Summary

Samtidig Påvisning av c-Fos Aktivering fra mesolimbiske og Mesocortical Dopamin Reward nettsteder Etter Naive sukker og fett Svelging i rotter

Published: August 24, 2016
doi:

Summary

Målet med denne studien er å identifisere belønning relaterte distribuert hjernenettverk ved opptegning en pålitelig immunhistokjemi teknikk som bruker mobil c-fos aktivisering for å måle samtidige endringer i dopamin trasé og terminal nettsider etter romanen inntak av fett og sukker i rotter.

Abstract

Denne studien bruker mobil c-fos aktivisering for å vurdere virkningene av romanen inntak av fett og sukker på hjernen dopamin (DA) baner i rotter. Inntak av sukker og fett er formidlet av sine medfødte attraksjoner samt lært preferanser. Brain dopamin, spesielt meso-limbiske og meso-kortikale anslag fra baksiden tegmentale området (VTA), har vært innblandet i begge disse ulærde og lærte responser. Konseptet med distribuerte hjernenettverk, karakterisert ved at flere områder og sender / peptid-systemene kommuniserer, er blitt foreslått å formidle velsmakende matinntak, men det er begrenset bevis for empirisk å demonstrere slike handlinger. Dermed utløser sukkerinntak DA frigivelse og øker c-fos-lignende immunoreaktivitet (FLI) fra individuelle VTA-DA-projeksjonssoner inkludert nucleus accumbens (NAC), amygdala (AMY) og mediale prefrontale cortex (MPFC) samt dorsal striatum. Videre sentrale administrasjonen av selektive DA-reseptorantagonister i disse områdeter forskjellig redusere kjøp og uttrykk for klimaanlegg smakspreferanser fremkalt av sukker eller fett. En tilnærming der for å avgjøre om disse områdene interaksjon som et distribuert hjernenettverk som svar på sukker eller fett inntaket ville være å samtidig vurdere om VTA og dens store mesotelencephalic DA projeksjonssoner (prelimbic og infralimbic MPFC, kjernen og skallet av NAC, basolateral og sentral-Cortico-medial AMY) samt rygg striatum ville DISPLAY koordinert og samtidig FLI aktivering etter oralt, ubetinget inntak av maisolje (3,5%), glukose (8%), fruktose (8%) og sakkarin (0,2 %) løsninger. Denne tilnærmingen er en vellykket første trinn i å identifisere muligheten for å bruke celle c-fos-aktivering samtidig over relevante hjernesider for å studere belønning relatert læring i inntak av velsmakende mat i gnagere.

Introduction

Brain dopamin (DA) har vært innblandet i sentrale reaksjoner på inntak av velsmakende sukker gjennom foreslåtte hedonic 1,2, innsats relaterte 3 og vanebasert 4,5 virkningsmekanismer. Den primære DA pathway innblandet i disse effektene stammer i ventral tegmentale området (VTA), og prosjekter til nucleus accumbens (NAC) kjerne og skall, den basolateral og sentral-Cortico-medial amygdala (AMY), og prelimbic og infralimbic medial prefrontal cortex (MPFC) (se vurderinger 6,7). VTA har vært innblandet i sukroseinntaket 8,9, og DA utgivelsen er observert etter sukkerinntak i NAC 10-15, AMY 16,17 og MPFC 18-20. Fettinntaket også stimulerer DA NAC frigi 21, og en annen DA-rike projeksjon sone til den dorsale striatum (caudate-putamen) er også forbundet med DA-mediert mating 22,23. Kelley 24-27 slås at disse flere prosjektion soner av denne DA-mediert system dannet en integrert og interaktiv distribuert hjernen nettverk gjennom omfattende og intime sammenhengene 28-34.

