Summary

Isolamento, cultura e Transdução de rato adulto Cardiomyocytes

Published: August 28, 2016
doi:

Summary

This protocol describes a step-by-step method for the reproducible isolation and long-term culture of adult mouse cardiomyocytes with high yield, purity, and viability.

Abstract

Cardiomiócitos cultivados podem ser usadas para estudar a biologia dos cardiomiócitos utilizando técnicas que são complementares a sistemas in vivo. Por exemplo, a pureza ea acessibilidade da cultura in vitro permite um controle fino sobre análises bioquímicas, imagens ao vivo e eletrofisiologia. cultura a longo prazo dos cardiomiócitos oferece acesso a abordagens experimentais adicionais que não podem ser concluídos em culturas de curto prazo. Por exemplo, a investigação in vitro de desdiferenciação, do ciclo celular de re-entrada e divisão de células tem, até agora, em grande parte sido restrita a cardiomiócitos de rato, que parecem ser mais robusta em cultura a longo prazo. No entanto, a disponibilidade de um rico conjunto de ferramentas de linhagens de camundongos transgênicos e modelos de doenças bem desenvolvidos tornar os sistemas de rato atraente para a investigação cardíaca. Embora existam vários relatos de rato adulto isolamento dos cardiomiócitos, alguns estudos demonstram sua cultura a longo prazo. Apresentado aqui, é um método passo-a-passo para oisolamento e longo prazo cultura de cardiomiócitos adultos do mouse. Em primeiro lugar, a perfusão de Langendorff retrógrada é usado eficientemente para digerir o coração com proteases, seguido por purificação por gravidade sedimentação. Após um período de desdiferenciação após o isolamento, as células gradualmente anexar à cultura e podem ser cultivadas por semana. ligado celular de adenovírus é utilizado para transduzir eficientemente os cardiomiócitos isolados. Esses métodos fornecem um simples sistema de modelo, mas poderosa para estudar a biologia cardíaca.

Introduction

Cardiomiócitos cultivados são frequentemente usados ​​para monitorar o comportamento das células em um ambiente bem controlado in vitro. Por exemplo, as propriedades morfológicas celulares, eléctricos, bioquímicos, ou mecânicas pode ser estudada em substratos modificados, 1,2 em meio definido, e em resposta a fármacos de moléculas pequenas, péptidos, de regulação génica, 3 ou estimulação eléctrica. 4 O conteúdo celular pode também ser controlado usando co-culturas definidas. 5 Estas experiências in vitro são úteis em grande droga ou telas genéticos e complementar métodos in vivo para vários tipos de investigações envolvendo a biologia dos cardiomiócitos.

cultura de longo prazo permite avenidas experimentais que requerem períodos de tempo prolongados para alcançar a mudança fenotípica. Um exemplo oportuno é o da proliferação de cardiomiócitos de mamíferos adultos, onde desdiferenciação, ciclo celular re-entrada, e a divisão celular é normalmente estudado ao longo SEdias veral a semanas. 6,7 Aqui, o tempo de cultura estendido facilita a manipulação genética, 7,8 desdiferenciação funcional (por exemplo, a desmontagem sarcomérica) 9 e desdiferenciação potencialmente transcrição. 6 subsequente ciclo celular re-entrada e de divisão celular requer períodos de cultura ainda mais longos para observar, especialmente se vários ciclos de divisão são o objetivo experimental. A importância do ciclo celular cardiomiócitos é central para diversos trabalhos científicos recentes chave na regeneração do coração, onde o desdiferenciação e proliferação de cardiomiócitos pré-existentes tem sido mostrado responsável para a regeneração cardíaca no peixe-zebra e ratinhos neonatais. 10-12 Assim, a possibilidade para estimular a desdiferenciação do ciclo celular e re-entrada no cardiomiócitos adultos mamíferos continua a ser uma questão-chave na regeneração coração humano 13-15

Experimentos in vitro estudando o ciclo celular de cardio mamíferos I nmiócitos foram predominantemente utilizadas fontes de rato, devido à sua relativa facilidade de cultura a longo prazo em comparação com os modelos de ratinho. 16 No entanto, os sistemas de murideo oferecer uma rica fonte de ferramentas transgénicos bem caracterizados e modelos de doenças que são úteis em estudos in vitro e in vivo protocolos. Por exemplo, o rastreamento de linhagem baseada em Cre permitiu a identificação de cardiomiócitos pré-existentes como fonte de regeneração do miocárdio no coração neonatal do rato in vivo. 12 estudos in vitro de cardiomiócitos de rato neonatal traçado da linhagem permitiram a análise de interações com estromal células através de co-cultura com fibroblastos. 5 no entanto, devido aos seus desafios, 17 existem poucos relatos de cultura e isolamento de longo prazo de cardiomiócitos de rato adulto 18,19.

