Sıçanlar Naif Şeker ve Yağ Yeme ardından mezolimbik ve mezokortikal Dopamin Ödül Siteleri c-Fos Aktivasyon Eşzamanlı Algılama
Summary
Bu çalışmanın amacı, sıçanlarda yağ ve şeker yeni alımından sonra dopamin yollar ve terminal sitelerinde eş zamanlı değişiklikleri ölçmek için hücresel c-fos aktivasyonu kullanılarak güvenilir bir immünohistolojik tekniği ortaya koymaya tarafından ödül ile ilgili dağıtılan beyin ağları tespit etmektir.
Abstract
Bu çalışma, sıçanlarda beyin dopamin (DA) yollar üzerinde yağ ve şeker yeni yenmesi etkilerini değerlendirmek üzere hücresel c-fos aktivasyonu kullanır. şeker ve yağ girişleri onların doğuştan konumlar yanı sıra öğrenilen tercihleri aracılık eder. Beyin dopamin özellikle meso-limbik ve ventral tegmental alan (VTA) için mezokortikal çıkıntılar, bu bilgisiz ve öğrenilmiş yanıtların hem de implike edilmiştir. Birkaç site ve verici / peptid sistemleri etkileşim burada dağıtılan beyin ağları kavramı, lezzetli gıda alımını aracılık ettiği ileri sürülmüştür, ancak ampirik tür eylemleri gösteren sınırlı kanıt bulunmaktadır. Böylece, şeker alımı DA bırakma ve artar c-fos benzeri nukleus akkumbenlere (NAC), amigdala (AMY) da dahil olmak üzere bireysel VTA DA projeksiyon bölgelerinden immunreaktivitesi (FLI) ve prefrontal korteks (MPFC) yanı sıra sırt striatum medial ortaya çıkarır. Bu siteye seçici DA reseptör antagonistleri Ayrıca, merkezi yönetimşeker veya yağ tarafından ortaya klimalı lezzet tercihleri edinimi ve ifadesini azaltmak farklı şekilde s. tarafından bir yaklaşım bu sitelerin değerlendirmek eşzamanlı olacaktır şeker veya yağ alımı yanıt olarak dağıtılmış beyin ağı olarak etkileşime belirlemek isteyip VTA ve onun büyük mesotelencephalic DA projeksiyon bölgeleri (prelimbic ve NAC infralimbic MPFC, çekirdek ve kabuk, bazolateral ve merkezi kortiko-medial AMY) ve dorsal striatum koordine görüntüleyecektir ve mısır yağı (% 3.5), glikoz (% 8), fruktoz (% 8) ve sakarin, oral, şartsız alınmasından sonra eş zamanlı FLI aktivasyonu (0.2 %) çözümleri. Bu yaklaşım kemirgenlerde palatable gıda alımından ödül ile ilgili öğrenme incelemek için ilgili beyin siteler arasında eşzamanlı olarak hücresel c-fos aktivasyonu kullanılarak uygulanabilirliğini belirlemede başarılı bir ilk adımdır.
Introduction
Beyin dopamininin (DA) ile kabul edilebilir şekerlerin alımı için merkezi tepkilerine dahil edilmiştir önerilen hedonik 1,2, çaba ile ilgili 3 ve eylem 4,5 mekanizmaları alışkanlık alınmıştır. Bu etkilerin karışmış birincil DA yolu, ventral tegmental bölgeden (VTA) kaynaklanır, ve çekirdeğin akumbens (NAC) çekirdek ve kabuk, bazolateral ve orta-kortiko-medial amigdala (AMY) ve prelimbic ve infralimbic mediale projeler prefrontal korteks (MPFC) (değerlendirmeleri 6,7 bakınız). VTA sükroz alımı 8,9 sorumlu tutulmuştur ve DA sürümü NAC 10-15, AMY 16,17 ve MPFC 18-20 aşağıdaki şeker alımını görülmektedir. Yağ alımı da DA NAC 21 serbest uyarır ve dorsal striatum (kaudat-putamen) başka DA zengin projeksiyon bölgesi de DA-aracılı 22,23 besleme ile ilişkili olmuştur. Kelley 24-27 bu çoklu bir proje önerdiBu DA-aracılı sistemin iyon bölgeleri kapsamlı ve samimi bağlantıları 28-34 ile entegre ve interaktif dağıtılan beyin ağını kurdu.