I tillegg til evnen til DA D1 og D2-reseptor-antagonister for å redusere inntak av sukker og fett 35-37 38-40 har DA signale også vært implisert i mediering av den evnen av sukker og fett for å produsere kondisjonesmakspreferanser (CFP) 41- 46. Microinjections av et DA D1 reseptor antagonist i NAC, AMY eller MPFC 47-49 eliminere oppkjøpet av CFP utløst av intragastrisk glukose. Mens microinjections av enten DA D1 eller D2 reseptorantagonister inn i MPFC eliminerer oppkjøpet av fruktose-CFP 50, er oppkjøp og uttrykk av fruktose-CFP forskjellig blokkert av DA-antagonister i NAC og AMY 51,52.

C-fos teknikk 53,54 har vært ansatt for å undersøke nevrale activation indusert av spiselig inntak og nevral aktivering. Uttrykket "c-fos aktivering" vil bli brukt gjennom hele manuskriptet, og er operasjonelt definert ved økt transkripsjon av c-Fos i løpet av neuronal depolarisering. Sukroseinntaket øket fos-lignende immunoreaktivitet (FLI) i den sentrale kjerne AMY, VTA samt skallet, men ikke kjerne, av NAC 55-57. Mens sukroseinntaket i sham-rotter mating betydelig økt FLI i AMY og NAC, men ikke VTA 58, intragastrisk sukrose eller glukose infusjoner betydelig økt FLI i NAC og sentrale og basolaterale kjerner av AMY 59,60. Gjentatt tilsats av sakkarose til planlagt chow adgang øket FLI i MPFC samt NAC skall og kjerne 61. En sukrosekonsentrasjon nedgiring paradigme avslørte at den største økning skjedde FLI i basolateral AMY og NAC, men ikke VTA 62. Etter conditioning, utryddelse av sukker relaterte naturlig reward atferd økte FLI i basolateral AMY og NAC 63. Videre sammenkobling sukker tilgjengeligheten til en tone resulterte i tonen senere økende FLI nivåer i basolateral AMY 64. Høy fettinntaket økte også FLI i NAC og MPFC områder 65-67.

De fleste av de tidligere omtalte studiene undersøkte sukker og fett effekter på c-fos aktivering i enkelt områder som ikke gir informasjon om identifikasjon av belønning relaterte distribuerte hjernenettverk 24-27. Videre mange av studiene heller ikke avgrense de relative bidragene fra sub-områder av NAC (kjerne og skall), AMY (basolateral og sentral-Cortico-mediale) og MPFC (prelimbic og infralimbic) som potensielt kan bli vurdert av nytte av gode romlige, encellede oppløsning i c-Fos kartlegging 68. Vårt laboratorium 69 sist brukte c-fos aktivering og samtidig målt endringer i VTA DA sti og dens projection soner (NAC, Amy og MPFC) etter romanen inntak av fett og sukker i rotter. Denne studien beskriver prosedyrer og metodiske tiltak for å samtidig analysere om akutt eksponering for seks forskjellige løsninger (maisolje, glukose, fruktose, sakkarin, vann og en fettemulsjon kontroll) ville forskjellig aktivere FLI i delområder av NAC, AMY, MPFC samt dorsal striatum. Dette samtidig påvisning av forskjeller tillatt bekreftelse av signifikante effekter på FLI i hvert område, og beslutning om hvorvidt endringer i ett bestemt område korrelert med endringer i beslektede områder, og dermed gi støtte til et distribuert hjernen nettverk 24-27. Disse prosedyrene testet om VTA, den prelimbic og infralimbic MPFC, kjernen og skallet av NAC, og basolateral og sentral-Cortico-medial AMY) samt rygg striatum ville DISPLAY koordinert og samtidig FLI aktivering etter oralt, ubetingede inntak av glukose (8%), fruktose (8%), maisolje (3,5%) og sakkarin (0,2%) løsninger.

