Summary

ठोस लिपिड नैनोकणों (SLNs) Intracellular लक्ष्य निर्धारण के लिए एप्लीकेशन

Published: November 17, 2015
doi:

Summary

In this study, a method for synthesizing ultra-small populations of biocompatible nanoparticles was described, as well as several in vitro methods by which to assess their cellular interactions.

Abstract

Nanoparticle-based delivery vehicles have shown great promise for intracellular targeting applications, providing a mechanism to specifically alter cellular signaling and gene expression. In a previous investigation, the synthesis of ultra-small solid lipid nanoparticles (SLNs) for topical drug delivery and biomarker detection applications was demonstrated. SLNs are a well-studied example of a nanoparticle delivery system that has emerged as a promising drug delivery vehicle. In this study, SLNs were loaded with a fluorescent dye and used as a model to investigate particle-cell interactions. The phase inversion temperature (PIT) method was used for the synthesis of ultra-small populations of biocompatible nanoparticles. A 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenylphenyltetrazolium bromide (MTT) assay was utilized in order to establish appropriate dosing levels prior to the nanoparticle-cell interaction studies. Furthermore, primary human dermal fibroblasts and mouse dendritic cells were exposed to dye-loaded SLN over time and the interactions with respect to toxicity and particle uptake were characterized using fluorescence microscopy and flow cytometry. This study demonstrated that ultra-small SLNs, as a nanoparticle delivery system, are suitable for intracellular targeting of different cell types.

Introduction

Nanoparticle आधारित वितरण वाहनों विशेष सेलुलर संकेत और जीन अभिव्यक्ति को बदलने के लिए एक तंत्र प्रदान करने, इंट्रासेल्युलर को लक्षित अनुप्रयोगों के लिए महान वादा दिखाया है। इन वाहनों को दवाओं, प्रोटीन, और सेलुलर प्रतिक्रियाओं के प्रभाव और लक्ष्य ऊतकों में एक वांछित प्रभाव को प्राप्त करने के लिए डिज़ाइन किया गया न्यूक्लिक एसिड के साथ लोड किया जा सकता है। Nanocarriers से कई प्रकार के लिपिड, पॉलिमर, सिलिकॉन, और चुंबकीय सामग्री सहित चिकित्सीय और नैदानिक ​​लाभ के लिए पता लगाया गया है। इन पद्धतियों के कारण चिकित्सीय लक्ष्य ऊतकों में एकाग्रता, और प्रणालीगत विषाक्तता की कमी वृद्धि हुई स्थानीयकृत दवा वितरण के लिए अपनी क्षमता, के लिए आकर्षक हैं।

ठोस लिपिड नैनोकणों (SLNs) हाल के वर्षों में एक होनहार दवा वितरण वाहन के रूप में उभरा है कि एक nanoparticle वितरण प्रणाली की एक अच्छी तरह से अध्ययन उदाहरण हैं। SLNs आसानी से जैव संवेदन 1, सौंदर्य प्रसाधन 2, और टी सहित कई अनुप्रयोगों के लिए तैयार किया जा सकताherapeutic वितरण 3-7। उनकी उपयोगिता वे बढ़ाया biocompatibility, जिसके परिणामस्वरूप resorbable nontoxic, लिपिड की पूरी तरह से शामिल कर रहे हैं कि इस तथ्य से उपजा है। संश्लेषण के दौरान, lipophilic दवाओं जिससे parenteral प्रशासन के लिए दवा घुलनशीलता और उपयुक्तता बढ़ रही है, SLN वाहनों में शामिल किया जा सकता है। SLN वाहनों को भी उनके गिरावट और निकासी को कम करने, और उपचारात्मक कार्रवाई को अधिकतम समझाया चिकित्सा विज्ञान को स्थिर करने में मदद करते हैं। इन वाहनों की वजह से शरीर का तापमान 3,4,8,9 पर उनकी स्थिरता के लिए विशेष रूप से लंबे समय तक अभिनय, नियंत्रित रिहाई की तैयारी के लिए अच्छी तरह से अनुकूल है। महत्वपूर्ण बात है, लिपिड नैनोकणों में दवाओं के encapsulation दवा अणुओं की आंतरिक फ़ार्माकोकायनेटिक प्रोफाइल बदल। यह एक संकीर्ण चिकित्सीय सूचकांक के साथ दवाओं की नियंत्रित रिहाई की अनुमति देकर एक संभावित लाभ प्रदान करता है। SLN-निगमित चिकित्सा विज्ञान की रिहाई की दर देखते लिपिड गिरावट की दर या में नशीली दवाओं के प्रसार दर के आधार पर की जा सकती हैलिपिड मैट्रिक्स।

