The method described here is used to induce the apoptotic signaling cascade at defined steps in order to dissect the activity of an anti-apoptotic bacterial effector protein. This method can also be used for inducible expression of pro-apoptotic or toxic proteins, or for dissecting interference with other signaling pathways.
Teknikken præsenteres her tillader en at analysere på hvilket trin et målprotein, eller alternativt et lille molekyle, interagerer med komponenterne i en signalvej. Fremgangsmåden er baseret på den ene side, på den inducerbare ekspression af et specifikt protein til at indlede en signalhændelse ved en defineret og forudbestemt trin i den valgte signaleringskaskaden. Samtidig ekspression, på den anden side, af genet af interesse tillader derefter undersøgeren at vurdere, om aktiviteten af det udtrykte målprotein er placeret opstrøms eller nedstrøms for den indledte signalering begivenhed, afhængigt af udlæsning af signalvejen, som opnås. Her blev den apoptotiske kaskade udvalgt som defineret signalvej at påvise protokol funktionalitet. Patogene bakterier, såsom Coxiella burnetii, translokere effektor proteiner som interfererer med værten celledødsinduktion i værtscellen for at sikre bakteriel overlevelse i cellen og til at fremme deresudbredelse i organismen. C. burnetii effektor-protein CaeB effektivt inhiberer vært celledød efter induktion af apoptose med UV-lys eller med staurosporin. At indsnævre hvor trin CaeB forstyrrer udbredelsen af den apoptotiske signal, blev udvalgte proteiner med velkarakteriserede pro-apoptotiske aktivitet udtrykkes transient i en doxycyclin-inducerbar måde. Hvis CaeB virker opstrøms for disse proteiner, vil apoptose fortsætte uhindret. Hvis CaeB virker nedstrøms, vil celledød inhiberes. Testproteinerne udvalgte var Bax, der virker på niveauet for mitokondrierne, og caspase 3, som er den største bøddel protease. CaeB forstyrrer celledød induceret af Bax-ekspression, men ikke af caspase 3-ekspression. CaeB således interagerer med den apoptotiske kaskade mellem disse to proteiner.
Virulensen af mange Gram-negative bakterielle patogener afhænger specialiserede sekretionssystemer at kapre eukaryote værtsceller. Bakterier bruger disse sekretionssystemer at injicere bakterielle virulens proteiner (effektorer) ind i værtscellen til at modulere en række cellulære og biokemiske aktiviteter. Studiet af effektor proteiner har ikke kun givet bemærkelsesværdige indsigt i grundlæggende aspekter af vært / patogen interaktioner, men også ind i den grundlæggende biologi eukaryote celler 1. Modulering af værtscelle apoptose har vist sig at være en vigtig virulens mekanisme for mange intracellulære patogener, og en række effektorproteiner modulerende apoptose er blevet identificeret 2-9. Men deres nøjagtige molekylære mekanismer for aktivitet forbliver undvigende i mange tilfælde.
Apoptose, en form for programmeret celledød, spiller en vigtig rolle i immunresponser på infektion 10. To vigtige veje, der fører til apoptose harblevet identificeret: målretning mitokondrierne (intrinsisk apoptose) eller direkte transduktion af signalet via celledød-receptorer på plasmamembranen (extrinsic apoptose). Den iboende eller mitokondrier-medieret celledød pathway udløses af intracellulære signaler og involverer aktiveringen af Bax og Bak, to pro-apoptotiske medlemmer af Bcl-2-familien. Denne familie består af pro- og anti-apoptotiske regulator proteiner, der styrer celledød 11-14. Aktivering af apoptose fører til oligomerisering af Bax og Bak efterfulgt af efterfølgende permeabilisering af den mitokondriske ydre membran, hvilket resulterer i cytochrom c-frigivelse i cytoplasmaet. Cytochrom C frigivelse initierer aktivering af effektor-caspaserne 3 og 7 gennem aktivering af caspase 9 i apoptosome 15. Dette fører til proteolyse af udvalgte substrater, der blandt andet resulterer i eksponeringen af phosphatidylserin på celleoverfladen 16 og frigør en dedikeret DNase at fragmenter chromatin 17,18.