Protocol

Disse eksperimentelle protokollene har blitt godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité bekrefter at alle fag og prosedyrer er i samsvar med National Institutes of Health Guide for omsorg og bruk av forsøksdyr. 1. Temaer Kjøp og / eller type Sprague-Dawley hannrotter (260-300 g). Hus rotter individuelt i netting bur. Holde dem på en 12:12 timers lys / mørke syklus med rotte chow og vann tilgjengelig ad libitum. Tildele passende utvalgsstørrelser (for ek…

Representative Results

Alle representative resultater er beskrevet nedenfor har blitt publisert tidligere 69, og er re-presenteres her for å støtte "proof of concept" i angir effektiviteten av teknikken. løsning inntak Det ble ikke observert signifikante forskjeller i baseline sakkarin inntak i løpet av de første fire dagene for alle dyr (F (3,108) = 57.27, p <0,001) med inntak (Dag 1: 1,3 (± 0,2…

Discussion

Målet med studien var å finne ut om kilden (VTA) og forhjernen projeksjon mål (NAC, Amy, MPFC) av DA belønning relaterte nevronene ble samtidig aktivert etter romanen inntak av fett og sukker i rotter ved bruk av mobil c-fos teknikk . Denne studien er en detaljert beskrivelse av protokollene fra en studie publisert tidligere 69. Det ble antatt at den VTA, dens store projeksjonssone til prelimbic og infralimbic MPFC, kjernen og skallet av NAC og basolateral og sentral-Cortico-medial AMY, samt dorsal striat…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Takket være Diana Icaza-Culaki, Cristal Sampson og teologiens Karagiorgis for deres harde arbeid på dette prosjektet.

Materials

Equipment
Sprague-Dawley rats Charles River Laboratories CD-1
Wire Mesh Cages Lab Products, Seaford, DE 30-Cage rack
Rat Chow PMI Nutrition International 5001
Taut Metal Spring Lab Products, Seaford, DE n/a
Rat Weighing Scale Fisher Scientific Company n/a
Nalgene Centrifuge Tubes Lab Products, Seaford, DE 10-0501
Rubber Stopper Lab Products, Seaford, DE n/a
Metal Sippers Lab Products, Seaford, DE n/a
Saccharin Sigma Chemical Co 82385-42-0
Kool-Aid, Cherry Kool-Aid Commerical
Kool-Aid, Grape Kool-Aid Commercial
Fructose Sigma Chemical Co F0127
Glucose Sigma Chemical Co G8270
Corn Oil Mazzola Commerical
Xanthan Gum Sigma Chemical Co 11138-66-2
Sliding Microtome Microm International n/a
Neurolucida Camera MBF Bioscience Software application
Gelatin-coated Slides Fisher Scientific Company 12-550-343
Cover glass Fisher Scientific Company 12-545-M
Golden Nylon Brushes Loew-Cornell  2037
Natural Hair Sable  Loew-Cornell  2022
24 Well Plates Fisher Scientific 3527
6 Well Plates Fisher Scientific 3506
1L Pyrex bottles Fisher Scientific 1395-1L
Tissue insert (tissue strainer) Fisher Scientific 7200214
Eagle pipettes  World Precision Instruments E10 for 1-10ul 
Eagle pipettes  World Precision Instruments E100 for 20-100ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E200 for 50-200ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E1000 for 100-1000ul
Eagle pipettes  World Precision Instruments E5000 for 1000-5000ul 
Universal Tips .1-10ul World Precision Instruments 500192
Universal Tips 5-200ul World Precision Instruments 500194
Universal Tips 500-5000ul World Precision Instruments 500198
Blade Vibroslice 100 World Precision Instruments BLADE
DPX Mounting Medium  Electron Microscopy  13510
15mL centrifuge tubes Biologix Research Co. 10-0501
Slide Boxes Biologix Research Co. 41-6100
Orbital Shaker  Madell Corporation   ZD-9556
weigh boats  Fisher Scientific 02-202-100
5mL disposable pipettes Fisher Scientific 13-711-5AM
Stereo Investigator Software Micro Bright Field Software application
Name Company Catalog number Comments
Reagents
Paraformaldehyde Granular Fisher Scientific 19210
NaCl Fisher Scientific S271-1
Sodium Phophate Monobasic Fisher Scientific S468-500
Sodium Phosphate Diphasic Fisher Scientific BP332-500
Hydrogen Peroxide  Fisher Scientific H324-500
SafeClear II  Fisher Scientific 23-044-192
Methanol  Fisher Scientific A412-1
Normal Goat Serum Vector S-1000
Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L) Vector BA-1000
ABC Kit Peroxidase Standard Vector PK-4000
Anti-cFos (Ab-5) Rabbit EMD chem/Cal Biochem PC38
Triton X 100 SigmaAldrich X-100
3,3' diaminobenzidine tetra hydrochloride  SigmaAldrich D5905
Sodium Hydroxide SigmaAldrich 5881
Primary TH anti body EMD Millipore AB152
Euthosol Virbac AH