SLNs अक्सर विशिष्ट लक्ष्य ऊतकों में जमा करने के लिए इंजीनियर हैं। उदाहरण के लिए, उनके आकार (आमतौर पर अधिक से अधिक 10 एनएम) ट्यूमर के ऊतक के टपकाया वाहिका बयान की सुविधा जहां परिसंचरण में प्रतिधारण potentiates। इसके अलावा, कण प्रशासन के मार्ग में इस तरह के लिम्फ नोड्स 10,11 के रूप में विशिष्ट शारीरिक संरचनाओं को निशाना बनाने की क्षमता के साथ biodistribution को बदलने के लिए दिखाया गया है। लक्ष्य ऊतकों में बयान, उचित सेलुलर बातचीत को प्राप्त करने और नैनोकणों के अंतिम internalization पर कारण चुनिंदा में और सेल 12 में से आयनों और अणुओं के प्रवाह को नियंत्रित करने के लिए कोशिका झिल्ली की क्षमता को चुनौती दे रहा है। सेलुलर तेज की सुविधा के लिए, यह पेप्टाइड्स, छोटे अणुओं, और मोनोक्लोनल एंटीबॉडी 13,14 सहित विशिष्ट ligands के साथ nanocarriers को संशोधित करने के लिए संभव है। निष्क्रिय पैठ और नैनोकणों के सक्रिय परिवहन सहित दोनों कई तंत्रकोशिका झिल्ली भर पहले से 3,12,15 वर्णित किया गया है। सामान्य में, यह सेल-nanoparticle बातचीत इस तरह के सेल प्रकार या सेल चक्र चरण 12 के रूप में सेल-विशिष्ट मानदंडों के अलावा, आकार, आकृति, सतह के प्रभारी और सतह के रसायन शास्त्र सहित नैनोकणों के भौतिक गुणों से प्रभावित हैं कि प्रदर्शन किया गया है।

पिछले एक जांच चरण उलटा तापमान (गड्ढे) विधि 17 का उपयोग कर 16 सामयिक और बायोमार्कर आवेदनों का पता लगाने के लिए 1 उप-10 एनएम SLNs के संश्लेषण का प्रदर्शन किया। इस तापमान धीरे-धीरे बदल रहा है, जबकि रचना निरंतर बनी हुई है, जहां 2 एक सज्जन संश्लेषण विधि है। गरम कर समाधान का निरंतर क्रियाशीलता, के रूप में यह एक nanoemulsion में आरटी परिणाम के लिए ठंडा। उस से भी छोटे कण आकार 1 के साथ SLNs के संश्लेषण में इस प्रक्रिया के परिणाम पहले से लिपिड नेन के संश्लेषण के लिए विभिन्न तरीकों का उपयोग कर सूचना दीoparticles 17-22। जिसके परिणामस्वरूप आकार पैमाने पर, कम से कम 20 एनएम, वृद्धि की वजह से सतह क्षेत्र और बढ़ाया सेलुलर बातचीत के लिए क्षमता के लिए इंट्रासेल्युलर लक्ष्यीकरण अनुप्रयोगों के लिए एक लाभ प्रदान करता है।

