Summary

Isolatie en Flow cytometrische analyse van Glioom infiltreren perifere mononucleaire bloedcellen

Published: November 28, 2015
doi:

Summary

Hier voorgesteld is een eenvoudige methode voor het isoleren en flowcytometrische analyse van glioma infiltrerende perifere mononucleaire cellen die tijdsafhankelijk kwantitatieve gegevens over het aantal en activeringsstatus van immuuncellen die het begin hersentumor micro oplevert.

Abstract

Ons laboratorium heeft onlangs aangetoond dat natuurlijke killer (NK) cellen in staat zijn het uitroeien orthotopically geïmplanteerde muizen GL26 en rat CNS-1 maligne glioom kort na intracraniale enting als de kankercellen deficiënt zijn weergegeven in hun expressie van de β-galactoside-bindende lectine galectine -1 (gal-1). Meer recent werk toont nu dat een bevolking van Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen is cruciaal voor dit effect. Om een ​​beter inzicht in de mechanismen waarmee NK- en myeloïde cellen samen om gal-1-deficiënte tumor afstoting verlenen we hebben een uitgebreid protocol voor de isolatie en analyse van glioma-infiltrerende perifere mononucleaire bloedcellen (PBMC) ontwikkeld. De werkwijze wordt hier aangetoond door PBMC infiltratie in de tumor micro-omgeving van gal-1-expressie GL26 gliomen met die rendered gal-1-deficiënte via shRNA knockdown. Het protocol begint met een beschrijving van hoe de cultuur en voor te bereiden GL26 ceLLS voor enting in de syngene C57BL / 6J muis hersenen. Het verklaart vervolgens de stappen die betrokken zijn bij de isolatie en flowcytometrische analyse van glioom infiltreren PBMC's uit het begin van de hersenen tumor micro. De werkwijze is aanpasbaar aan een aantal in vivo experimentele modellen waarin temporele gegevens immune infiltratie in de hersenen vereist. De werkwijze is gevoelig en zeer reproduceerbare, zoals glioom-infiltrerende PBMCs worden geïsoleerd uit intracraniale tumoren 24 uur na tumor implantatie met gelijke waargenomen vanaf tijdstip afgestemd tumoren gedurende onafhankelijke experimenten celtellingen hoogte. Eén experimentalist kan de werkwijze van hersenen oogst tot cytometrische analyse van glioma infiltrerende PBMCs stromen ongeveer 4-6 uur afhankelijk van het aantal te analyseren monsters. Alternatieve glioma modellen en / of cel-specifieke detectie antilichamen kunnen eveneens worden gebruikt ter beoordeling van experimentalisten om de infiltratie van een aantal andere immun beoordelene celtypen van belang, zonder de noodzaak voor wijziging van de algemene procedure.

Introduction

Gliomen zijn een klasse van neuro hersenkanker voortvloeien uit getransformeerde glia binnen het centrale zenuwstelsel (CZS). Van alle gliomen, World Health Organization (WHO) graad IV glioma of glioblastoom (GBM) is de meest voorkomende en dodelijke 1. GBM is zeer ongevoelig is voor de huidige standaard-of-care bestaat uit tumorresectie zoveel mogelijk gevolgd door bestraling plus gelijktijdige en adjuvante chemotherapie met temozolomide 2. Deze dodelijke vormen van kanker dragen een sombere prognose slechts 15-18 maanden van overleving vanaf het moment van de initiële diagnose slechts 5% van de patiënten overleven van de ziekte na 5 jaar 3.