Riferimenti

  1. Koob, G. F. Neural mechanisms of drug reinforcement. Ann. N.Y. Acad. Sci. 654, 171-191 (1992).
  2. Wise, R. A. Role of brain dopamine in food reward and reinforcement. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 361, 1149-1158 (2006).
  3. Salamone, J. D., & Correa, M. The mysterious motivational functions of mesolimbic dopamine. Neuron., 76, 470-485 (2012).
  4. Horvitz, J. C., Choi, W. Y., Morvan, C., Eyny, Y., & Balsam, P.D. A "good parent" function of dopamine: transient modulation of learning and performance during early stages of training. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1104, 270-288 (2007).
  5. Wickens, J. R., Horvitz, J. C., Costa, R. M., & Killcross, S. Dopaminergic mechanisms in actions and habits. J. Neurosci. 27, 8181-8183 (2007).
  6. Bjorklund, A., & Dunnett, S. B. Dopamine neuron systems in the brain: an update. Trends Neurosci. 30, 194-202 (2007).
  7. Swanson, L. W. The projections of the ventral tegmental area and adjacent regions: a combined fluorescent retrograde tracer and immunofluorescence study in the rat. Brain Res. Bull. 9, 321-353 (1982).
  8. Cacciapaglia, F., Wrightman, R. M., & Careli, R. M. Rapid dopamine signaling differentially modulates distinct microcircuits within the nucleus accumbens during sucrose-directed behavior. J. Neurosci. 31, 13860-13869 (2011).
  9. Martinez-Hernandez, J., Lanuza, E., & Martinez-Garcia, F. Selective dopaminergic lesions of the ventral tegmental area impair preference for sucrose but not for male sex pheromones in female mice. Eur. J. Neurosci. 24, 885-893 (2006).
  10. Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential influence of associative and nonassociative learning mechanisms on the responsiveness of prefrontal and accumbal dopamine transmission to food stimuli in rats fed ad libitum. J. Neurosci. 17, 851-861 (1997).
  11. Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential responsiveness of dopamine transmission to food-stimuli in nucleus accumbens shell/core compartments. Neurosci. 89, 637-641, (1999).
  12. Cheng, J, & Feenstra, M.G. Individual differences in dopamine efflux in nucleus accumbens shell and core during instrumental conditioning. Learn. Mem. 13, 168-177 (2006).
  13. Genn, R.F., Ahn, S., & Phillips, A.G. Attenuated dopamine efflux in the rat nucleus accumbens during successive negative contrast. Behav. Neurosci. 118, 869-873 (2004).
  14. Hajnal, A., & Norgren, R. Accumbens dopamine mechanisms in sucrose intake. Brain Res. 904, 76-84 (2001).
  15. Hajnal, A., Smith, G.P., & Norgren, R. Oral sucrose stimulation increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. 286 R31-R37 (2003).
  16. Bassareo, V., & Di Chiara, G. Modulation of feeding-induced activation of mesolimbic dopamine transmission by appetitive stimuli and its relation to motivational state. Eur. J. Neurosci. 11, 4389-4397 (1999).
  17. Hajnal, A., & Lenard, L. Feeding-related dopamine in the amygdala of freely moving rats. Neuroreport. 8, 2817-2820 (1997).
  18. Bassareo, V., De Luca, M.A., & Di Chiara, G. Differential expression of motivational stimulus properties by dopamine in nucleus accumbens shell versus core and prefrontal cortex. J. Neurosci. 22, 4709-4719 (2002).
  19. Feenstra, M., & Botterblom, M. Rapid sampling of extracellular dopamine in the rat prefrontal cortex during food consumption, handling, and exposure to novelty. Brain Res. 742, 17-24 (1996).
  20. Hernandez, L., & Hoebel, B.G. Feeding can enhance dopamine turnover in the prefrontal cortex. Brain Res. Bull. 25, 975-979 (1990).