एक फ्लोरोसेंट रंजक या चिकित्सीय देने के लिए बनाया SLNs का एक योजनाबद्ध, चित्र 1 में दिखाया गया है। SLNs एक लिपिड आंतरिक (जैसे, रैखिक एल्केन) lipophilic यौगिकों (जैसे, रंग या चिकित्सा विज्ञान) के समावेश के लिए अनुमति देता है और एक surfactant बाहरी से मिलकर बनता है पानी से घिरा हुआ है (जैसे, रैखिक nonionic पृष्ठसक्रियकारक)। इस अध्ययन में, SLNs एक फ्लोरोसेंट डाई के साथ भरी हुई थी और कण-सेल बातचीत की जांच के लिए एक मॉडल के रूप में इस्तेमाल किया। प्राथमिक मानव त्वचीय fibroblasts और माउस वृक्ष के समान कोशिकाओं विषाक्तता और कण तेज करने के लिए सम्मान के साथ बातचीत को चिह्नित करने के क्रम में समय के साथ SLN से भरी हुई डाई करने के लिए अवगत कराया गया। एक 3 (4,5-dimethylthiazol-2-YL) -2,5-diphenylphenyltetrazolium ब्रोमाइड (MTT) परख utili थाउचित खुराक के स्तर को स्थापित करने के क्रम में जेड। प्रतिदीप्ति माइक्रोस्कोपी और प्रवाह cytometry इन विट्रो में कण तेज की जांच करने के लिए कार्यरत दो तरीकों थे।

चित्र 1
प्रमुख घटक दिखा SLN की चित्रा 1. योजनाबद्ध। यह आंकड़ा का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Protocol

SLNs 1. प्रसंस्करण SLNs के संश्लेषण नोट: उप-20 एनएम SLNs 1 तैयार करने के लिए गड्ढे विधि 1,17,20 का प्रयोग करें। सड़न रोकनेवाला तकनीक, bioreagents या सेल संस्कृति ग्रेड अभिकर्मकों, और बाँझ सामग्री (यानी, पि?…

Representative Results

गड्ढे विधि SLNs के संश्लेषण के लिए इस्तेमाल किया गया था और चरण उलटा तापमान एक नहाने के पानी का उपयोग निर्धारित किया गया था। नमूने धीरे-धीरे गर्म है और समाधान स्पष्ट दिखाई दिया जब तक धीरे उत्तेजित थे। heneicosane ?…

Discussion

इस अध्ययन में, SLNs के संश्लेषण और intracellular को निशाना बनाने के लिए आवेदन पत्र उनकी प्रयोज्यता पता लगाया गया। ये biocompatible नैनोकणों दवा वितरण, जीन मुंह बंद करने, और टीका प्रौद्योगिकियों 25-30 सहित कई अनुप्रयोगों ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Research reported in this publication was supported by The Johns Hopkins Applied Physics Laboratory’s Research and Exploratory Development Department, Office of Technology Transfer, and Stuart S. Janney Fellowship Program, in addition to the National Heart, Lung, and Blood Institute of the National Institutes of Health under Award Number R21HL127355.

Materials

Nile Red (NiR) Sigma 19123 BioReagent, suitable for fluorescence, ≥98.0%
Heneicosane Aldrich 286052 98%
Brij O10 Sigma P6136 Brij 97, C18-1E10, Polyoxyethylene (10) oleyl ether
Water Sigma W3500 Sterile-filtered, BioReagent, suitable for cell culture
Syringe Filter 0.2 µm Supor Membrane Low Protein Binding Life Sciences PN4612 Non-Pyrogenic
Nanotrac Ultra  Microtrac serial number U1985IS Instrument
Differential Scanning Calorimeter Mettlet-Toledo —- Instument
Primary human fibroblasts  Life Technologies C-004-5C Neonatal (HDFn)
Medium 106 Life Technologies M-106-500 A sterile, liquid medium for the culture of human dermal fibroblasts.
Low Serum Growth Supplement Kit (LSGS Kit) Life Technologies S-003-K All the components of complete LSGS
MTT Cell Proliferation Assay Kit Trevigen 4890-025-K Sensitive kit for the measurement of cell proliferation based upon the reduction of the tetrazolium salt, 3,[4,5-dimethylthiazol-2- yl]-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide (MTT)
Safire2 microplate reader Tecan —- Instrument
Phosphate buffered saline  Sigma P5493 For molecular biology
Recombinant murine GM-CSF  R&D Systems 415 >97%, by SDS-PAGE under reducing conditions and visualized by silver stain.
Recombinant murine IL-4  R&D Systems 404 >97%, by SDS-PAGE under reducing conditions and visualized by silver stain.

