Подготовка инструментов, культура средний и MTCS Примечание: Выполните все препараты в ламинарный. MTCS перфузии камера, пузырь ловушку и стенд описаны в Либер и др., 2010 <su…

Representative Results

Аортального клапана (фиг.2) или митрального клапана 11 можно культивировать в течение по крайней мере 3 дней. Культивированием в открытом положении (которое представляет собой систолическое положение для аортального клапана и диастолического положении для митрального к?…

Discussion

Критические шаги в культивировании клапаны мыши сердечные включают создание времени между удалением сердца от мыши и лигирование в перфузионной камеры как можно короче, чтобы обеспечить жизнеспособность и лигирование иглы перпендикулярно к клапанам, чтобы обеспечить надлежащее нап…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This study is supported by the Dutch Heart Foundation and the Netherlands Institute for Regenerative Medicine.

Materials

Dulbecco’s Modified Eagle Medium life technolgies 10569-010
Fetal Bovine Serum life technolgies 26140
Insulin-Transferrin-Selenium life technolgies 41400-045
Antibiotic-Antimycotic life technolgies 15240-06
Silk 7-0 Ethicon 768G
100 mm culture dish Greiner bio-one 664160
50 ml tube Greiner bio-one 227261
5 ml syringe BD 309649
21 G needle BD 304432
Heparin LEO 012866-08
Forceps Fine Science Tools 11295-00
Micro Scissors, Economy, Vannas-type Tedpella 1346
Silicon tubing Thermo Scientific 8060-0020 I.D. x O.D. x Wall: 1.59 x 3.18 x 0.79 mm
Silicon tubing for pump Masterflex 96400-13 I.D. x O.D. x Wall: 0,8 x1,59 x 0,40 mm
Biocompatible glue (Histoacryl) B. Braun 1050071
precision vaporizer Dräger Vapor 200
peristaltic roller pump Masterflex 7521-35
Easy-load pump head Masterflex 7518-00
Flow chamber see Lieber et al., 2010
Bubble trap see Lieber et al., 2010

Riferimenti

  1. Go, A. S., et al. Heart Disease and Stroke Statistics–2014 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 129, e28-e292 (2013).
  2. Gould, S. T., Srigunapalan, S., Simmons, C. A., Anseth, K. S. Hemodynamic and Cellular Response Feedback in Calcific Aortic Valve Disease. Circulation Research. 113 (2), 186-197 (2013).
  3. Kruithof, B. P. T., Krawitz, S. A., Gaussin, V. Atrioventricular valve development during late embryonic and postnatal stages involves condensation and extracellular matrix remodeling. Developmental biology. 302 (1), 208-217 (2007).
  4. Schoen, F. J. Cardiac valves and valvular pathology: update on function, disease, repair, and replacement. Cardiovascular pathology: the official journal of the Society for Cardiovascular Pathology. 14 (4), 189-194 (2005).
  5. Balachandran, K., Sucosky, P., Yoganathan, A. P. Hemodynamics and mechanobiology of aortic valve inflammation and calcification. International journal of inflammation. , 263870 (2011).
  6. Butcher, J. T., Simmons, C. A., Warnock, J. N. Mechanobiology of the Aortic Heart Valve. The Journal of heart valve disease. 17 (1), 62-73 (2008).
  7. Balachandran, K., Konduri, S., Sucosky, P., Jo, H., Yoganathan, A. P. An ex vivo study of the biological properties of porcine aortic valves in response to circumferential cyclic stretch. Annals of biomedical engineering. 34 (11), 1655-1665 (2006).
  8. Weiler, M., Hwai Yap, C., Balachandran, K., Padala, M., Yoganathan, A. P. Regional analysis of dynamic deformation characteristics of native aortic valve leaflets. Journal of Biomechanics. 44, 1459-1465 (2011).
  9. Combs, M. D., Yutzey, K. E. Heart valve development: Regulatory networks in development and disease. Circulation Research. 105, 408-421 (2009).
  10. Kruithof, B. P. T., Duim, S. N., Moerkamp, A. T., Goumans, M. -. J. TGFβ and BMP signaling in cardiac cushion formation: lessons from mice and chicken. Differentiation; research in biological diversity. 84 (1), 89-102 (2012).
  11. Lieber, S. C., Kruithof, B. P. T., Aubry, N., Vatner, S. F., Gaussin, V. Design of a miniature tissue culture system to culture mouse heart valves. Annals of biomedical engineering. 38 (3), 674-682 (2010).
check_url/it/52750?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kruithof, B. P., Lieber, S. C., Kruithof-de Julio, M., Gaussin, V., Goumans, M. J. Culturing Mouse Cardiac Valves in the Miniature Tissue Culture System. J. Vis. Exp. (104), e52750, doi:10.3791/52750 (2015).

View Video