  21. Liang, N. C., Hajnal, A., & Norgren, R. Sham feeding corn oil increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 291, R1236-1239 (2006).
  22. Dunnett, S. B., & Iversen, S. D. Regulatory impairments following selective kainic acid lesions of the neostriatum. Behav. Brain Res. 1, 497-506 (1980).
  23. Salamone, J. D., Zigmond, M. J., & Stricker, E. M. Characterization of the impaired feeding behavior in rats given haloperidol or dopamine-depleting brain lesions. Neurosci. 39, 17-24 (1990).
  24. Kelley, A. E. Ventral striatal control of appetitive motivation: role in ingestive behavior and reward-related learning. Neurosci. Biobehav. Rev. 27, 765-776 (2004).
  25. Kelley, A.E. Memory and addiction: shared neural circuitry and molecular mechanisms. Neuron. 44, 161-179 (2004).
  26. Kelley, A.E., Baldo, B.A., & Pratt, W.E. A proposed hypothalamic-thalamic-striatal axis for the integration of energy balance, arousal and food reward. J. Comp. Neurol. 493, 72-85 (2005).
  27. Kelley, A. E., Baldo, B. A., Pratt, W. E., & Will, M. J. Corticostriatal-hypothalamic circuitry and food motivation: integration of energy, action and reward. Physiol. Behav. 86, 773-795 (2005).
  28. Berendse, H.W., Galis-de-Graaf, Y., & Groenewegen, H.J. Topographical organization and relationship with ventral striatal compartments of prefrontal corticostriatal projections in the rat. J. Comp. Neurol. 316, 314-347 (1992).
  29. Brog, J.S., Salyapongse, A., Deutch, A.Y., & Zahm, D.S. The patterns of afferent innervation of the core and shell in the "accumbens" part of rat ventral striatum: immunohistochemical detection of retrogradely transported fluoro-gold. J. Comp. Neurol. 338, 255-278 (1993).
  30. McDonald, A.J. Organization of amygdaloid projections to the prefrontal cortex and associated stritum in the rat. Neurosci. 44, 1-14 (1991).
  31. McGeorge, A.J., & Faull, R.L. The organization of the projection from the cerebral cortex to the striatum in the rat. Neurosci. 29, 503-537 (1989).
  32. Sesack, S.R., Deutch, A.Y., Roth, R.H., & Bunney, B.S. Topographical organization of the efferent projections of the medial prefrontal cortex in the rat: an anterograde tract-tracing study with Phaseolus vulgaris leucoagglutinin. J. Comp. Neurol. 290, 213-242 (1989).
  33. Wright, C.I., Beijer, A.V., & Groenewegen, H.J. Basal amygdaloid complex afferents to the rat nucleus accumbens are compartmentally organized. J. Neurosci. 16, 1877-1893 (1996).
  34. Wright, C.I., & Groenewegen, H.J. Patterns of convergence and segregation in the medial nucleus accumbens of the rat: relationships of prefrontal cortical, midline thalamic and basal amygdaloid afferents. J. Comp. Neurol. 361, 383-403 (1995).
  35. Geary, N., & Smith, G.P. Pimozide decreases the positive reinforcing effect of sham fed sucrose in the rat. Pharmacol. Biochem. Behav. 22, 787-790 (1985).
  36. Muscat, R., & Willner, P. Effects of selective dopamine receptor antagonists on sucrose consumption and preference. Psychopharmacol. 99, 98-102 (1989).
  37. Schneider, L.H., Gibbs, J., & Smith, G.P. D-2 selective receptor antagonists suppress sucrose sham feeding in the rat. Brain Res. Bull. 17, 605-611 (1986).
  38. Baker, R.W., Osman, J., & Bodnar, R.J. Differential actions of dopamine receptor antagonism in rats upon food intake elicited by mercaptoacetate or exposure to a palatable high-fat diet. Pharmacol. Biochem. Behav. 69, 201-208 (2001).
