Summary

Måling av Ekstracellulær Ion Flukser Bruke Ion-selektive selvreferanser microelectrode Technique

Published: May 03, 2015
doi:

Summary

Transporters in cell membranes allow differential segregation of ions across cell membranes or cell layers and play crucial roles during tissue physiology, repair and pathology. We describe the ion-selective self-referencing microelectrode that allows the measurement of specific ion fluxes at single cells and tissues in vivo.

Abstract

Celler fra dyr, planter og enkeltceller er omsluttet av en barriere som kalles cellemembran som skiller cytoplasma fra utsiden. Cellelag slik som epitel danner også en barriere som skiller det indre utenfra eller forskjellige avdelinger av flercellede organismer. Et viktig trekk ved disse barrierene er differensial fordeling av ioner over cellemembranen eller cellelagene. To eiendommer tillate denne fordelingen: 1) membraner og epithelia vise selektiv permeabilitet til spesifikke ioner; 2) ioner transporteres gjennom pumpene over cellemembranen og cellelagene. Disse egenskapene spille viktige roller i å opprettholde vev fysiologi og fungere som signaliserte signaler etter skade, under reparasjonen, eller under patologisk tilstand. Den ion-selektive selvreferanse microelectrode tillater målinger av spesifikke flukser av ioner slik som kalsium, kalium eller natrium ved enkeltcelle og vevsnivåer. Den microelectrode inneholder en ionofor cocktail som erselektivt gjennomtrengelig for et bestemt ion. Den indre fyllingsoppløsning inneholder et sett konsentrasjon av det ion av interesse. Det elektriske potensial til mikroelektroden bestemmes av utsiden konsentrasjonen av ionet. Som ione-konsentrasjonen varierer, potensialet i microelectrode forandrer seg som en funksjon av logaritmen av ioneaktivitet. Når den beveges frem og tilbake i nærheten av en kilde eller vask av det ion (dvs. i en konsentrasjonsgradient på grunn ionefluks) mikroelektroden potensialet svinger ved en amplitude som er proporsjonal med ionefluks / gradient. Forsterkeren forsterker microelectrode signalet og utgangssignalet er innspilt på maskinen. Den ionefluks kan da beregnes ved Ficks diffusjonslov ved hjelp av elektrodepotensialet svingning, ekskursjon til mikroelektroden, og andre parametere som for eksempel det spesifikke ion mobilitet. I denne artikkelen beskriver vi i detalj metodikken for å måle ekstracellulære ion flukser bruker ion-selektive selvreferanse microelectrode end presentere noen representative resultater.

Introduction

Alle dyreceller er omgitt av et lipidbilag membran som separerer cytoplasma fra omgivelsene utenfor. Cellen opprettholder et elektrisk membranpotensiale, negative innsiden, ved aktiv transport av ioner 1. Membranen er en potensiell energikilde som er lagret i cellen kan bruke til å drive ulike molekylære enheter i membranen 2. Nevroner og andre hissige celler har store membranpotensialer. Hurtig åpning av natriumkanaler kollapser membranpotensialet (depolarisering) og produserer virkningspotensialet som transporteres langs lengden av neuron 2. Bortsett fra disse raske elektriske forandringer, mange vev og organer generere og opprettholde betydelige langsiktige elektriske potensialer. For eksempel, hud og hornhinnen epitel generere og vedlikeholde trans-epitelceller potensialer og ekstracellulære elektrisk strøm ved retnings pumping av ioner (hovedsakelig natrium og klorid) 3.

telt "> Mens målinger av endogene ekstracellulære elektrisk strøm ved hjelp av den vibrerende sonde 4-6 og målinger av membran eller trans-epitel potensialer ved hjelp av microelectrode systemet 7-10 tillater måling av de elektriske parametre av cellemembraner og epiteliale cellelag, gir de ingen angivelse av de ion-artene som er involvert.

Mikroelektroder med selektiv ionofor kan måle spesifikke ion-konsentrasjonen i oppløsningen. Ion-gradienter eller flussmiddel kunne måles med to eller flere elektroder i forskjellige posisjoner. Imidlertid vil den iboende spenningen drift av hver sonde være forskjellig, noe som fører til unøyaktige målinger eller til påvisning av en gradient som ikke var til stede. En enkelt elektrode som brukes i "selvreferer" -modus hvor den beveger seg med lav frekvens mellom to punkter løser dette problemet. Nå er ionefluks kan sees på bakgrunn av en forholdsvis langsom og stabilt signal drift (se figur 3B). </p>