De aanwezigheid van de bloed-hersenbarrière (BBB), gebrek aan professionele antigenpresenterende cellen (APCs), en de eerder geïdentificeerde bestaan ​​van bonafide lymfatische structuren binnen de hersenen 4 hebben geleid tot het begrip GBM immuun bevoorrecht. Echter, vele studies nu show dat deze hersenen kanker inderdaad wekken de werving van perifere immuuncellen die zijn overwegend myeloïde in oorsprong die monocyten, macrofagen, en myeloide suppressor cellen (MDSCs) 5 bevatten. GBM heeft ook invloed op de activiteit van de hersenen-resident microglia om pro-tumorigene 6,7 geworden. Lymfoïde cellen, zoals CD8 + T-cellen 8 en CD56 + natuurlijke killercellen 9 zijn ook aanwezig in de tumor micro-omgeving, maar in veel kleinere aantallen, een feit toe te schrijven aan immunosuppressieve werking aangezet door-glioom afgeleide factoren op tumor-geassocieerde macrofagen ( TAM) 10. CD4 + T-cellen zijn ook aanwezig in GBM, maar veel van deze populatie uit tevens CD25 en Foxp3, makers van immunosuppressieve regulerende T (T reg) cellen 11. De totale immunosuppressieve staat GBM culmineert in het bevorderen van immunologische ontsnappen en tumorprogressie 12.

<p class= "jove_content"> Een beter begrip van de mechanismen van GBM immunosuppressie is cruciaal voor de ontwikkeling van effectieve immunotherapeutische strategieën om het immuunsysteem te stimuleren tegen de tumor. In de afgelopen 15 jaar ons lab heeft gewerkt om de mechanismen van hersentumor immunosuppresson om effectieve nieuwe anti-GBM immunotherapeutics 13-19 ontwikkelen overwinnen. Het hoogtepunt van dit werk heeft nu geleid tot een klinische proef ontworpen om een ​​gecombineerde cytotoxische en immuun-stimulerende therapeutische voor patiënten met nieuw gediagnosticeerde GBM (ClinicalTrials.gov Identifier: NCT01811992) te evalueren.

Onze meest recente werk toont aan dat muis en rat CNS GL26-1 GBM cellen blokkeren anti-tumor NK cell immune surveillance door het produceren van grote hoeveelheden van de β-galactoside-bindende lectine galectine-1 (gal-1) 20. Dit werd aangetoond door het onderdrukken van de expressie van gal-1 in glioomcellen via shRNA gemedieerde gen knockdown. In vitro Experiments bleek dat gal-1-deficiënte glioomcellen gewoonlijk vermeerderd in cultuur, maar onderging een snelle afstoting kort na intracraniale enting in syngene C57BL / 6J of RAG1 – / – muizen, waardoor de onafhankelijkheid vaststelling van T- en B-cellen op deze vorm van tumor afstoting. NK cel immunodepletie met anti-asialo GM 1 anti- serum of monoklonale antilichamen NK1.1 geleid tot volledig herstel van intracraniale gal-1-deficiënte glioom groei, waardoor de rol van NK-cellen in gal-1-deficiënte glioom afstoting. We tonen nu dat immunodepletie van Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen voldoende om gal-1-deficiënte glioom afstoting ondanks de aanwezigheid van NK-cellen, dus een onmisbare ondersteunende rol van myeloïde cellen onthullend het verlenen van hulp NK-gemedieerde gal -1-deficiënte tumor lysis (ongepubliceerde gegevens). Deze onverwachte resultaat heeft geleid tot een algemeen protocol voor de isolatie en analyse van perifeer bloed mononucleaire cellen (PBMC's) ontstaan ​​dieinfiltreren de hersenen tumor micro kort na intracraniële implantatie zodat we beter het immuunsysteem infiltratie gebeurtenissen die gal-1-deficiënte glioom afwijzing predikaat kunnen karakteriseren.

