Summary

एक सेल फ्री परख बँटवारा के अंत में Chromatin Decondensation अध्ययन करने के लिए

Published: December 19, 2015
doi:

Summary

The molecular mechanisms of the decondensation of highly compacted mitotic chromatin are ill-defined. We present a cell-free assay based on mitotic chromatin clusters isolated from HeLa cells and Xenopus laevis egg extract that faithfully reconstitutes the decondensation process in vitro.

Abstract

During the vertebrate cell cycle chromatin undergoes extensive structural and functional changes. Upon mitotic entry, it massively condenses into rod shaped chromosomes which are moved individually by the mitotic spindle apparatus. Mitotic chromatin condensation yields chromosomes compacted fifty-fold denser as in interphase. During exit from mitosis, chromosomes have to re-establish their functional interphase state, which is enclosed by a nuclear envelope and is competent for replication and transcription. The decondensation process is morphologically well described, but in molecular terms poorly understood: We lack knowledge about the underlying molecular events and to a large extent the factors involved as well as their regulation. We describe here a cell-free system that faithfully recapitulates chromatin decondensation in vitro, based on mitotic chromatin clusters purified from synchronized HeLa cells and X. laevis egg extract. Our cell-free system provides an important tool for further molecular characterization of chromatin decondensation and its co-ordination with processes simultaneously occurring during mitotic exit such as nuclear envelope and pore complex re-assembly.

Introduction

Xenopus laevis अंडे निकालने के एक सेल मुक्त परख की सादगी में जटिल सेलुलर घटनाओं का अध्ययन करने के लिए एक शक्तिशाली और व्यापक रूप से लागू उपकरण है। Lohka और Masui 1 से उनकी पहली वर्णन के बाद से वे बड़े पैमाने पर इस तरह के क्रोमेटिन संक्षेपण 2, धुरी विधानसभा 3, परमाणु लिफाफा टूटने 4, लेकिन यह भी nucleocytoplasmic परिवहन 5 या डीएनए प्रतिकृति के रूप में 6 mitotic प्रक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए इस्तेमाल किया गया है। इस तरह के परमाणु लिफाफा सुधार और परमाणु ताकना जटिल दुबारा जोड़ना रूप interphasic नाभिक के सुधार के लिए आवश्यक बँटवारा के अंत में हो रही घटनाओं, जल्दी mitotic घटनाओं की तुलना में समझ बहुत कम कर रहे हैं, लेकिन इसी तरह Xenopus अंडे निकालने 7 का उपयोग कर अध्ययन किया जा सकता है। हमने हाल ही में बँटवारा 8 के अंत में क्रोमेटिन decondensation अध्ययन करने के लिए Xenopus अंडे निकालने पर आधारित एक परख की स्थापना की है, एक के तहत जांच की प्रक्रिया मैं इंतजार कर रहा है किविस्तृत लक्षण वर्णन टीएस।

मेटाजोअन में, क्रोमेटिन अत्यधिक आनुवंशिक सामग्री की ईमानदारी से अलगाव प्रदर्शन करने के क्रम में mitotic प्रविष्टि पर सघन है। क्रोमेटिन अंतरावस्था दौरान जीन अभिव्यक्ति और डीएनए प्रतिकृति के लिए सुलभ है कि यह सुनिश्चित करने के लिए, यह बँटवारा के अंत में डी-जमा होने की जरूरत है। रीढ़ में, क्रोमेटिन अप करने के लिए, mitotic संघनन आमतौर पर बहुत कम है जहां खमीर के विपरीत, एस में जैसे, केवल दो गुना अंतरावस्था 9 की तुलना में बँटवारा के दौरान और अधिक ठोस पचास गुना है cerevisiae 10। कशेरुकी क्रोमेटिन decondensation ज्यादातर अंडे के निषेचन के बाद शुक्राणु डीएनए पुनर्गठन के संदर्भ में अध्ययन किया गया है। एक आणविक तंत्र, जो nucleoplasmin, एक प्रचुर मात्रा में डिम्बाणुजनकोशिका प्रोटीन में, अंडे में संग्रहीत histones H2A और H2B के लिए शुक्राणु विशेष protamines बाजारों। इस प्रक्रिया को भी Xenopus अंडे निकालने 11, 12 का उपयोग करते हुए स्पष्ट किया गया था। हालांकि, अभिव्यक्तिnucleoplasmin के इन शुक्राणु विशेष protamines शामिल नहीं है oocytes 13 और mitotic क्रोमेटिन तक सीमित है। इसलिए बँटवारा के अंत में decondensation chromatin 8 स्वतंत्र nucleoplasmin है।

