Summary

Isolamento, cultura e trasduzione di topo adulto cardiomiociti

Published: August 28, 2016
doi:

Summary

This protocol describes a step-by-step method for the reproducible isolation and long-term culture of adult mouse cardiomyocytes with high yield, purity, and viability.

Abstract

Cardiomiociti in coltura possono essere utilizzati per studiare la biologia dei cardiomiociti utilizzando tecniche che sono complementari ai sistemi in vivo. Ad esempio, la purezza e l'accessibilità della cultura in vitro consente un controllo preciso analisi biochimiche, immagini dal vivo, e elettrofisiologia. cultura a lungo termine di cardiomiociti offre l'accesso ad approcci sperimentali aggiuntivi che non possono essere completate in colture a breve termine. Ad esempio, l'indagine in vitro di dedifferentiation, ciclo cellulare di rientro, e la divisione cellulare è finora stato in gran parte limitato a cardiomiociti di ratto, che sembrano essere più robusto nella cultura a lungo termine. Tuttavia, la disponibilità di un ricco set di strumenti di linee di topi transgenici e modelli di malattia ben sviluppati rendere i sistemi di mouse attrattivo per la ricerca cardiaca. Anche se diversi rapporti esistano di topo adulto isolamento dei cardiomiociti, alcuni studi dimostrano la loro cultura a lungo termine. Presentato qui, è un metodo step-by-step per laisolamento e di lungo periodo della cultura di cardiomiociti di topo adulto. Innanzitutto, retrograda perfusione Langendorff è usato per digerire efficientemente il cuore con proteasi, seguita da purificazione gravità sedimentazione. Dopo un periodo di de-differenziazione seguito isolamento, le cellule gradualmente attribuiscono alla cultura e possono essere coltivate per settimane. Adenovirus lisato cellulare viene utilizzato per trasdurre efficientemente i cardiomiociti isolati. Questi metodi forniscono un semplice, ma potente sistema modello per studiare la biologia cardiaco.

Introduction

Cardiomiociti in coltura sono spesso utilizzati per monitorare il comportamento delle cellule in un ambiente ben controllato in vitro. Ad esempio, le proprietà delle cellule morfologiche, elettriche, biochimici, o meccanici possono essere studiati su substrati ingegnerizzati, 1,2 in mezzi definiti, e in risposta ai farmaci piccole molecole, peptidi, regolazione genica, 3 o stimolazione elettrica. 4 Il contenuto cellulare può anche essere controllato tramite definiti co-culture. 5 Questi esperimenti in vitro sono utili per grandi schermi di droga o genetiche e si completano a metodi in vivo per i vari tipi di indagini che coinvolgono la biologia dei cardiomiociti.

cultura a lungo termine consente viali sperimentali che richiedono estese periodi di tempo per realizzare il cambiamento fenotipico. Un esempio attuale è quello di adulto la proliferazione dei cardiomiociti dei mammiferi, in cui de-differenziazione, del ciclo cellulare di rientro, e la divisione cellulare è tipicamente studiati su ségiorni veral o settimane. 6,7 Qui, il tempo di cultura estesa facilita la manipolazione genetica, 7,8 de-differenziazione funzionale (ad esempio, lo smontaggio sarcomerica) 9 e de-differenziazione potenzialmente trascrizionale. 6 successiva del ciclo cellulare di rientro e la divisione cellulare richiede periodi di cultura ancora più lunghi per osservare, soprattutto se più cicli di divisione sono l'obiettivo sperimentale. L'importanza del ciclo cellulare cardiomiociti è centrale per molti chiave recenti lavori scientifici nella rigenerazione del cuore, dove è stato dimostrato responsabile per la rigenerazione cardiaca in zebrafish e topi neonatali il dedifferentiation e la proliferazione dei cardiomiociti preesistenti. 10-12 Così, la possibilità per stimolare dedifferentiation e del ciclo cellulare rientro in cardiomiociti adulti mammiferi rimane una questione chiave nella rigenerazione cuore umano 13-15

I n esperimenti in vitro che studiano il ciclo cellulare dei mammiferi cardiomiociti sono prevalentemente utilizzati fonti ratto, grazie alla loro relativa facilità di coltura a lungo termine rispetto ai modelli di topo. 16 Tuttavia, sistemi murini offrono una ricca fonte di strumenti transgenici ben caratterizzati e modelli di malattia che sono utili sia in vitro che in vivo protocolli. Ad esempio, lineage tracing Cre-based ha permesso l'identificazione di cardiomiociti preesistenti come fonte di rigenerare miocardio nel cuore neonatale topo in vivo. 12 Studi in vitro su cardiomiociti di topo neonatali lineage tracing hanno permesso l'esame delle interazioni con stromale cellule attraverso co-coltura con fibroblasti. 5 Tuttavia, a causa delle sue sfide, 17 pochi rapporti esistono di isolamento e di lungo periodo della cultura di cardiomiociti di topo adulto. 18,19

L'isolamento di vitali cardiomiociti di topo adulto per la cultura a breve termine da solo è conosciuto per essere un compito impegnativo. Questo ProtoColo fornisce istruzioni passo-passo su come raggiungere cardiomiociti vitali da topi adulti che possono essere utilizzati sia per il breve termine, così come le indagini a lungo termine. Cardiomiociti isolati utilizzando questo protocollo possono essere efficacemente trasdotte con vettori adenovirali 20,21 e coltivate per settimane. Questi metodi forniscono un potente sistema per studiare la biologia dei cardiomiociti in vitro.