De methode wordt hier aangetoond met behulp van de muis GL26 glioom cellen die constitutief uitdrukkelijke mCitrine fluorescerend eiwit, genaamd GL26-Cit, dat directe tumorcel visualisatie mogelijk te maken door fluorescentiemicroscopie 21. Deze cellen worden geënt stereotactisch in de hersenen van syngene C57BL / 6J-muizen en kunnen groeien voor 24, 48 of 72 uur voorafgaand aan euthanasie muis. -Glioom infiltreren PBMC's worden vervolgens geïsoleerd en immunolabeled met behulp van anti -CD45, -GR-1, -CD11b en -NK1.1 celoppervlak antilichamen samen met intracellulaire immunolabeling voor granzyme B (GzmB). Deze specifieke combinatie van antilichamen maakt de identificatie van tumor infiltrerende Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen en NK1.1 + NK-cellen, celtypen we bEen betrokken bij gal-1-deficiënte tumor afstoting. De immune infiltratie profiel van gal-1-deficiënte GL26-Cit glioom, aangeduid hier als GL26-Cit-gal1i, wordt vervolgens vergeleken met die van gliomen expressie normale niveaus van gal-1 genoemd GL26-Cit-NT dat een niet bevatten targeting controle shRNA hairpin. Het protocol begint met een beschrijving over hoe de cultuur GL26-Cit glioom cellen in vitro, die wordt gevolgd door een uitleg over hoe orthotopically engraft deze cellen in het striatum van syngene C57BL / 6J muizen. Het gaat dan verder naar de stappen die betrokken zijn bij de isolatie en immunokleuring van glioma-infiltrerende PBMCs voor flowcytometrische analyse sommen. Het protocol wordt afgesloten met een toelichting van de standaard data-analyse en grafische weergave.

De demonstratie laat zien dat zowel Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen en NK1.1 + NK-cellen preferentieel ophopen in de gal-1-deficiënte hersenen tumor micro-omgeving binnen 48hr van de tumor implantatie, een resultaat dat helpt verklaren waarom deze tumoren sneller ondergaan volledige tumorlysis ongeveer 1 week na de tumor implantatie 20. De werkwijze is gemakkelijk aan een aantal verschillende in vivo experimentele modellen waarin temporele gegevens immune infiltratie in de hersenen vereist. Een enkele experimentalist kan het protocol uitvoeren van hersenen oogst tot cytometrische analyse van glioom infiltreren PBMCs stromen in ongeveer 4-6 uur, afhankelijk van het aantal monsters worden geanalyseerd. De werkwijze kan ook worden gecombineerd met experimenten gericht op het profiel van circulerende PBMCs in tumor dragende muizen ter vergelijking met die die de hersenen infiltreren zo te immunosuppressie fenotypes specifiek geïnduceerd door de tumor micro identificeren karakteriseren. De toepassing van deze en soortgelijke methoden moeten een beter begrip van de betrokken zijn bij de smokkel van perifere immuuncellen in de hersenen tumor micro factoren te vergemakkelijken.

Protocol

Let op: Lees de gehele protocol voor het uitvoeren van experimenten. Goedkeuring voor het gebruik van gewervelde dieren van de juiste institutionele commissie over het gebruik en het welzijn van dieren moeten voorafgaand aan de procedure worden verkregen. 1. Bereiding van tumorcellen voor Intracranial Engraftment Werken in een klasse II biologische veiligheid kabinet, beginnen met de voorbereiding van GL26-Cit-NT / gal1i celcultuurmedia door aanvulling van een fles van 500 ml Dulb…

Representative Results

De volgende gating strategie wordt gebruikt voor een typisch experiment: FSC-A vs. SSC-A → SSC-H vs. SSC-W → FSC-H vs FSC-W → CD45 vs. count → Gr-1 vs. CD11b → NK1.1 vs. tellen. Gates geplaatst Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen en NK1.1 + NK-cellen worden vervolgens gestratificeerd op basis GzmB expressie (Figuur 5A). Backgating die cellen geïdentificeerd als NK1.1 + NK-cellen en Gr-1 + / CD11b + myeloïde cellen in onze experi…