इन विट्रो decondensation प्रतिक्रिया के लिए हम सिंक्रनाइज़ हेला कोशिकाओं से अलग सक्रिय एक्स laevis अंडे और क्रोमेटिन समूहों से उत्पन्न निकालने रोजगार। एक कैल्शियम ionophore के साथ अंडे का उपचार निषेचन के दौरान शुक्राणु प्रवेश द्वारा उत्पन्न डिम्बाणुजनकोशिका में कैल्शियम रिहाई mimics। कैल्शियम लहर पहले अंतरावस्था 14 की प्रगति, अर्धसूत्रीविभाजन के दूसरे metaphase में गिरफ्तार सेल चक्र बहाली और अंडा, हो सके। इसलिए, प्रपत्र सक्रिय अंडे तैयार अंडा अर्क mitotic बाहर निकलें / अंतरावस्था राज्य का प्रतिनिधित्व करते हैं और क्रोमेटिन decondensation, परमाणु लिफाफे की तरह mitotic बाहर निकलने के लिए विशिष्ट घटनाओं के लिए प्रेरित करने में सक्षम हैं और जटिल सुधार ताकना। Mitotic चर्चा के अलगाव के लिएसमूहों romatin हम गुणसूत्र समूहों हेला कोशिकाओं बँटवारा में सिंक्रनाइज़ और ढाल centrifugations द्वारा polyamine युक्त बफ़र्स में अलग से सेल द्वारा जारी किया जाता है, जहां Gasser और Laemmli 15, द्वारा प्रकाशित प्रोटोकॉल का एक थोड़ा संशोधित संस्करण का इस्तेमाल किया।

Protocol

हेला कोशिकाओं से mitotic Chromatin क्लस्टर अलगाव 1. तैयारी सेल संस्कृति समाधान DMEM के लिए 10% भ्रूण बछड़ा सीरम, 100 इकाइयों / एमएल पेनिसिलिन, 100 माइक्रोग्राम / एमएल स्ट्रेप्टोमाइसिन और 2 मिमी g…

Representative Results

Decondensation प्रतिक्रिया के समय निर्भरता चित्रा 1 decondensation परख का एक विशिष्ट समय पाठ्यक्रम से पता चलता है। प्रतिक्रिया की शुरुआत में दिखाई दे गुणसूत्रों के क्लस्टर decondenses और एक एकल, गोल और चिकनी न?…

Discussion

Xenopus अंडे अर्क ईमानदारी से इन विट्रो में सेलुलर प्रक्रियाओं को पुन: पेश करने के लिए एक बहुत ही उपयोगी उपकरण हैं laevis, और इस प्रणाली को सफलतापूर्वक सेल चक्र और कोशिका विभाजन घटनाओं 2, 3,5,6,17 के …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

अक्स 1 और 2 विकासात्मक सेल 31 (3), Magalska से reprinted रहे हैं चित्रा के लिए यह काम जर्मन रिसर्च फाउंडेशन और ईआरसी (वाशिंगटन के लिए AN377 / 3-2 और 309,528 CHROMDECON) और बोहरिंगर Ingelheim फॉंड्स की एक पीएचडी फैलोशिप द्वारा समर्थित किया गया एट अल। बँटवारा, 305-318, 2014 के अंत में क्रोमेटिन decondensation में, RuvB-तरह ATPases समारोह, एल्सेविअर से रज़ामंदी के साथ।