Şekerler 35-37 ve yağlar 38-40 alımını azaltmak için DA D1 ve D2 reseptör antagonistlerinin yeteneğinin yanısıra, DA sinyali ayrıca şekerler ve klimalı bir lezzet tercihlerine üretmek için yağ (CFP) yeteneğini aracılık etmektedir edilmiş 41- 46. NAC, AMY veya MPFC 47-49 içine DA D1 reseptör antagonisti olan Microinjections mide içi glukoz tarafından ortaya OBP edinimi ortadan kaldırır. MPFC içine DA D1 ya da D2 ya reseptör antagonistleri microinjections fruktoz-CFP 50 edinilmesini ortadan kaldırır Oysa edinimi ve fruktoz-OBP ifadesi farklı şekilde NAC ve AMY 51,52 DA antagonistleri tarafından bloke edilir.
C-fos tekniği 53,54 nöral activatio araştırmak için kullanılan edilmiştirn kabul edilebilir alımı ve nöral aktivasyon tarafından uyarılan. şekliyle "c-fos aktivasyon" el yazması boyunca kullanılacak ve operasyonel nöronal depolarizasyon sırasında C-Fos artmış transkripsiyonu ile tanımlanır. Sükroz alımı NAC 55-57 arasında VTA yanı sıra kabuk değil, çekirdek, merkez AMY çekirdeğindeki fos benzeri immunreaktivitesi (FLI) arttı. Sahte beslenen sıçanlarda sükroz alımı ise anlamlı AMY ve NAC FLI arttı, ancak VTA 58, mide sakaroz veya glukoz infüzyonu anlamlı NAC ve AMY 59,60 merkez ve bazolateral çekirdeklerde FLI arttı. Planlanan chow erişim sakaroz tekrarlanan eklenmesi NAC kabuk ve çekirdek 61 yanı sıra MPFC içinde FLI arttı. Bir sakaroz konsantrasyon vites küçültme paradigma büyük Fli artar bazolateral AMY ve NAC meydana geldiğini ortaya ama VTA 62. Aşağıdaki klima, şeker ilişkili doğal Rewa söndürmerd davranışları bazolateral AMY ve NAC 63 FLI arttı. Dahası, bir sesi eşleştirme şeker kullanılabilirliği sonradan bazolateral AMY 64 FLI düzeyleri artan bir tonda sonuçlandı. Yüksek yağ alımı da NAC ve MPFC sitelerinde 65-67 yılında FLI arttı.
Daha önce belirtilen çalışmaların çoğu ödül ile ilgili dağıtılan beyin ağları 24-27 tanımlanması hakkında bilgi vermemektedir tek sitelerinde c-fos aktivasyonu şeker ve yağ etkilerini inceledik. Ayrıca, çalışmaların çoğu da göreceli (bazolateral ve orta-kortiko-medial) NAC (çekirdek ve kabuk), AMY ve MPFC alt alanlarının katkılarını tasvir etmedi (prelimbic ve infralimbic) potansiyel tarafından muayene edilebileceğini c-Fos haritalama 68 mükemmel mekansal, tek hücreli çözünürlükte avantajı. Laboratuvarımız 69 geçenlerde VTA DA yolunun ve yanlısı c-fos aktivasyonu ve eş zamanlı olarak ölçülen değişiklikler kullanılanjection bölgeleri (NAC, AMY ve MPFC) sıçanlarda yağ ve şekerlerin yeni alımından sonra. Bu çalışma aynı zamanda farklı şekilde NAC, AMY alt alanlarında FLI aktive edip akut altı farklı çözümler maruz kalma (mısır yağı, glikoz, fruktoz, sakarin, su ve yağ emülsiyonu denetimi) analiz etmek usul ve metodolojik adımları açıklar, MPFC yanı sıra sırt striatum. Farklılıkların Bu eşzamanlı tespiti için her site ve belirlenmesi FLI üzerinde önemli etkilerinin onay izin ister ve böylece dağıtılmış beyin ağı 24-27 için destek sağlayan, ilgili siteleri değişiklikler ile ilişkili belirli bir sitede değişiklikler. Test edilen bu işlemler VTA, prelimbic ve infralimbic MPFC, NAC çekirdek ve kabuk ve bazolateral ve merkezi kortiko-medial AMY) ve dorsal striatum olup koordine görüntüleyecektir oral, koşulsuz alınmasından sonra eş zamanlı FLI aktivasyon glikoz (% 8), fruktoz (% 8), mısır yağı (% 3.5) ve sakarin (% 0.2) çözümler.