Den ion-sensitive målesystemet bruker ion-selektive selvreferanser mikroelektroder å oppdage små ekstracellulære fluks av ioner nær vev eller enkeltceller. Systemet består av en forsterker som behandler signalet fra mikroelektrode, og en mikro-stepper motor og driver for å styre bevegelsen til mikroelektroden. Den ion-selektive mikroelektroden og referanseelektroden som lukker kretsen er koblet til forsterkeren via en heads pre-forsterker (figur 1A). Datamaskinprogrammet bestemmer parametrene til mikroelektroden bevegelse (frekvens, avstand) og registrerer også utgangen fra forsterkeren. Trinnmotoren styrer microelectrode bevegelsen via en tredimensjonal micropositioner. En lavfrekvent vibrasjons ioneselektiv microelectrode ble først utviklet i 1990 for å måle spesifikk kalsiumflukssignal 11. Samt kalsium, kommersielt tilgjengelige ionofor cocktailer er nå tilgjengelig for å gjøre microelectrodes følsom for natrium, klorid, kalium, hydrogen, magnesium, nitrat, ammonium, fluorid, litium eller kvikksølv.

I utgangspunktet, omdanner selvreferanse ioneselektiv microelectrode teknikk aktiviteten til et bestemt ion oppløst i en løsning i et elektrisk potensial, noe som kan måles ved hjelp av et voltmeter. Ionoforen cocktail er en ikke-blandbare væsker (organisk, lipofile) fase med ion-exchange egenskaper. Ionoforen selektivt komplekser (binder) spesifikke ioner reversibelt og overfører dem mellom den vandige oppløsning inneholdt i mikroelektrode (elektrolytt) og den vandige oppløsning hvori mikroelektroden er neddykket (figur 1D). Dette ion overføring fører til en elektrokjemisk likevekt og en variant av det elektriske potensial mellom mikroelektroden og referanseelektroden måles av voltmeteret. Spenningen er proporsjonal med logaritmen av den spesifikke ion aktivitet i henhold til Nernst equation tillater beregning av ione-konsentrasjonen (figur 2A og B).

I dag flere systemer tillater måling av ionefluks ved hjelp av et lignende konsept og prinsipp. For eksempel skanne Ion-selektive elektrode Technique (siet) 12,13 eller microelectrode Ion Flux Estimering (mife) teknikk utviklet av Newman og Shabala 14-16 er kommersielt tilgjengelig og mye brukt av forskersamfunnet for å kunne fastslå bestemt ion belegg skjer på cellemembranen og vev på tvers av en rekke dyr, planter og enkelt levende cellemodeller. Ion-selektive mikroelektroder er blitt brukt til å måle hydrogen, kalium og kalsium-fluks på tvers av planterøttene 17, klorid flussmiddel i rottehjernearteriene 18 og i pollen rør 19, hydrogen fluks i skatenetthinneceller 20, kalsium fluks i mus ben 21, en ​​rekke Ion flukser i soppens hyfer 22 og i rpå hornhinnen 23, og til slutt kalsium flux under enkelt celle sårtilheling 12,24. Se også følgende vurdering for detaljert informasjon om ion-selektive selvreferanser mikroelektroder 25.

Den følgende artikkelen beskriver i detalj hvordan du kan forberede og utføre måling av endogene ekstracellulære ion flukser bruker ion-selektive selvreferanse microelectrode teknikk på celle-nivå.

Protocol

1. Ion-selektive selvreferanser microelectrode Forberedelse Utarbeidelse av ioneselektiv microelectrode Varme trekke tynnveggede kapillærer borsilikat uten filament (1,5 mm ytre diameter, 1,12 mm indre diameter) med en mikroelektrode avtrekker. Merk: Dette gir tips 3-4 mikrometer i diameter. Mindre spissene har høyere motstand som gjør mikroelektroder mer utsatt for elektronisk støy, og er også forbundet med en langsommere respons til en endring i ionekonsentrasjon. Nyttig informasjon fin…

Representative Results

Vi har tidligere vist at kalsium tilstrømningen vises etter enkelt celle såret 24. Vi ba derfor om andre ion fluks oppstå ved enkelt celle såret. Vi brukte X. laevis eggcelle, en veletablert modell for enkelt celle sårtilheling 30-34 og elektrofysiologisk registrering 24,35-39. Interessant, kalium ioner er mer konsentrert inne X. laevis oocytter (ca. 110 mm) 40 enn i det ekstracellulære oppløsning som anvendes (i MMR 1x: 1 mM), og antyder en utstrømni…

Discussion

De mest kritiske trinn for vellykket måling av ekstracellulære ion flukser in vivo er: reduksjon av støy, er den riktige fremstillingen av ion-selektive mikroelektroder og referanseelektrode, og posisjoneringen av prøven og begge elektroder.