Discussion

Dit protocol beschrijft een robuuste en reproduceerbare werkwijze voor het isoleren en flowcytometrische analyse van PBMC die de vroege muizenhersenen tumor micro geïnfiltreerd. Glioom celsuspensies worden gegenereerd in een concentratie die door de experimentator die stereotactisch worden geënt in het striatum van de hersenen van muizen. Muizen worden vervolgens gedood op vooraf bepaalde tijdstippen gespecificeerd door het experimentele ontwerp en hun hersenen worden geoogst en verwerkt tot glioma infiltreren PBMCs d…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de National Institutes of Health / Nationaal Instituut voor Neurologische Aandoeningen en Stroke (NIH / NINDS) verleent R01-NS074387, R01-NS057711 en R21-NS091555 naar MGC; NIH / NINDS verleent R01-NS061107, R01-NS076991, R01-NS082311 en R21-NS084275 om PRL; subsidies van Leah's Happy Hearts, Universiteit van Michigan Comprehensive Cancer Center uitgereikt aan MGC en PRL; de afdeling Neurochirurgie, Universiteit van Michigan School of Medicine; Michigan Institute for Clinical and Health Research, ondersteund door NIH-subsidie ​​2UL1-TR000433; de Universiteit van Michigan Cancer Biology Training Grant ondersteund door NIH / NCI (National Cancer Institute) subsidie ​​T32-CA009676; de Universiteit van Michigan Training in Klinische en Basic Neurowetenschappen ondersteund door NIH / NINDS verlenen T32-NS007222; en de Universiteit van Michigan Medical Scientist Training Program ondersteund door NIH / NIGMS (Nationaal Instituut voor Algemene Geneeskunde Wetenschappen) verlenen T32-GM007863. De auteurs van eenopnieuw dankbaar voor de wetenschappelijke leiding en ondersteuning ontvangen van Dr. Karin Muraszko en de afdeling Neurochirurgie; M. Dahlgren, D. TOMFORD en S. Napolitaanse voor een uitstekende administratieve ondersteuning; M. Dzaman voor uitstekende technische bijstand; en Phil F. Jenkins voor genereuze steun voor de aankoop van een Zeiss 3D Scanning Electron Microscope. We erkennen ook Kuchroo laboratorium Harvard Medical School, waaruit een gemodificeerde versie van de dichtheidscentrifugatie media-gemedieerde strategie voor het isoleren van mononucleaire cellen hersenen werd getrokken.