Protocol
Representative Results
Discussion
Çalışmanın amacı, kaynağı (VTA) ve ön beyin projeksiyon hedefleri DA ödül ile ilgili nöronların (NAC, AMY, MPFC) aynı anda sıçanlarda yağ ve şeker yeni alımından sonra aktive eğer hücresel c-fos tekniği kullanılarak belirlenmesi amaçlanmıştır . Bu çalışmada, daha önce 69 yayınlanan bir çalışmanın protokollerin ayrıntılı bir açıklamasıdır. Bu VTA, prelimbic ve infralimbic MPFC, NAC çekirdek ve kabuk ve bazolateral ve merkez kortiko-medial AMY yanı sıra dorsal stria…
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Bu proje üzerinde yaptıkları yoğun çalışmalardan dolayı Diana Icaza-Culaki Cristal Sampson ve Theologia Karagiorgis teşekkürler.
Materials
| Equipment | |||
| Sprague-Dawley rats | Charles River Laboratories | CD-1 | |
| Wire Mesh Cages | Lab Products, Seaford, DE | 30-Cage rack | |
| Rat Chow | PMI Nutrition International | 5001 | |
| Taut Metal Spring | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Rat Weighing Scale | Fisher Scientific Company | n/a | |
| Nalgene Centrifuge Tubes | Lab Products, Seaford, DE | 10-0501 | |
| Rubber Stopper | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Metal Sippers | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Saccharin | Sigma Chemical Co | 82385-42-0 | |
| Kool-Aid, Cherry | Kool-Aid | Commerical | |
| Kool-Aid, Grape | Kool-Aid | Commercial | |
| Fructose | Sigma Chemical Co | F0127 | |
| Glucose | Sigma Chemical Co | G8270 | |
| Corn Oil | Mazzola | Commerical | |
| Xanthan Gum | Sigma Chemical Co | 11138-66-2 | |
| Sliding Microtome | Microm International | n/a | |
| Neurolucida Camera | MBF Bioscience | Software application | |
| Gelatin-coated Slides | Fisher Scientific Company | 12-550-343 | |
| Cover glass | Fisher Scientific Company | 12-545-M | |
| Golden Nylon Brushes | Loew-Cornell | 2037 | |
| Natural Hair Sable | Loew-Cornell | 2022 | |
| 24 Well Plates | Fisher Scientific | 3527 | |
| 6 Well Plates | Fisher Scientific | 3506 | |
| 1L Pyrex bottles | Fisher Scientific | 1395-1L | |
| Tissue insert (tissue strainer) | Fisher Scientific | 7200214 | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E10 for 1-10ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E100 for 20-100ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E200 for 50-200ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E1000 for 100-1000ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E5000 for 1000-5000ul | |
| Universal Tips .1-10ul | World Precision Instruments | 500192 | |
| Universal Tips 5-200ul | World Precision Instruments | 500194 | |
| Universal Tips 500-5000ul | World Precision Instruments | 500198 | |
| Blade Vibroslice 100 | World Precision Instruments | BLADE | |
| DPX Mounting Medium | Electron Microscopy | 13510 | |
| 15mL centrifuge tubes | Biologix Research Co. | 10-0501 | |
| Slide Boxes | Biologix Research Co. | 41-6100 | |
| Orbital Shaker | Madell Corporation | ZD-9556 | |
| weigh boats | Fisher Scientific | 02-202-100 | |
| 5mL disposable pipettes | Fisher Scientific | 13-711-5AM | |
| Stereo Investigator Software | Micro Bright Field | Software application | |
| Name | Company | Catalog number | Comments |
| Reagents | |||