For å minimalisere støy, bør registreringssystemet være i en jordet (jordet) Faraday-bur, fortrinnsvis med et metall-toppet (vibrasjonsisolasjon) tabell som også er jordet. I tillegg bør mikroskopet understellet også være jordet. Kil…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Science Foundation grant MCB-0951199, and in part by the NIH grant EY01910, California Institute of Regenerative Medicine grants RB1-01417 and by the Fundação para a Ciência e Tecnologia (FCT) grant SFRH/BD/87256/2012.

Materials

IonAmp   BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none amplifier created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
IonAmp32   BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none software created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Headstage pre-amplifier  BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA INA116 BSR Voltage Follower INA116, designed by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
MicroStep Driver  BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA none three MicroStep drivers are required for X, Y and Z-positioning; created by the BioCurrents Research Center, Woods Hole, MA, USA; Similar system can be purchased from “XBL function matters” (http://www.xuyue.org/) or from “YoungerUSA” (http://www.youngerusa.com/) or from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Manual micropositioner   World Precision Instruments  Model KITE-R Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Magnetic stand    World Precision Instruments Model M10 Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Vibration isolation table   Newport Inc.      Model VW-3036-OPT-023040 Similar system can be purchased from Applicable Electronics(http://www.applicableelectronics.com/)
Part of three dimentional micropositioner: angle bracket, 90°, slotted faces Newport Inc.      Model 360-90 Assemblage of the three dimantionnal micropositionner requires also Three electric rotary motors for X, Y, Z control, MPH-1 mounting arm with MCA-2 adjustable-angle post and Various Newport connectors and screws to bolt onto vibration table
Part of three dimentional micropositioner: Peg-Joining Dovetail Stage 0.5 inch X Travel Newport Inc.      460PD-X none
Part of three dimentional micropositioner: Quick-Mount Linear Stage, 0.5 inch XY Travel Newport Inc. 460A-XY none
Kwik-Fil thin walled borosilicate glass capillaries without filament  World Precision Instruments  TW150-4 none
Electrode puller  Narishige  PC-10 none
Metal rack Made in-house none Metal electrode holder made in-house by drilling 2 mm wide holes half centimeter spaced in a 10cm by 15cm rectangular base of steel
Oven QL Model 10 Lab Oven none
Silanization solution I  Sigma-Aldrich 85126 Hazardous, handle as recommended by provider 
Glass Petri dish; Pyrex Fisher Scientific 316060 none
Electrode/micropipette storage jar World Precision Instruments  E215 none
Glass dessicator Fisher Scientific 08-595E Contains Drierite dessicant (W.A. Hammond Drierite Co. Ltd, Xenia, OH, USA). Place petroleum jelly on the seal to make it airtight.
Plastic Pasteur pipette  Fisher Scientific 11597722 none
Bunsen burner Fisher Scientific S97329 none
Microscope slide Sigma-Aldrich S8902 none
Straight microelectrode holder Warner Instruments QSW-A15P with a gold 1 mm male connector and Ag/AgCl wire
Straight microelectrode holder  World Precision Instruments MEH3S with a AgCl(Ag+)pellet inside and a gold 2 mm male connector 
6 cm Petri dish VWR 60872-306 none
Nitex mesh Dynamic Aqua-Supply Ltd. NTX750 none
Glue; Loctite epoxy VWR 500043-451 Mix glue and hardener in equal parts in a plastic weighing boat and mix thoroughly. Sets quickly but leave at RT for 24 h for full curing
Deionized water  Sigma-Aldrich 99053 none
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653 none
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P9333 none
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C1016 none
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M8266 none
Hepes Sigma-Aldrich H3375 none
Sodium Hydroxyde Sigma-Aldrich S8045 none
Potassium Acetate Sigma-Aldrich P1190 none
Agarose Sigma-Aldrich A9539 none