Riferimenti

  1. Calderon-Colon, X., et al. Synthesis of sub-10 nm solid lipid nanoparticles for topical and biomarker detection applications. J Nanopart Res. 16 (2252), 1-10 (2014).
  2. Patwekar, S., et al. Review on nanoparticles used in cosmetics and dermal products. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 3 (8), 1407-1421 (2014).
  3. Martins, S., et al. Solid lipid nanoparticles as intracellular drug transporters: An investigation of the uptake mechanism and pathway. International Journal of Pharmaceutics. 430, 216-227 (2012).
  4. Yadav, N., Khatak, S., Sara, U. V. S. Solid Lipid Nanoparticles – A Review. International Journal of Applied Pharmaceuticals. 5 (2), 8-18 (2013).
  5. Weber, S., Zimmer, A., Solid Pardeike, J. Lipid Nanoparticles (SLN) and Nanostructured Lipid Carriers (NLC) for pulmonary application: a review of the state of the art. Eur J Pharm Biopharm. 86 (1), 7-22 (2014).
  6. Mahajan, A., Kaur, S., Grewal, N. K., Kaur, S. Solid Lipd Nanoparticles (SLNs) – As Novel Lipd based Nanocarriers for Drugs. International Journal of Advanced Research. 2 (1), 433-441 (2014).
  7. Buse, J., El-Aneed, A. Properties, engineering and applications of lipid-based nanoparticle drug-delivery systems: current research and advances. Nanomedicine (Lond). 5, 1237-1260 (2010).
  8. Malam, Y., Loizidou, M., Seifalian, A. M. Liposomes and nanoparticles: nanosized vehicles for drug delivery in cancer. Trends Pharmacol Sci. 30 (11), 592-599 (2009).
  9. Lim, S. B., Banerjee, A., Onyuksel, H. Improvement of drug safety by the use of lipid-based nanocarriers. Journal of controlled release : official journal of the Controlled Release Society. 163, 34-45 (2012).
  10. Ali Khan, A., Mudassir, J., Mohtar, N., Darwis, Y. Advanced drug delivery to the lymphatic system: lipid-based nanoformulations. International journal of nanomedicine. 8, 2733-2744 (2013).
  11. Oussoren, C., Storm, G. Liposomes to target the lymphatics by subcutaneous administration. Advanced drug delivery reviews. 50, 143-156 (2001).
  12. Shang, L., Nienhaus, K., Nienhaus, G. U. Engineered nanoparticles interacting with cells: size matters. J Nanobiotechnology. 12, 5 (2014).
  13. Joshi, M. D., Muller, R. H. Lipid nanoparticles for parenteral delivery of actives. European journal of pharmaceutics and biopharmaceutics : official journal of Arbeitsgemeinschaft fur Pharmazeutische Verfahrenstechnik e.V. 71, 161-172 (2009).
  14. Torchilin, V. P. Micellar nanocarriers: pharmaceutical perspectives. Pharmaceutical research. 24, 1-16 (2007).
  15. Ashley, C. E., et al. The targeted delivery of multicomponent cargos to cancer cells by nanoporous particle-supported lipid bilayers. Nature materials. 10, 389-397 (2011).
  16. Patchan, M., et al. Nanotech; Nanotechnology 2013: Bio Sensors Instruments, Medical, Environment and Energy; Chapter 3: Materials for Dru., and Gene Delivery. Nanobandage for controlled release of topical therapeutics. 3, 255-258 (2013).