| Paraformaldehyde Granular | Fisher Scientific | 19210 | |
| NaCl | Fisher Scientific | S271-1 | |
| Sodium Phophate Monobasic | Fisher Scientific | S468-500 | |
| Sodium Phosphate Diphasic | Fisher Scientific | BP332-500 | |
| Hydrogen Peroxide | Fisher Scientific | H324-500 | |
| SafeClear II | Fisher Scientific | 23-044-192 | |
| Methanol | Fisher Scientific | A412-1 | |
| Normal Goat Serum | Vector | S-1000 | |
| Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L) | Vector | BA-1000 | |
| ABC Kit Peroxidase Standard | Vector | PK-4000 | |
| Anti-cFos (Ab-5) Rabbit | EMD chem/Cal Biochem | PC38 | |
| Triton X 100 | SigmaAldrich | X-100 | |
| 3,3' diaminobenzidine tetra hydrochloride | SigmaAldrich | D5905 | |
| Sodium Hydroxide | SigmaAldrich | 5881 | |
| Primary TH anti body | EMD Millipore | AB152 | |
| Euthosol | Virbac AH | ||
Riferimenti
- Koob, G. F. Neural mechanisms of drug reinforcement. Ann. N.Y. Acad. Sci. 654, 171-191 (1992).
- Wise, R. A. Role of brain dopamine in food reward and reinforcement. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 361, 1149-1158 (2006).
- Salamone, J. D., & Correa, M. The mysterious motivational functions of mesolimbic dopamine. Neuron., 76, 470-485 (2012).
- Horvitz, J. C., Choi, W. Y., Morvan, C., Eyny, Y., & Balsam, P.D. A "good parent" function of dopamine: transient modulation of learning and performance during early stages of training. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1104, 270-288 (2007).
- Wickens, J. R., Horvitz, J. C., Costa, R. M., & Killcross, S. Dopaminergic mechanisms in actions and habits. J. Neurosci. 27, 8181-8183 (2007).
- Bjorklund, A., & Dunnett, S. B. Dopamine neuron systems in the brain: an update. Trends Neurosci. 30, 194-202 (2007).
- Swanson, L. W. The projections of the ventral tegmental area and adjacent regions: a combined fluorescent retrograde tracer and immunofluorescence study in the rat. Brain Res. Bull. 9, 321-353 (1982).
- Cacciapaglia, F., Wrightman, R. M., & Careli, R. M. Rapid dopamine signaling differentially modulates distinct microcircuits within the nucleus accumbens during sucrose-directed behavior. J. Neurosci. 31, 13860-13869 (2011).
- Martinez-Hernandez, J., Lanuza, E., & Martinez-Garcia, F. Selective dopaminergic lesions of the ventral tegmental area impair preference for sucrose but not for male sex pheromones in female mice. Eur. J. Neurosci. 24, 885-893 (2006).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential influence of associative and nonassociative learning mechanisms on the responsiveness of prefrontal and accumbal dopamine transmission to food stimuli in rats fed ad libitum. J. Neurosci. 17, 851-861 (1997).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential responsiveness of dopamine transmission to food-stimuli in nucleus accumbens shell/core compartments. Neurosci. 89, 637-641, (1999).
- Cheng, J, & Feenstra, M.G. Individual differences in dopamine efflux in nucleus accumbens shell and core during instrumental conditioning. Learn. Mem. 13, 168-177 (2006).
- Genn, R.F., Ahn, S., & Phillips, A.G. Attenuated dopamine efflux in the rat nucleus accumbens during successive negative contrast. Behav. Neurosci. 118, 869-873 (2004).