Riferimenti

  1. Weber, W. M., Liebold, K. M., Clauss, W. Amiloride-sensitive Na+ conductance in native Xenopus oocytes. Biochimica et biophysica acta. 1239, 201-206 (1995).
  2. McCaig, C. D., Song, B., Rajnicek, A. M. Electrical dimensions in cell science. Journal of cell science. 122, 4267-4276 (2009).
  3. Zhao, M. Electrical fields in wound healing-An overriding signal that directs cell migration. Seminars in cell & developmental biology. 20, 674-682 (2009).
  4. Jaffe, L. F., Nuccitelli, R. An ultrasensitive vibrating probe for measuring steady extracellular currents. The Journal of cell biology. 63, 614-628 (1974).
  5. Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe. Nature protocols. 2, 661-669 (2007).
  6. Reid, B., Zhao, M. Measurement of bioelectric current with a vibrating probe. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).
  7. Neher, E., Sakmann, B. Single-channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle fibres. Nature. 260, 799-802 (1976).
  8. Moore, J. W. The patch clamp: single-channel recording. Science. 224, 50-51 (1984).
  9. Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. Patch clamp recording of ion channels expressed in Xenopus oocytes. Journal of visualized experiments. , (2008).
  10. McCaig, C. D., Robinson, K. R. The ontogeny of the transepidermal potential difference in frog embryos. Developmental biology. 90, 335-339 (1982).
  11. Kuhtreiber, W. M., Jaffe, L. F. Detection of extracellular calcium gradients with a calcium-specific vibrating electrode. The Journal of cell biology. 110, 1565-1573 (1990).
  12. Cai, G., Cresti, M., Moscatelli, A. The use of the vibrating probe technique to study steady extracellular currents during pollen germination and tube growth. Fertilisation in Higher Plants: molecular and cytological aspects. , 235-252 (1999).
  13. Kunkel, J. G., Xu, Y., Shipley, A. M., Feijó, J. A. The use of non-invasive ion-selective microelectrode techniques for the study of plant development. Plant Electrophysiology – Theory and Methods. (ed Volkov AG. , 109-137 (2006).
  14. Ordonez, N. M., Shabala, L., Gehring, C., Shabala, S. Noninvasive microelectrode ion flux estimation technique (MIFE) for the study of the regulation of root membrane transport by cyclic nucleotides. Methods in molecular biology. 1016, 95-106 (2013).
  15. Tegg, R. S., Melian, L., Wilson, C. R., Shabala, S. Plant cell growth and ion flux responses to the streptomycete phytotoxin thaxtomin A: calcium and hydrogen flux patterns revealed by the non-invasive MIFE technique. Plant & cell physiology. 46, 638-648 (2005).
  16. Newman, I. A. Ion transport in roots: measurement of fluxes using ion-selective microelectrodes to characterize transporter function. Plant, cell & environment. 24, 1-14 (2001).
  17. Kochian, L. V., Shaff, J. E., Kuhtreiber, W. M., Jaffe, L. F., Lucas, W. J. Use of an extracellular, ion-selective, vibrating microelectrode system for the quantification of K(+), H (+), and Ca (2+) fluxes in maize roots and maize suspension cells. Planta. 188, 601-610 (1992).
  18. Doughty, J. M., Langton, P. D. Measurement of chloride flux associated with the myogenic response in rat cerebral arteries. The Journal of physiology. 534, 753-761 (2001).
  19. Messerli, M. A., Smith, P. J., Lewis, R. C., Robinson, K. R. Chloride fluxes in lily pollen tubes: a critical reevaluation. The Plant journal : for cell and molecular biology. 40, 799-812 (2004).
  20. Molina, A. J., et al. Neurotransmitter modulation of extracellular H+ fluxes from isolated retinal horizontal cells of the skate. The Journal of physiology. 560, 639-657 (2004).
  21. Marenzana, M., Shipley, A. M., Squitiero, P., Kunkel, J. G., Rubinacci, A. Bone as an ion exchange organ: evidence for instantaneous cell-dependent calcium efflux from bone not due to resorption. Bone. 37, 545-554 (2005).
  22. Lew, R. R. Ionic currents and ion fluxes in Neurospora crassa hyphae. Journal of experimental botany. 58, 3475-3481 (2007).
  23. Vieira, A. C., et al. Ionic components of electric current at rat corneal wounds. PloS one. 6, e17411 (2011).
  24. Luxardi, G., Reid, B., Maillard, P., Zhao, M. Single cell wound generates electric current circuit and cell membrane potential variations that requires calcium influx. Integrative biology : quantitative biosciences from nano to macro. 6, 662-672 (2014).
  25. Smith, P. J. S., Sanger, R. H., Messerli, M. A., Michael, A. C., Borland, L. H. . Electrochemical Methods for Neuroscience. , (2007).