Materials

spermine tetrahydrochloride Fluka analytical 85610-25G
spermidine trihydrochloride Sigma  S2501-5G
high-purity digitonin Millipore 300410-1GM toxic
PMSF Applichem A0999,0100 toxic
thymidine Calbiochem 6060
nocodazole Calbiochem 487928 toxic
37 % formaldehyde solution Roth 7398-1 toxic
trypan blue solution (0.4%) Sigma T8154 toxic
1,4-dithiothreitol (DTT) Roth 6908.2
AEBSF hydrochloride Applichem A1421,0001
pepstatin Roth 2936.1/2/3
leupeptin Roth CN334
aprotinin Roth A162.3
Percoll (colloidal silica particles solution) GE Healthcare 17-0891-01
glutamine Gibco 25030-024
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
75 cm² tissue culture flasks Greiner Bio-one 658175
heat-inactivated fetal bovine serum (FBS) Gibco 10500-064
Homogenizer (40 mL tissue grinder) Wheaton 357546
Neubauer chamber Assistent 441/1
 Oak Ridge Centrifuge Tubes, polycarbonate (50 ml) Nalgene 3118-0050
100 µm cell strainer, nylon BD Falcon 352360
cytochalasin B Applichem A7657,0010 toxic
cycloheximide Roth 8682.3 toxic
L-cystein Merck 1,028,381,000
hCG available as Ovogest MSD 1431593
PMSG available as Intergonan MSD 1431015
A23187 (mixed calcium-magnesium-salt) Enzo ALX-450-002-M010 toxic
syringe needles (1.20 x 40 mm, 18 G x 1 1/2") Braun 4665120
ATP Serva 10920.03
GTP, 2 Na x 3 H20 Roth K056.1/2/3/4
creatine phosphat disodium salt Calbiochem 2380
creatine phosphokinase Sigma C3755-35KU
DMAP Sigma D2629-1G
DAPI  Roche 10236276001
PFA Sigma P-6148 toxic
centrifugation tubes for TLA 100 (7 x 10 mm, 5/16 x 13/16 in.) Beckman Coulter 343775
"Cell-Saver" (tips with wide opening, 1000 µL) Biozym 729065
50 % glutaraldehyde solution, grade I Sigma alderich G7651-10 mL toxic
0.1 % (w/v) poly-L-lysine solution Sigma P8920-100 mL
flat-bottom tubes (6 mL, 16.0/55 mm) Greiner Bio-one 145211
Vectashield mounting medium Vector laboratories H1000
tubes for TLA120 (11 x 34 mm, 7/16 x 1 3/8 in.) Beckman Coulter 343778
"Cell-Saver" (tips with wide opening, 200 µL) Biozym 729055
12 mm coverslips Thermo Scientific 0784 #1