- Hajnal, A., & Norgren, R. Accumbens dopamine mechanisms in sucrose intake. Brain Res. 904, 76-84 (2001).
- Hajnal, A., Smith, G.P., & Norgren, R. Oral sucrose stimulation increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. 286 R31-R37 (2003).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Modulation of feeding-induced activation of mesolimbic dopamine transmission by appetitive stimuli and its relation to motivational state. Eur. J. Neurosci. 11, 4389-4397 (1999).
- Hajnal, A., & Lenard, L. Feeding-related dopamine in the amygdala of freely moving rats. Neuroreport. 8, 2817-2820 (1997).
- Bassareo, V., De Luca, M.A., & Di Chiara, G. Differential expression of motivational stimulus properties by dopamine in nucleus accumbens shell versus core and prefrontal cortex. J. Neurosci. 22, 4709-4719 (2002).
- Feenstra, M., & Botterblom, M. Rapid sampling of extracellular dopamine in the rat prefrontal cortex during food consumption, handling, and exposure to novelty. Brain Res. 742, 17-24 (1996).
- Hernandez, L., & Hoebel, B.G. Feeding can enhance dopamine turnover in the prefrontal cortex. Brain Res. Bull. 25, 975-979 (1990).
- Liang, N. C., Hajnal, A., & Norgren, R. Sham feeding corn oil increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 291, R1236-1239 (2006).
- Dunnett, S. B., & Iversen, S. D. Regulatory impairments following selective kainic acid lesions of the neostriatum. Behav. Brain Res. 1, 497-506 (1980).
- Salamone, J. D., Zigmond, M. J., & Stricker, E. M. Characterization of the impaired feeding behavior in rats given haloperidol or dopamine-depleting brain lesions. Neurosci. 39, 17-24 (1990).
- Kelley, A. E. Ventral striatal control of appetitive motivation: role in ingestive behavior and reward-related learning. Neurosci. Biobehav. Rev. 27, 765-776 (2004).
- Kelley, A.E. Memory and addiction: shared neural circuitry and molecular mechanisms. Neuron. 44, 161-179 (2004).
- Kelley, A.E., Baldo, B.A., & Pratt, W.E. A proposed hypothalamic-thalamic-striatal axis for the integration of energy balance, arousal and food reward. J. Comp. Neurol. 493, 72-85 (2005).
- Kelley, A. E., Baldo, B. A., Pratt, W. E., & Will, M. J. Corticostriatal-hypothalamic circuitry and food motivation: integration of energy, action and reward. Physiol. Behav. 86, 773-795 (2005).
- Berendse, H.W., Galis-de-Graaf, Y., & Groenewegen, H.J. Topographical organization and relationship with ventral striatal compartments of prefrontal corticostriatal projections in the rat. J. Comp. Neurol. 316, 314-347 (1992).
- Brog, J.S., Salyapongse, A., Deutch, A.Y., & Zahm, D.S. The patterns of afferent innervation of the core and shell in the "accumbens" part of rat ventral striatum: immunohistochemical detection of retrogradely transported fluoro-gold. J. Comp. Neurol. 338, 255-278 (1993).
- McDonald, A.J. Organization of amygdaloid projections to the prefrontal cortex and associated stritum in the rat. Neurosci. 44, 1-14 (1991).
- McGeorge, A.J., & Faull, R.L. The organization of the projection from the cerebral cortex to the striatum in the rat. Neurosci. 29, 503-537 (1989).
- Sesack, S.R., Deutch, A.Y., Roth, R.H., & Bunney, B.S. Topographical organization of the efferent projections of the medial prefrontal cortex in the rat: an anterograde tract-tracing study with Phaseolus vulgaris leucoagglutinin. J. Comp. Neurol. 290, 213-242 (1989).
- Wright, C.I., Beijer, A.V., & Groenewegen, H.J. Basal amygdaloid complex afferents to the rat nucleus accumbens are compartmentally organized. J. Neurosci. 16, 1877-1893 (1996).
- Wright, C.I., & Groenewegen, H.J. Patterns of convergence and segregation in the medial nucleus accumbens of the rat: relationships of prefrontal cortical, midline thalamic and basal amygdaloid afferents. J. Comp. Neurol. 361, 383-403 (1995).