  26. Smith, P. J., Hammar, K., Porterfield, D. M., Sanger, R. H., Trimarchi, J. R. Self-referencing, non-invasive, ion selective electrode for single cell detection of trans-plasma membrane calcium flux. Microscopy research and technique. 46, 398-417 (1999).
  27. Messerli, M. A., Smith, P. J. Construction theory, and practical considerations for using self-referencing of Ca(2+)-selective microelectrodes for monitoring extracellular Ca(2+) gradients. Methods in cell biology. 99, 91-111 (2010).
  28. Chambers, J., Hastie, T., Pregibon, D., Momirović, K., Mildner, V. Ch. 48. Compstat. , 317-321 (1990).
  29. Chambers, J. M., Cleveland, W. S., Kleiner, B., Tukey, P. A. . Graphical methods for data analysis. , (1983).
  30. Burkel, B. M., Benink, H. A., Vaughan, E. M., von Dassow, G., Bement, W. M. A Rho GTPase signal treadmill backs a contractile array. Developmental cell. 23, 384-396 (2012).
  31. Bement, W. M., Mandato, C. A., Kirsch, M. N. Wound-induced assembly and closure of an actomyosin purse string in Xenopus oocytes. Current biology : CB. 9, 579-587 (1999).
  32. Mandato, C. A., Bement, W. M. Contraction and polymerization cooperate to assemble and close actomyosin rings around Xenopus oocyte wounds. The Journal of cell biology. 154, 785-797 (2001).
  33. Benink, H. A., Bement, W. M. Concentric zones of active RhoA and Cdc42 around single cell wounds. The Journal of cell biology. 168, 429-439 (2005).
  34. Simon, C. M., Vaughan, E. M., Bement, W. M., Edelstein-Keshet, L. Pattern formation of Rho GTPases in single cell wound healing. Molecular biology of the cell. 24, 421-432 (2013).
  35. Petersen, C. C., Dupont, G. The initiation of a calcium signal in Xenopus oocytes. Cell calcium. 16, 391-403 (1994).
  36. Horisberger, J. D., Lemas, V., Kraehenbuhl, J. P., Rossier, B. C. Structure-function relationship of Na,K-ATPase. Annual review of physiology. 53, 565-584 (1991).
  37. Miledi, R. A calcium-dependent transient outward current in Xenopus laevis oocytes. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Containing papers of a Biological character. Royal Society. , 491-497 (1982).
  38. Miledi, R., Parker, I. Chloride current induced by injection of calcium into Xenopus oocytes. The Journal of physiology. 357, 173-183 (1984).
  39. Parker, I., Miledi, R. A calcium-independent chloride current activated by hyperpolarization in Xenopus oocytes. Proceedings of the Royal Society of London. Series B, Containing papers of a Biological character. Royal Society. 233, 191-199 (1988).
  40. Costa, P. F., Emilio, M. G., Fernandes, P. L., Ferreira, H. G., Ferreira, K. G. Determination of ionic permeability coefficients of the plasma membrane of Xenopus laevis oocytes under voltage clamp. The Journal of physiology. 413, 199-211 (1989).
  41. Adams, D. S., Levin, M. General principles for measuring resting membrane potential and ion concentration using fluorescent bioelectricity reporters. Cold Spring Harbor protocols. 2012, 385-397 (2012).
  42. Porterfield, D. M. Measuring metabolism and biophysical flux in the tissue, cellular and sub-cellular domains: recent developments in self-referencing amperometry for physiological sensing. Biosensors. 22, 1186-1196 (2007).
  43. McLamore, E. S., et al. A self-referencing glutamate biosensor for measuring real time neuronal glutamate flux. Journal of neuroscience methods. 189, 14-22 (2010).
  44. Yin, M., et al. Highly sensitive and fast responsive fiber-optic modal interferometric pH sensor based on polyelectrolyte complex and polyelectrolyte self-assembled nanocoating. Analytical and bioanalytical chemistry. 399, 3623-3631 (2011).
  45. Chatni, M. R., Porterfield, D. M. Self-referencing optrode technology for non-invasive real-time measurement of biophysical flux and physiological sensing. The Analyst. 134, 2224-2232 (2009).
  46. McLamore, E. S., Jaroch, D., Chatni, M. R., Porterfield, D. M. Self-referencing optrodes for measuring spatially resolved, real-time metabolic oxygen flux in plant systems. Planta. 232, 1087-1099 (2010).
  47. McLamore, E. S., et al. A self referencing platinum nanoparticle decorated enzyme-based microbiosensor for real time measurement of physiological glucose transport. Biosensors & bioelectronics. 26, 2237-2245 (2011).
check_url/it/52782?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Luxardi, G., Reid, B., Ferreira, F., Maillard, P., Zhao, M. Measurement of Extracellular Ion Fluxes Using the Ion-selective Self-referencing Microelectrode Technique. J. Vis. Exp. (99), e52782, doi:10.3791/52782 (2015).

View Video