For at afgøre, hvor i den apoptotiske kaskade en individuel effektor-protein interfererer blev et inducerbart ekspressionssystem 19. Reguleringssystemer til betinget udtryk af transgener har været et uvurderligt værktøj i at analysere et proteins funktion i cellen eller dens betydning for væv, orgel og organisme udvikling, samt under initiering, progression og vedligeholdelse af sygdom 20-23. Typisk inducerbare kontrolsystemer, såsom Tet-systemet 24 anvendes her, danner en kunstig transkriptionsenhed (se figur 1). En komponent er et kunstigt manipuleret transkriptionsfaktor kaldet tTA (tetracyclin-afhængig transskription aktivator), dannet ved fusion af det bakterielle transkription repressor TetR 25 til et pattedyrprotein domæne, som medierer transkriptionel aktivering eller silencing 24,26. Den anden komponent er en hybridpromotor, betegnet TRE (tetracyklin-responsivt element), der består af en eukaryot minimal promotor, der indeholder mindst en TATA-box og et transskriptionsinitieringssted, forbundet til flere gentagelser af beslægtede DNA-bindingssted for TetR, tetO 24,25. Den tredje komponent er den naturlige ligand af TetR, tetracyclin eller et af dets derivater, såsom anhydrotetracycline eller doxycyklin 25. Efter ligand tilsætning til dyrkningsmediet, TetR mister dets affinitet for tetO og dissocierer fra TRE. Som følge heraf er transkription af målgenet afskaffet. Transgen ekspression kan således blive tæt kontrolleret på en tids- og dosisafhængig måde i både cellekultur og i dyr 20,23,24. Med tTA, transgen ekspression forekommer konstitutivt, undtagen i nærvær af en tetracyclin. Dette kan være en ulempe i studiet af cytotoksiske eller onkogene proteiner, fordi tetracyclin først skal fjernes fra systemet, før transgen expression forekommer, og målproteinet virkninger på cellen kan overvåges. Dette kan være tidskrævende og er ikke altid fuldstændig, især i transgene dyr 27. For at løse denne begrænsning blev en TetR mutant med en invers reaktion på tilstedeværelsen af doxycyclin anvendes til at generere en ny transkriptionsfaktor, rtTA (revers tTA) 28. Det binder kun til TRE og, samtidigt, aktiverer transkription i nærvær af doxycyclin. Resterende utæthed i systemet, dvs.., Transgenekspression i fravær af TRE-bundet transkriptionsfaktor, oprindelse enten (i) fra positionseffekter på et genomisk integration site, (ii) fra TRE selv 29, eller (iii) fra ikke -specifikke binding af tTA / rtTA 28, blev behandlet ved at indføre en yderligere transkriptionel lyddæmper, betegnet TTS (tetracyclin-afhængig transskriptionel lyddæmper) 30 til systemet. Det danner et dobbelt regulator nettet sammen med rtTA (se figur 1).I mangel af doxycyclin, TTS bindes til TRE og aktivt lukker ned resterende transskription. I nærvær af doxycyclin, TTS dissocierer fra TRE og rtTA binder samtidigt inducere ekspression af målgenet. Dette ekstra lag af stringens er ofte nødvendigt at udtrykke meget aktive cytotoksiske proteiner 31-34.
Brug af denne tæt kontrolleret dobbelt regulator system kan initieres den apoptotiske kaskade ved en defineret trin tillader analyse af, om den givne effektor-protein kan interferere med apoptose induktion. Denne metode kan ikke kun anvendes til at studere den anti-apoptotiske aktivitet af bakterielle effektor proteiner, men også for den inducerbare ekspression af pro-apoptotiske eller toksiske proteiner eller til dissekere interferens med andre signalveje.
Mange patogene bakterier harbor sekretionssystemer til at udskille eller translokere bakterielle effektor proteiner i værtscellen. Disse effektor proteiner har evnen til at modulere processer og veje i værtscellen, hvilket tillader bakterier at overleve og formere sig i deres respektive intracellulære niche. Forståelse af de biokemiske aktiviteter og de molekylære mekanismer i de effektor proteiner vil hjælpe til en bedre forståelse af patogenicitet og kan bidrage til at udvikle nye terapeutiske redskaber til at …
The authors have nothing to disclose.
This work was supported by the Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) through the Collaborative Research Initiative 796 (SFB796) to A.L. and C.B., and through the ERA-NET PathoGenoMics 3rd call to A.L.
DMEM | life technologies | 31966-021 | |
FCS | Biochrom | S0115 | |
Pen/Strep | life technologies | 15140-122 | |
OptiMEM | life technologies | 51985 | |
X-tremeGENE 9 | Roche | 6365752001 | |
Geneticin | Roth | CP11.3 | |
Polyethylenimine | Polyscienes | 23966 | |
Doxycycline | Sigma Aldrich | D9891 | |
Mini-PROTEAN Tetra Cell | Bio-Rad | 165-8000EDU | |
Trans-Blot SD Semi-Dry Transfer Cell | Bio-Rad | 170-3940 | |
PageRuler Prestained Protein Ladder | Thermo Scientific | 26616 | |
PVDF membrane | Millipore | IPVH00010 | |
anti-GFP | life technologies | A6455 | |
anti-cleaved PARP | BD Bioscience | 611038 | |
anti-actin | Sigma Aldrich | A2066 | |
Mouse IgG (H+L)-HRPO | Dianova | 111-035-062 | |
Rabbit IgG (H+L)-HRPO | Dianova | 111-035-045 | |
ECL Western Blotting Substrate | Thermo Scientific | 32106 | |
Restore Plus Western Blot Stripping Buffer | Thermo Scientific | 46428 |