- Geary, N., & Smith, G.P. Pimozide decreases the positive reinforcing effect of sham fed sucrose in the rat. Pharmacol. Biochem. Behav. 22, 787-790 (1985).
- Muscat, R., & Willner, P. Effects of selective dopamine receptor antagonists on sucrose consumption and preference. Psychopharmacol. 99, 98-102 (1989).
- Schneider, L.H., Gibbs, J., & Smith, G.P. D-2 selective receptor antagonists suppress sucrose sham feeding in the rat. Brain Res. Bull. 17, 605-611 (1986).
- Baker, R.W., Osman, J., & Bodnar, R.J. Differential actions of dopamine receptor antagonism in rats upon food intake elicited by mercaptoacetate or exposure to a palatable high-fat diet. Pharmacol. Biochem. Behav. 69, 201-208 (2001).
- Rao, R.E., Wojnicki, F.H., Coupland, J., Ghosh, S., & Corwin, R.L. Baclofen, raclopride and naltrexone differentially reduce solid fat emulsion intake under limited access conditions. Pharmacol. Biochem. Behav. 89, 581-590 (2008).
- Weatherford, S.C., Smith, G.P., & Melville, L.D. D-1 and D-2 receptor antagonists decrease corn oil sham feeding in rats. Physiol. Behav. 44, 569-572 (1988).
- Azzara, A. V., Bodnar, R. J., Delamater, A. R., & Sclafani, A. D1 but not D2 dopamine receptor antagonism blocks the acquisition of a flavor preference conditioned by intragastric carbohydrate infusions. Pharmacol. Biochem. Behav. 68, 709-720 (2001).
- Baker, R. M., Shah, M. J., Sclafani, A., & Bodnar, R. J. Dopamine D1 and D2 antagonists reduce the acquisition and expression of flavor-preferences conditioned by fructose in rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 75, 55-65 (2003).
- Dela Cruz, J.A., Coke, T., Icaza-Cukali, D., Khalifa, N., & Bodnar, R. J. Roles of NMDA and dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of flavor preferences conditioned by oral glucose in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 114, 223-230 (2014).
- Dela Cruz, J. A, et al. Roles of dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fat-conditioned flavor preferences in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 97, 332-337 (2012).
- Yu, W.Z., Silva, R.M., Sclafani, A., Delamater, A.R., & Bodnar, R.J. Pharmacology of flavor preference conditioning in sham-feeding rats: effects of dopamine receptor antagonists. Pharmacol. Biochem. Behav. 65, 635-647 (2000).
- Yu, W. Z., Silva, R. M., Sclafani, A., Delamater, A. R., & Bodnar, R. J. Role of D(1) and D(2) dopamine receptors in the acquisition and expression of flavor-preference conditioning in sham-feeding rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 67, 537-544 (2000).
- Touzani, K., Bodnar, R. J, & Sclafani, A. Activation of dopamine D1-like receptors in nucleus accumbens is critical for the acquisition, but not the expression, of nutrient-conditioned flavor preferences in rats. Eur. J. Neurosci. 27, 1525-1533 (2008).
- Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Dopamine D1-like receptor antagonism in amygdala impairs the acquisition of glucose-conditioned flavor preference in rats. Eur. J. Neurosci. 30, 289-298 (2009).
- Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Acquisition of glucose-conditioned flavor preference requires the activation of dopamine D1-like receptors within the medial prefrontal cortex in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 94, 214-219 (2010).
- Malkusz, D. C., et al. Dopamine signaling in the medial prefrontal cortex and amygdala is required for the acquisition of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 233, 500-507 (2012).
- Bernal, S. Y., et al. Role of dopamine D1 and D2 receptors in the nucleus accumbens shell on the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor-flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 190, 59-66 (2008).
- Bernal, S. Y.,et al. Role of amygdala dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 205, 183-190 (2009).
- Dragunow, M., & Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J. Neurosci. Methods. 29, 261-265 (1989).