Materials

Dulbecco’s Modification of Eagles Medium Gibco 12430-054 with 4.5g/L D-glucose, L-glutamine, 25mM HEPES and phenol red 
Dulbecco’s Phosphate-buffered Saline  Gibco 14190-144  without calcium chloride or Magnesium chloride
Fetal bovine serum Omega Scientific Inc. FB-11
Penicillin Streptomycin  Gibco 15140-122 10,000U/ml Penicillin; 10,000μg/ml Streptomycin 
L-glutamine Gibco 25030-081 200mM
G418 sulfate  Omega Scientific Inc. GN-04
Puromycin dihydrochloride   Sigma-Aldrich P8833 from Streptomyces alboniger
HyClone HyQTase non-mammalian trypsin alternative  Thermo Scientific SV30030.01 in DPBS with EDTA 
Phase contrast hemocytometer Sigma-Aldrich Z359629 0.1mm deep
Trypan blue stain Gibco 15250-061
Sterile 0.9% NaCl injection, USP Hospira NDC: 0409-4888 10ml vials
0.6ml conical polypropylenemi microtubes Genesee Scientific 22-272
Atipamezole hydrochloride injection Orion Pharma NDC: 52483-6298 5mg/ml solution
Ketamine hydrochloride injection Fort Dodge NDC: 0409-2051 100mg/ml solution
Dexmedetomidine hydrochloride injection Zoetis NDC: 54771-2805 0.5mg/ml solution
Xylazine hydrochloride injection Lloyd NDC: 61311-481 100mg/ml solution
Carprofen injection Pfizer NDC: 61106-8501 50mg/ml solution
Buprenorphine hydrochloride injection Reckitt Benckiser NDC: 12496-0757 0.3mg/ml ampuls
1ml tuberculin syringes  Covidien 8881501400
26G x ½ (0.45mm x 13mm) syringe needles  BD 305111
Surgical clippers 3M 9661
Providone-iodine solution Aplicare 82-217 NDC: 52380-1905
Sterile petrolatum ophthalmic ointment  Dechra NDC: 17033-211
70% isopropyl alcohol prep pads Kendall 6818
Sterile gauze Covidien 8044 non-woven, 4" x 4", 4-ply 
1.7ml conical polypropylene microtubes Genesee Scientific 22-281
Mouse stereotactic frame Stoelting 51730
Surgical lamp Philips Burton CS316W Coolspot II Variable Spotlight
Curved dissecting forceps Ted Pella Inc. 5431
Colibri retractors  FST 17000-03
Cordless precision power drill Dremel  1100-01 Stylus model; 7.2-Volt Lithium-Ion with Docking Station
Engraving Cutter Dremel 105 1/32" or 0.8 mm bit diameter
Microliter syringe Hamilton 75 Hamilton Microliter® Syringes 700 series; 5μl volume
Microliter syringe needles Hamilton 7762-06 33G, small hub RN NDL, 1.5 in, point style 3, 6/PK
Ethilon 3-0 black monofilament nylon sutures  Ethicon 1663
Magnetic stir bar VWR 74950-296 7.9mm diameter x 50mm length (5/16" diameter x 2" length)
1L glass screw-cap storage bottle Corning 1395 Type 1, Class A borosilicate glass
Heparin sodium  Sagent NDC: 25021-400 1,000U/ml solution
Peristaltic pump Cole Parmer Instruments Group 77200-60 Master Flex Easy Load II console drive
compressed carbogen (95% O2 / 5% CO2) available from local vendor N/A A-type, large cylinder 
20G x 1 ½" aluminum hub blunt needles Kendall 8881202363 0.9mm x 38.1mm
Polyurethane ice bucket Fisherbrand 02-591-45 Capacity: 0.152 oz. (4.5L)
Collagenase (Type I-S) Sigma Aldrich C1639 from Clostridium histolyticum 
Deoxyribonuclease I Worthington Biochemical Corp. LS002007 >2,000 Kunitz units per mg dry weight
Antistatic polystyrene hexagonal weighing dishes Ted Pella Inc. 20157-3 top I.D. 115mm, base I.D. 85mm, 203ml volume 
Stainless steel single edged razor blades  Garvey 40475
Bone rongeurs FST 16001-15
Hemostat FST 13014-14
Large dissection scissors Ted Pella Inc. 1316
Small dissection scissors FST 14094-11
Blunt end forceps Ted Pella Inc. 13250
7ml glass Dounce tissue grinder Kontes KT885300-0007
Percoll Density Centrifugation Media  GE Healthcare GE17-0891-01
10 mL serological pipettes Genesee Scientific 12-104 single use; sterile
70μm sterile nylon mesh cell strainers  Fisherbrand 22363548
Alexa Fluor 700-conjugated rat anti-mouse CD45 (clone: 30-F11) Biolegend 103128
APC-conjugated mouse anti-mouse NK1.1 (clone: PK136) eBiosciences  17-5941-82
PE-conjugated rat anti-mouse Gr-1 (clone:RB6-8C5) BD Pharmigen 553128
PerCP/Cy5.5-conjugated rat anti-mouse CD11b (clone: M1/70)  Biolegend 101228
Alexa Fluor 700-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control  Biolegend 400628
APC-conjugated mouse IgG2a, κ (clone: eBM2a) isotype control  eBioscience 17-4724
PE-conjugated rat IgG2b, κ (clone: eB149/10H5) isotype control  eBioscience 12-4031-82
PerCP/Cy5.5-conjugated rat IgG2b, κ (clone: RTK4530) isotype control Biolegend 400632
Pacific Blue-conjugated mouse anti-mouse granzyme B (Clone: GB11)  Biolegend 515403
Pacific Blue-conjugated mouse IgG1, κ (Clone: MOPC-21) isotype control  Biolegend 400151
Cytofix/Cytoperm BD 554714
15ml polypropylene centrifuge tubes Genesee Scientific 21-103 conical bottom 
50ml polypropylene centrifuge tubes Genesee Scientific 21-108 conical bottom
12x75mm round-bottom polypropylene FACS tubes  Fisherbrand 14-956-1B
FACSAria Special Order Research Product flow cytometer/cell sorter BD  650033
Class II Biological Safety Cabinet The Baker Company SG603 model: SterilGARD III Advance