  39. Rao, R.E., Wojnicki, F.H., Coupland, J., Ghosh, S., & Corwin, R.L. Baclofen, raclopride and naltrexone differentially reduce solid fat emulsion intake under limited access conditions. Pharmacol. Biochem. Behav. 89, 581-590 (2008).
  40. Weatherford, S.C., Smith, G.P., & Melville, L.D. D-1 and D-2 receptor antagonists decrease corn oil sham feeding in rats. Physiol. Behav. 44, 569-572 (1988).
  41. Azzara, A. V., Bodnar, R. J., Delamater, A. R., & Sclafani, A. D1 but not D2 dopamine receptor antagonism blocks the acquisition of a flavor preference conditioned by intragastric carbohydrate infusions. Pharmacol. Biochem. Behav. 68, 709-720 (2001).
  42. Baker, R. M., Shah, M. J., Sclafani, A., & Bodnar, R. J. Dopamine D1 and D2 antagonists reduce the acquisition and expression of flavor-preferences conditioned by fructose in rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 75, 55-65 (2003).
  43. Dela Cruz, J.A., Coke, T., Icaza-Cukali, D., Khalifa, N., & Bodnar, R. J. Roles of NMDA and dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of flavor preferences conditioned by oral glucose in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 114, 223-230 (2014).
  44. Dela Cruz, J. A, et al. Roles of dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fat-conditioned flavor preferences in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 97, 332-337 (2012).
  45. Yu, W.Z., Silva, R.M., Sclafani, A., Delamater, A.R., & Bodnar, R.J. Pharmacology of flavor preference conditioning in sham-feeding rats: effects of dopamine receptor antagonists. Pharmacol. Biochem. Behav. 65, 635-647 (2000).
  46. Yu, W. Z., Silva, R. M., Sclafani, A., Delamater, A. R., & Bodnar, R. J. Role of D(1) and D(2) dopamine receptors in the acquisition and expression of flavor-preference conditioning in sham-feeding rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 67, 537-544 (2000).
  47. Touzani, K., Bodnar, R. J, & Sclafani, A. Activation of dopamine D1-like receptors in nucleus accumbens is critical for the acquisition, but not the expression, of nutrient-conditioned flavor preferences in rats. Eur. J. Neurosci. 27, 1525-1533 (2008).
  48. Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Dopamine D1-like receptor antagonism in amygdala impairs the acquisition of glucose-conditioned flavor preference in rats. Eur. J. Neurosci. 30, 289-298 (2009).
  49. Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Acquisition of glucose-conditioned flavor preference requires the activation of dopamine D1-like receptors within the medial prefrontal cortex in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 94, 214-219 (2010).
  50. Malkusz, D. C., et al. Dopamine signaling in the medial prefrontal cortex and amygdala is required for the acquisition of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 233, 500-507 (2012).
  51. Bernal, S. Y., et al. Role of dopamine D1 and D2 receptors in the nucleus accumbens shell on the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor-flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 190, 59-66 (2008).
  52. Bernal, S. Y.,et al. Role of amygdala dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 205, 183-190 (2009).
  53. Dragunow, M., & Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J. Neurosci. Methods. 29, 261-265 (1989).
  54. VanElzakker, M., Fevurly, R. D., Breindel, T., & Spencer, R. L. Environmental novelty is associated with a selective increase in Fos expression in the output elements of the hippocampal formation and the perirhinal cortex. Learn. Mem. 15, 899-908 (2008).
  55. Norgren, R., Hajnal, A., & Mungarndee, S. S. Gustatory reward and the nucleus accumbens. Physiol. Behav. 89, 531-535 (2006).