Riferimenti

  1. Lohka, M. J., Masui, Y. Formation in vitro of sperm pronuclei and mitotic chromosomes induced by amphibian ooplasmic components. Science. 220, 719-721 (1983).
  2. de la Barre, A. E., Robert-Nicoud, M., Dimitrov, S. Assembly of mitotic chromosomes in Xenopus egg extract. Methods Mol Biol. 119, 219-229 (1999).
  3. Maresca, T. J., Heald, R. Methods for studying spindle assembly and chromosome condensation in Xenopus egg extracts. Methods Mol Biol. 322, 459-474 (2006).
  4. Galy, V., et al. A role for gp210 in mitotic nuclear-envelope breakdown. J Cell Sci. 121, 317-328 (2008).
  5. Chan, R. C., Forbes, D. I. In vitro study of nuclear assembly and nuclear import using Xenopus egg extracts. Methods Mol Biol. 322, 289-300 (2006).
  6. Gillespie, P. J., Gambus, A., Blow, J. J. Preparation and use of Xenopus egg extracts to study DNA replication and chromatin associated proteins. Methods. 57, 203-213 (2012).
  7. Gant, T. M., Wilson, K. L. Nuclear assembly. Annu Rev Cell Dev Biol. 13, 669-695 (1997).
  8. Magalska, A., et al. RuvB-like ATPases function in chromatin decondensation at the end of mitosis. Developmental Cell. 31, 305-318 (2014).
  9. Belmont, A. S. Mitotic chromosome structure and condensation. Curr Opin Cell Biol. 18, 632-638 (2006).
  10. Lavoie, B. D., Tuffo, K. M., Oh, S., Koshland, D., Holm, C. Mitotic chromosome condensation requires Brn1p, the yeast homologue of Barren. Mol Biol Cell. 11, 1293-1304 (2000).
  11. Philpott, A., Leno, G. H. Nucleoplasmin remodels sperm chromatin in Xenopus egg extracts. Cell. 69, 759-767 (1992).
  12. Philpott, A., Leno, G. H., Laskey, R. A. Sperm decondensation in Xenopus egg cytoplasm is mediated by nucleoplasmin. Cell. 65, 569-578 (1991).
  13. Burglin, T. R., Mattaj, I. W., Newmeyer, D. D., Zeller, R., De Robertis, E. M. Cloning of nucleoplasmin from Xenopus laevis oocytes and analysis of its developmental expression. Genes Dev. 1, 97-107 (1987).
  14. Whitaker, M. Calcium at fertilization and in early development. Physiological reviews. 86, 25-88 (2006).
  15. Gasser, S. M., Laemmli, U. K. Improved methods for the isolation of individual and clustered mitotic chromosomes. Exp Cell Res. 173, 85-98 (1987).
  16. Eisenhardt, N., Schooley, A., Antonin, W. Xenopus in vitro assays to analyze the function of transmembrane nucleoporins and targeting of inner nuclear membrane proteins. Methods Cell Biol. 122, 193-218 (2014).
  17. Wignall, S. M., Deehan, R., Maresca, T. J., Heald, R. The condensin complex is required for proper spindle assembly and chromosome segregation in Xenopus egg extracts. J Cell Biol. 161, 1041-1051 (2003).
  18. Forbes, D. J., Kirschner, M. W., Newport, J. W. Spontaneous formation of nucleus-like structures around bacteriophage DNA microinjected into Xenopus eggs. Cell. 34, 13-23 (1983).
  19. Hartl, P., Olson, E., Dang, T., Forbes, D. J. Nuclear assembly with lambda DNA in fractionated Xenopus egg extracts: an unexpected role for glycogen in formation of a higher order chromatin intermediate. J Cell Biol. 124, 235-248 (1994).
  20. Sandaltzopoulos, R., Blank, T., Becker, P. B. Transcriptional repression by nucleosomes but not H1 in reconstituted preblastoderm Drosophila chromatin. EMBO J. 13, 373-379 (1994).
  21. Ulbert, S., Platani, M., Boue, S., Mattaj, I. W. Direct membrane protein-DNA interactions required early in nuclear envelope assembly. J Cell Biol. 173, 469-476 (2006).
  22. Zhang, C., Clarke, P. R. Chromatin-independent nuclear envelope assembly induced by Ran GTPase in Xenopus egg extracts. Science. 288, 1429-1432 (2000).
  23. Paulson, J. R. Isolation of chromosome clusters from metaphase-arrested HeLa cells. Chromosoma. 85, 571-581 (1982).
  24. Ramadan, K., et al. Cdc48/p97 promotes reformation of the nucleus by extracting the kinase Aurora B from chromatin. Nature. 450, 1258-1262 (2007).
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Citazione di questo articolo
Schellhaus, A. K., Magalska, A., Schooley, A., Antonin, W. A Cell Free Assay to Study Chromatin Decondensation at the End of Mitosis. J. Vis. Exp. (106), e53407, doi:10.3791/53407 (2015).

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