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Articolo metodologico

Mieloide isolamento delle cellule da topo pelle e drenante linfonodi seguito intradermica immunizzazione con vivo attenuato

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DOI:

10.3791/53796

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18 maggio 2016

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In questo articolo

Sommario

Descriviamo qui un protocollo per isolare le cellule mieloidi dalla pelle di topo e drenare i linfonodi dopo l'iniezione intradermica di sporozoiti di Plasmodium. La citometria a flusso delle cellule raccolte fornisce un test affidabile per caratterizzare la risposta infiammatoria della pelle e drenante dei linfonodi al parassita.

Abstract

Malaria inizia quando la fase sporozoite di Plasmodium è inoculata in pelle di un mammifero ospite attraverso una puntura di zanzara. Il parassita altamente mobili non raggiunge solo il fegato per invadere epatociti e la trasformazione in forma eritrociti-infettiva. Si migra anche nella pelle e per il linfonodo drenante prossimale sito di iniezione, dove può essere riconosciuto e degradato da residenti e / o di cellule mieloidi reclutate. L'imaging intravitale ha riferito l'assunzione precoce di fluorescenza brillante Lys-GFP leucociti positivi nella pelle e le interazioni tra sporozoiti e CD11c + cellule del linfonodo drenante. Presentiamo qui una procedura efficiente per recuperare, identificare e contare i sottoinsiemi di cellule mieloidi che vengono reclutati per la pelle del mouse e drenanti linfonodi dopo l'iniezione intradermica di immunizzare dosi di sporozoites in un modello murino. La caratterizzazione fenotipica usando flusso multi-parametrica fornisce citometriaun test affidabile per valutare i primi cambiamenti cellulari dinamiche durante la risposta infiammatoria alle infezioni Plasmodium.

Introduzione

La malaria è una delle più letali malattie infettive in tutto il mondo, uccidendo più di mezzo milione di persone all'anno. Infezione da Plasmodium, l'agente causale della malattia, inizia una fase di pre-eritrocitaria (PE). Durante questa fase, sporozoiti iniettati nella pelle ospitante da una femmina anopheline zanzara raggiungono il fegato attraverso il flusso sanguigno e si differenziano epatociti all'interno nelle forme parassiti che infettano i globuli rossi e causano i sintomi della malattia.

Le fasi PE di Plasmodium rappresentano un bersaglio privilegiato per la vaccinazione anti-malaria. In ....

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Protocollo

Tutte le procedure sono state approvate dal comitato dell'Istituto Pasteur e dal Comitato Etico locale sulla sperimentazione animale (comitato etico IDF-Paris 1, Paris, France; numero di contratto: 2.012-0.015) ed eseguite in conformità con le linee guida e regolamenti applicabili.

1. Materiali e reagenti

  1. Utilizzare femmina Anopheles zanzare stephensi (ceppo Sda500) che si nutrono di topi infetti 3-5 giorni dopo la nascita e posteriore come descritto in precedenza 21.
  2. Utilizzare i parassiti Plasmodium berghei ANKA clone che esprime il gene Green Fluorescent Protein (GFP) sotto il controllo d....

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Risultati

Abbiamo recentemente dimostrato che l'ago-siringa per iniezione di immunizzare dosi di P. berghei sporozoiti nella pelle del mouse induce un reclutamento successiva di neutrofili polimorfonucleati seguite da monociti infiammatorie della pelle e DLN 19. La Sezione protocollo descritto in dettaglio la procedura utilizzata per isolare con successo cellule mieloidi dal vivo da entrambi i tessuti seguenti iniezioni multiple di gran numero di sporozoiti nel derma dell&#.......

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Discussione

Nella prospettiva della vaccinazione su larga scala degli esseri umani utilizzando un intero vaccino contro la malaria sporozoite, una delle principali sfide da superare è quello di sviluppare percorsi e metodi di somministrazione parassita ottimizzati per garantire l'immunizzazione e la protezione 24,25 successo. Negli esseri umani, la valutazione della efficacia protettiva mediata da parassiti vivi attenuati (LAP) sono seguite zanzara naturale morde 2, nonché intradermica, sottocutanea 2.......

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Dichiarazioni

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Gli autori ringraziano Patricia Baldacci, Vanessa Lagal e Sabine Thiberge per la lettura critica, Irina Dobrescu e Sabine Thiberge aiuto per scattare foto e Pauline Formaglio per l'insegnamento imaging in vivo di sporozoite motilità nella pelle del mouse. Vorremmo anche ringraziare Marek Szatanik e il Centro di Produzione e infezione di Anopheles (CEPIA-Institut Pasteur) per l'allevamento di zanzare. Questo studio è stato sostenuto dal Fondo AXA Ricerca e fondi dal Laboratoire d'Excellence "Biologia Integrativa di Emerging Infectious Diseases" (Grant no. ANR-10-LabX-62-IBEID).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Ketamina: Imalgene® 1.000Merial-50mg/kg: precedente iniezione di sporozoite 125 mg/kg: sacrificio precedente
Xilazina: Rompun® 2%Bayer-5mg/kg: precedente iniezione di sporozoite 12,5 mg/kg: sacrificio precedente
siringa NanoFil + ago calibro 35World Precision Instruments --
Omnican® 50 Siringa da insulina 0,5 ml/50 U.I.B. Braun Medical Piastra per
coltura tissutale 9151125-MultiwellTM a 6 pozzetti... Fondo piattoBD Falcon 353046-70
µ filtro cellulare m BD Falco352350-Siringa
da 2 mlTerumoSS-02S-BLUE
MAXTM 15 ml Tubo conico in polipropileneBD Falcon352097-BLUE
MAXTM 50 ml Tubo conico in polipropileneBD Falcon352098-5
ml di tubo a fondo tondo in polistirene con 35 µ m Tappo Filtro CellulareBD Falcon
1x CaCl2- e MgCl2--freeLife Technologies14190-094-DMEM
1x + GlutaMAXTMLife Technologies31966-021-Collagenasi
da Clostridium histolyticum, Tipo IV 0,5-5,0 unità FALGPA/mg solido Sigma-Aldrich C5138400 U/ml 
Desossiribonucleasi I da pancreas bovino, tipo IVSigma-Aldrich D502550 & micro; g/ml
di sale disodico EDTASigma-Aldrich E-513410 mM o 2,5 mM
FBSBiowestS1810-500-HEPES
soluzione tampone (1M)Gibco15630-05625 mM
Trypan blue Stain (0,4%)Life Technologies15250-061Diluizione 1:10 
Anti-topo CD16/CD32 (clone 2.4G2)BD Biosciences55314210 µ g/ml finale (1:50)
DAPI FluoroPureTM gradoLife TechnologiesD214901 µ g/ml finale
Anti-topo CD45 (clone 30-F11)BD Biosciences559864  Diluizione 1:200
Anti-topo CD11b (clone M1/70)BD Biosciences557657  Diluizione 1:400
Anti-topo CD8&alfa; (clone 5H10)Tecnologie per la vitaMCD0830  Diluizione 1:100
Topi femmina C57BL/6JRj (7 settimane) Laboratori Janvier--
352235-DPBS

Riferimenti

  1. Nussenzweig, R. S., Vanderberg, J., Most, H., Orton, C. Protective immunity produced by the injection of x-irradiated sporozoites of plasmodium berghei. Nature. 216 (5111), 160-162 (1967).
  2. Hoffman, S. L., et al.

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