- VanElzakker, M., Fevurly, R. D., Breindel, T., & Spencer, R. L. Environmental novelty is associated with a selective increase in Fos expression in the output elements of the hippocampal formation and the perirhinal cortex. Learn. Mem. 15, 899-908 (2008).
- Norgren, R., Hajnal, A., & Mungarndee, S. S. Gustatory reward and the nucleus accumbens. Physiol. Behav. 89, 531-535 (2006).
- Park, T. H., & Carr, K. D. Neuroanatomical patterns of fos-like immunoreactivity induced by a palatable meal and meal-paired environment in saline- and naltrexone-treated rats. Brain Res. 805, 169-180 (1998).
- Zhao, X. L., Yan, J. Q., Chen, K., Yang, X. J., Li, J. R., & Zhang, Y. Glutaminergic neurons expressing c-Fos in the brainstem and amygdala participate in signal transmission and integration of sweet taste. Nan.Fang Yi.Ke.Da.Xue.Xue.Bao. 31,1138-1142 (2011).
- Mungarndee, S. S., Lundy, R. F., Jr., & Norgren, R. Expression of Fos during sham sucrose intake in rats with central gustatory lesions. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 295, R751-R763 (2008).
- Otsubo, H., Kondoh, T., Shibata, M., Torii, K., & Ueta, Y. Induction of Fos expression in the rat forebrain after intragastric administration of monosodium L-glutamate, glucose and NaCl. Neurosci. 196, 97-103 (2011).
- Yamamoto, T., Sako, N., Sakai, N., & Iwafune, A. Gustatory and visceral inputs to the amygdala of the rat: conditioned taste aversion and induction of c-fos-like immunoreactivity. Neurosci. Lett. 226, 127-130 (1997).
- Mitra, A., Lenglos, C., Martin, J., Mbende, N., Gagne, A., & Timofeeva, E. Sucrose modifies c-fos mRNA expression in the brain of rats maintained on feeding schedules. Neurosci. 192, 459-474 (2011).
- Pecoraro, N., & Dallman, M. F. c-Fos after incentive shifts: expectancy, incredulity, and recovery. Behav. Neurosci. 119, 366-387 (2005).
- Hamlin, A. S., Blatchford, K. E., & McNally, G. P. Renewal of an extinguished instrumental response: Neural correlates and the role of D1 dopamine receptors. Neurosci. 143,.25-38 (2006).
- Kerfoot, E. C., Agarwal, I., Lee, H. J., & Holland, P. C. Control of appetitive and aversive taste-reactivity responses by an auditory conditioned stimulus in a devaluation task: A FOS and behavioral analysis. Learn. Mem. 14, 581-589 (2007).
- Zhang, M., & Kelley, A.E. Enhanced intake of high-fat food following striatal mu-opioid stimulation: microinjection mapping and fos expression. Neurosci. 99, 267-277 (2000).
- Teegarden, S.L., Scott, A.N., & Bale, T.L. Early life exposure to a high fat diet promotes long-term changes in dietary preferences and central reward signaling. Neurosci. 162, 924-932 (2009).
- Del Rio, D., et al. Involvement of the dorsomedial prefrontal cortex in high-fat food conditioning in adolescent mice. Behav. Brain Res. 283, 227-232 (2015).
- Knapska, E., Radwanska, K., Werka, T., & Kaczmarek, L. Functional internal complexity of amygdala: focus on gene activity mapping after behavioral training and drugs of abuse. Physiol. Rev. 87, 1113-1173 (2007).
- Dela Cruz, J.A.D.,et al. c-Fos induction in mesotelencephalic dopamine pathway projection targets and dorsal striatum following oral intake of sugars and fats in rats. Brain Res. Bull. 111, 9-19 (2015).
- Paxinos, G., & Watson, C. The rat brain in stereotaxic coordinates. Elsevier (2006).
- Ranaldi, R., et al. The effects of VTA NMDA receptor antagonism on reward-related learning and associated c-fos expression in forebrain. Behav. Brain Res. 216, 424-432 (2011).