  17. Forgiarini, A., Esquena, J., Gonzalez, C., C, S., Koutsoukos, P. Formation and stability of nano-emulsions in mixed nonionic surfactant systems. Trends in colloid and interface science XV. Progress in Colloid and Polymer Science. 118, 184-189 (2001).
  18. Nantarat, T., Chansakaow, S., Leelapornpisid, P. Optimization, characterization and stability of essential oils blend loaded nanoemulsions by PIC technique for anti-tyrosinase activity. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. 7, 308-312 (2015).
  19. Sevcikova, P., Vltavska, P., Kasparkova, V., Formation Krejci, J. Characterization and Stability of Nanoemulsions Prepared by Phase Inversion. , 132-137 (2011).
  20. Forgiarini, A., Esquena, J., Gonzalez, C., Solans, C., Buckin, V. Studies of the relation between phase behavior and emulsification methods with nanoemulsion formation. Trends in colloid and interface science XIV. Progress in Colloid and Polymer Science. 115, 36-39 (2000).
  21. Forgiarini, A., Esquena, J., Gonzalez, C., Solans, C. Formation of nano-emulsions by low-energy emulsification methods at constant temperature. Langmuir. 17 (7), 2076-2083 (2001).
  22. Cabone, C., Tomasello, B., Ruozi, B., Renis, M., Puglisi, G. Preparation and optimization of PIT solid lipid nanoparticles via statistical factorial design. Eur J Med Chem. 49, 110-117 (2012).
  23. Raimondi, G., et al. Mammalian Target of Rapamycin Inhibition and Alloantigen-Specific Regulatory T Cells Synergize To Promote Long-Term Graft Survival in Immunocompetent Recipients. J Immunol. 184, 624-636 (2010).
  24. Jhunjhunwala, S., Raimondi, G., Thomson, A. W., Little, S. R. Delivery of rapamycin to dendritic cells using degradable microparticles. J Control Release. 133 (13), 191-197 (2009).
  25. Kapse-Mistry, S., Govender, T., Srivastava, R., Yergeri, M. Nanodrug delivery in reversing multidrug resistance in cancer cells.. Front Pharmacol. 5 (159), 1-22 (2014).
  26. Musacchio, T., Torchilin, V. P. Recent developments in lipid-based pharmaceutical nanocarriers. Front Biosci (Landmark Ed). 1 (16), 1388-1412 (2011).
  27. Cerpnjak, K., Zvonar, A., Gašperlin, M., Vrečer, F. Lipid-based systems as a promising approach for enhancing the bioavailability of poorly water-soluble drugs). Acta Pharm. 63 (4), 27-445 (2013).
  28. Rodrìguez-Gascòn, A., Pozo-Rodrìguez, A., Solinìs, M. A. Development of nucleic acid vaccines: use of self-amplifying RNA in lipid nanoparticles. Int J Nanomedicine. 9, 1833-1843 (2014).
  29. Almeida, A. J., Souto, E. Solid lipid nanoparticles as a drug delivery system for peptides and proteins. Adv Drug Deliv Rev. 59, 478-490 (2007).
  30. Pardeshi, C., et al. Solid lipid based nanocarriers: an overview. Acta Pharm. 62, 433-472 (2012).
  31. Attama, A. A., Momoh, M. A., Builders, P. F., Sezer, A. D. Lipid Nanoparticulate Drug Delivery Systems: A Revolution in Dosage Form Design and Development. Recent Advances in Novel Drug Carrier Systems. , 107-140 (2012).

Play Video

Citazione di questo articolo
Calderón-Colón, X., Raimondi, G., Benkoski, J. J., Patrone, J. B. Solid Lipid Nanoparticles (SLNs) for Intracellular Targeting Applications. J. Vis. Exp. (105), e53102, doi:10.3791/53102 (2015).

View Video