I metodi descritti nel presente documento si basano su diversi elementi da opere precedenti utilizzando varianti della perfusione retrograda Langendorff. 18,22 Sebbene diversi protocolli sono stati pubblicati sulla isolamento di cardiomiociti di topo adulto per la cultura a breve termine e di studio, 23-25 ​​il vantaggio di questo protocollo è la capacità di cultura isolate cardiomiociti a lungo termine. Questo sarà utile nello studio dei processi cellulari in cui l'espressione genica ectopica e richiedono lunghi periodi di tempo, come nelle strategie riprogrammazione cellulare.

Protocol

Tutte le procedure descritte qui sono stati approvati dalla Utilizzo e manutenzione Comitato istituzionale degli animali presso l'Università della California, San Francisco. NOTA: Brevemente, dopo estrazione cuore dal torace mouse, coronarica perfusione retrograda viene utilizzato per digerire efficientemente la matrice extracellulare con collagenasi e proteasi XIV. I ventricoli sono poi isolate, dissociato meccanicamente e filtrati in una sospensione di cellule singole…

Representative Results

Un tipo adulto selvaggio ICR (CD1) cuore del mouse produce tipicamente 500.000 a 1 milione di cardiomiociti da un isolamento di successo. Subito dopo l'isolamento, le cellule mantengono un aspetto prevalentemente a forma di asta (Figura 3A) con sarcomeri intatti e possono essere utilizzati per studi funzionali coinvolgono cardiomiociti contrattilità. Una percentuale elevata di cardiomiociti astiformi (superiori al 90%) è indice di perfusione efficace e la digestion…

Discussion

La salute generale dei cardiomiociti isolati dipende da diversi aspetti importanti di questo protocollo. In primo luogo, il tempo dall'estrazione cuore a perfusione è critica e deve essere eseguita in 5 minuti o meno. La rimozione di calcio aiuta a dissociarsi interazioni cellula-cellula, ma può avere un impatto negativo sulla salute delle cellule a lungo termine. 29-32 Così, troviamo sufficiente per rimuovere il calcio durante i primi pochi minuti di perfusione di EGTA (acido tetraacetico glicole etil…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo progetto è stato finanziato dal Programma UCSF per Breakthrough Ricerca Biomedica (finanziato in parte dalla Fondazione Sandler), il NIH Pathway to Independence Award (R00HL114738), e la Fondazione Edward Mallinckrodt Jr.. JJ è stato sostenuto da una borsa di studio post-dottorato dal NIH (T32HL007731). Gli autori sono gli unici responsabili del contenuto di questo lavoro, che non necessariamente rappresentano le opinioni ufficiali del NIH.

Materials

Equipment
Heated water jacket Radnoti 158831
Circulating heated water bath, Isotemp Fisher Scientific 3013
Laboratory pump Watson-Marlow 323
Hemostats Exelta 63042-090
Tissue forceps VWR 470128034
Dumont #7 curved forceps FST 91197-00
Dumont #5 fine forceps FST 11251-20
Small dissection scissors VWR 470128034
Extra fine bonn scissors FST 14084-08
Fine spring scissors FST 91500-09
Name Company Catalog Number Comments
Materials
NaCl Sigma S9888
KCl Sigma P9541
Na2HPO4-7H2O Fisher S25837
MgSO4-7H2O Fisher S25414
Taurine Sigma 86329
Butane dione monoxime (BDM) Sigma B0753
HEPES Fisher  BP310100
Glucose Sigma G-7021
Insulin Novo Nordisk 393153
EGTA Amresco 0732-288
Protease, type XIV Sigma P5147
Collagenase II Worthington LS004176
MEM Corning 15-010-CV
FBS, heat inactivated JRS 43613
Primocin Invitrogen NC9141851
Ethyl Carbamate Alfa Aesar AAA44804-18
215 micron mesh Component supply U-CMN-215-A
20 G blunt ended needle Becton Dickinson 305183
20 G beveled needle Becton Dickinson 305176
Lab tape VWR 89097-990
Surgical tape 3M 1527-0
Silk suture, 7-0 Teleflex 15B051000
Mouse anti-alpha-actinin antibody Sigma A7811
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG1 antibody Thermo Fisher A21121

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Citazione di questo articolo
Judd, J., Lovas, J., Huang, G. N. Isolation, Culture and Transduction of Adult Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (114), e54012, doi:10.3791/54012 (2016).

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