Riferimenti

  1. Bleeker, F. E., Molenaar, R. J., & Leenstra, S. Recent advances in the molecular understanding of glioblastoma. J Neurooncol. 108, 11-27 (2012).
  2. Stupp, R. et al. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. N Engl J Med. 352, 987-996 (2005).
  3. Ostrom, Q. T. et al. CBTRUS statistical report: primary brain and central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2007-2011. Neuro Oncol. 16 Suppl 4, iv1-63 (2014).
  4. Louveau, A. et al. Structural and functional features of central nervous system lymphatic vessels. 523, 337-341 Nature. (2015).
  5. Kennedy, B. C. et al. Tumor-associated macrophages in glioma: friend or foe? J Oncol. 2013, 486912 (2013).
  6. Markovic, D. S., Glass, R., Synowitz, M., Rooijen, N., & Kettenmann, H. Microglia stimulate the invasiveness of glioma cells by increasing the activity of metalloprotease-2. J Neuropathol Exp Neurol. 64, 754-762 (2005).
  7. Zhai, H., Heppner, F. L., & Tsirka, S. E. Microglia/macrophages promote glioma progression. Glia. 59, 472-485 (2011).
  8. Kmiecik, J. et al. Elevated CD3+ and CD8+ tumor-infiltrating immune cells correlate with prolonged survival in glioblastoma patients despite integrated immunosuppressive mechanisms in the tumor microenvironment and at the systemic level. J Neuroimmunol. 264, 71-83 (2013).
  9. Yang, I., Han, S. J., Sughrue, M. E., Tihan, T., & Parsa, A. T. Immune cell infiltrate differences in pilocytic astrocytoma and glioblastoma: evidence of distinct immunological microenvironments that reflect tumor biology. J Neurosurg. 115, 505-511 (2011).
  10. Wagner, S. et al. Microglial/macrophage expression of interleukin 10 in human glioblastomas. Int J Cancer. 82, 12-16 (1999).
  11. El Andaloussi, A., & Lesniak, M. S. An increase in CD4+CD25+FOXP3+ regulatory T cells in tumor-infiltrating lymphocytes of human glioblastoma multiforme. Neuro Oncol. 8, 234-243 (2006).
  12. Kostianovsky, A. M., Maier, L. M., Anderson, R. C., Bruce, J. N., & Anderson, D. E. Astrocytic regulation of human monocytic/microglial activation. J Immunol. 181, 5425-5432 (2008).
  13. Curtin, J. F. et al. HMGB1 mediates endogenous TLR2 activation and brain tumor regression. PLoS Med. 6, e10 (2009).
  14. Curtin, J. F. et al. Fms-like tyrosine kinase 3 ligand recruits plasmacytoid dendritic cells to the brain. J Immunol. 176, 3566-3577 (2006).
  15. Mineharu, Y. et al. Engineering the brain tumor microenvironment enhances the efficacy of dendritic cell vaccination: implications for clinical trial design. Clin Cancer Res. 17, 4705-4718 (2011).
  16. Larocque, D. et al. Exogenous fms-like tyrosine kinase 3 ligand overrides brain immune privilege and facilitates recognition of a neo-antigen without causing autoimmune neuropathology. Proc Natl Acad Sci U S A. 107, 14443-14448 (2010).
  17. Curtin, J. F. et al. Treg depletion inhibits efficacy of cancer immunotherapy: implications for clinical trials. PLoS One. 3, e1983 (2008).