  56. Park, T. H., & Carr, K. D. Neuroanatomical patterns of fos-like immunoreactivity induced by a palatable meal and meal-paired environment in saline- and naltrexone-treated rats. Brain Res. 805, 169-180 (1998).
  57. Zhao, X. L., Yan, J. Q., Chen, K., Yang, X. J., Li, J. R., & Zhang, Y. Glutaminergic neurons expressing c-Fos in the brainstem and amygdala participate in signal transmission and integration of sweet taste. Nan.Fang Yi.Ke.Da.Xue.Xue.Bao. 31,1138-1142 (2011).
  58. Mungarndee, S. S., Lundy, R. F., Jr., & Norgren, R. Expression of Fos during sham sucrose intake in rats with central gustatory lesions. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 295, R751-R763 (2008).
  59. Otsubo, H., Kondoh, T., Shibata, M., Torii, K., & Ueta, Y. Induction of Fos expression in the rat forebrain after intragastric administration of monosodium L-glutamate, glucose and NaCl. Neurosci. 196, 97-103 (2011).
  60. Yamamoto, T., Sako, N., Sakai, N., & Iwafune, A. Gustatory and visceral inputs to the amygdala of the rat: conditioned taste aversion and induction of c-fos-like immunoreactivity. Neurosci. Lett. 226, 127-130 (1997).
  61. Mitra, A., Lenglos, C., Martin, J., Mbende, N., Gagne, A., & Timofeeva, E. Sucrose modifies c-fos mRNA expression in the brain of rats maintained on feeding schedules. Neurosci. 192, 459-474 (2011).
  62. Pecoraro, N., & Dallman, M. F. c-Fos after incentive shifts: expectancy, incredulity, and recovery. Behav. Neurosci. 119, 366-387 (2005).
  63. Hamlin, A. S., Blatchford, K. E., & McNally, G. P. Renewal of an extinguished instrumental response: Neural correlates and the role of D1 dopamine receptors. Neurosci. 143,.25-38 (2006).
  64. Kerfoot, E. C., Agarwal, I., Lee, H. J., & Holland, P. C. Control of appetitive and aversive taste-reactivity responses by an auditory conditioned stimulus in a devaluation task: A FOS and behavioral analysis. Learn. Mem. 14, 581-589 (2007).
  65. Zhang, M., & Kelley, A.E. Enhanced intake of high-fat food following striatal mu-opioid stimulation: microinjection mapping and fos expression. Neurosci. 99, 267-277 (2000).
  66. Teegarden, S.L., Scott, A.N., & Bale, T.L. Early life exposure to a high fat diet promotes long-term changes in dietary preferences and central reward signaling. Neurosci. 162, 924-932 (2009).
  67. Del Rio, D., et al. Involvement of the dorsomedial prefrontal cortex in high-fat food conditioning in adolescent mice. Behav. Brain Res. 283, 227-232 (2015).
  68. Knapska, E., Radwanska, K., Werka, T., & Kaczmarek, L. Functional internal complexity of amygdala: focus on gene activity mapping after behavioral training and drugs of abuse. Physiol. Rev. 87, 1113-1173 (2007).
  69. Dela Cruz, J.A.D.,et al. c-Fos induction in mesotelencephalic dopamine pathway projection targets and dorsal striatum following oral intake of sugars and fats in rats. Brain Res. Bull. 111, 9-19 (2015).
  70. Paxinos, G., & Watson, C. The rat brain in stereotaxic coordinates. Elsevier (2006).
  71. Ranaldi, R., et al. The effects of VTA NMDA receptor antagonism on reward-related learning and associated c-fos expression in forebrain. Behav. Brain Res. 216, 424-432 (2011).
check_url/it/53897?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dela Cruz, J. A. D., Coke, T., Bodnar, R. J. Simultaneous Detection of c-Fos Activation from Mesolimbic and Mesocortical Dopamine Reward Sites Following Naive Sugar and Fat Ingestion in Rats. J. Vis. Exp. (114), e53897, doi:10.3791/53897 (2016).

View Video