  18. Ali, S. et al. Combined immunostimulation and conditional cytotoxic gene therapy provide long-term survival in a large glioma model. Cancer Res. 65, 7194-7204 (2005).
  19. Dewey, R. A. et al. Chronic brain inflammation and persistent herpes simplex virus 1 thymidine kinase expression in survivors of syngeneic glioma treated by adenovirus-mediated gene therapy: implications for clinical trials. Nat Med. 5, 1256-1263 (1999).
  20. Baker, G. J. et al. Natural killer cells eradicate galectin-1-deficient glioma in the absence of adaptive immunity. Cancer Res. 74, 5079-5090 (2014).
  21. Baker, G. J. et al. Mechanisms of glioma formation: iterative perivascular glioma growth and invasion leads to tumor progression, VEGF-independent vascularization, and resistance to antiangiogenic therapy. Neoplasia. 16, 543-561 (2014).
  22. Ormerod, M. G., & Novo, D. Flow cytometry : a basic introduction. (2008).
  23. Stirling, D. P., & Yong, V. W. Dynamics of the inflammatory response after murine spinal cord injury revealed by flow cytometry. J Neurosci Res. 86, 1944-1958 (2008).
  24. Hirai, T. et al. The prevalence and phenotype of activated microglia/macrophages within the spinal cord of the hyperostotic mouse (twy/twy) changes in response to chronic progressive spinal cord compression: implications for human cervical compressive myelopathy. PLoS One. 8, e64528 (2013).
  25. Fleming, T. J., Fleming, M. L., & Malek, T. R. Selective expression of Ly-6G on myeloid lineage cells in mouse bone marrow. RB6-8C5 mAb to granulocyte-differentiation antigen (Gr-1) detects members of the Ly-6 family. J Immunol. 151, 2399-2408 (1993).
  26. Wiesner, S. M. et al. De novo induction of genetically engineered brain tumors in mice using plasmid DNA. Cancer Res. 69, 431-439 (2009).
  27. Holland, E. C. et al. Combined activation of Ras and Akt in neural progenitors induces glioblastoma formation in mice. Nat Genet. 25, 55-57 (2000).
  28. Lynes, J. et al. Lentiviral-induced high-grade gliomas in rats: the effects of PDGFB, HRAS-G12V, AKT, and IDH1-R132H. Neurotherapeutics. 11, 623-635 (2014).
  29. de Vries, N. A. et al. Rapid and robust transgenic high-grade glioma mouse models for therapy intervention studies. Clin Cancer Res. 16, 3431-3441 (2010).
  30. Uhrbom, L. et al. Ink4a-Arf loss cooperates with KRas activation in astrocytes and neural progenitors to generate glioblastomas of various morphologies depending on activated Akt. Cancer Res. 62, 5551-5558 (2002).
  31. Marumoto, T. et al. Development of a novel mouse glioma model using lentiviral vectors. Nat Med. 15, 110-116 (2009).
  32. Assanah, M. et al. Glial progenitors in adult white matter are driven to form malignant gliomas by platelet-derived growth factor-expressing retroviruses. J Neurosci. 26, 6781-6790 (2006).
check_url/it/53676?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Baker, G. J., Castro, M. G., Lowenstein, P. R. Isolation and Flow Cytometric Analysis of Glioma-infiltrating Peripheral Blood Mononuclear Cells. J. Vis. Exp. (105), e53676, doi:10.3791/53676 (2015).

View Video