O isolamento dos cardiomiócitos viáveis ​​de ratinho adulto para a cultura a curto prazo só é conhecido por ser uma tarefa difícil. este PROTOCol fornece instruções passo-a-passo sobre como conseguir cardiomiócitos viáveis ​​de ratos adultos que podem ser usados ​​tanto para curto prazo, bem como investigações de longo prazo. Cardiomiócitos isolados usando este protocolo pode ser eficientemente transduzidas com vetores adenovirais 20,21 e cultivadas durante semanas. Estes métodos proporcionam um sistema poderoso para estudar a biologia dos cardiomiócitos in vitro.

Os métodos aqui descritos são baseados em vários elementos de obras anteriores usando variações da perfusão retrógrada Langendorff. 18,22 Apesar de vários protocolos foram publicados sobre o isolamento dos cardiomiócitos de rato adulto para a cultura de curto prazo e de estudo, a vantagem de 23-25 este protocolo é a capacidade de cultura do isolado cardiomiócitos longo prazo. Isso será útil no estudo de processos celulares que envolvem a expressão de genes ectópicos e que requerem períodos de tempo prolongados, tais como em estratégias de reprogramação celulares.

Protocol

Todos os procedimentos descritos aqui foram aprovados pelo uso e cuidados Comitê Institucional Animal da Universidade da Califórnia, em San Francisco. NOTA: Resumidamente, após extrair o coração do tórax rato, perfusão retrógrada coronariana é usado para digerir de forma eficiente a matriz extracelular com colagenase e XIV protease. Os ventrículos são, em seguida, isolado, dissociadas mecanicamente e filtrada para uma suspensão de células única. sedimentação …

Representative Results

Um tipo adulto selvagem ICR (CD1) do coração do rato normalmente produz 500.000 a 1 milhão de cardiomiócitos a partir de um isolamento bem sucedido. Imediatamente após o isolamento, as células principalmente manter uma aparência em forma de haste (Figura 3A) com sarcómeros e intactas podem ser utilizados para estudos funcionais que envolvem a contractilidade dos cardiomiócitos. Uma elevada percentagem dos cardiomiócitos em forma de haste (acima de 90%) é uma i…

Discussion

A saúde geral dos cardiomiócitos isolados depende de vários aspectos importantes deste protocolo. Em primeiro lugar, o tempo de extracção coração a perfusão é crítica e deve ser realizado em 5 minutos ou menos. A remoção do cálcio ajuda a dissociar as interacções célula-célula, mas podem ter um impacto negativo a saúde das células a longo prazo. 29-32 Assim, considera-se suficiente para remover o cálcio durante os primeiros poucos minutos de perfusão de EGTA (ácido tetracético de etilen…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este projecto foi financiado pelo Programa de UCSF para Breakthrough Biomedical Research (financiado em parte pela Fundação Sandler), o NIH Pathway to Prêmio Independência (R00HL114738), e da Fundação Edward Mallinckrodt Jr.. JJ foi apoiado por uma bolsa de pós-doutorado do NIH (T32HL007731). Os autores são os únicos responsáveis ​​pelo conteúdo deste trabalho, o que não representa necessariamente a posição oficial do NIH.

Materials

Equipment
Heated water jacket Radnoti 158831
Circulating heated water bath, Isotemp Fisher Scientific 3013
Laboratory pump Watson-Marlow 323
Hemostats Exelta 63042-090
Tissue forceps VWR 470128034
Dumont #7 curved forceps FST 91197-00
Dumont #5 fine forceps FST 11251-20
Small dissection scissors VWR 470128034
Extra fine bonn scissors FST 14084-08
Fine spring scissors FST 91500-09
Name Company Catalog Number Comments
Materials
NaCl Sigma S9888
KCl Sigma P9541
Na2HPO4-7H2O Fisher S25837
MgSO4-7H2O Fisher S25414
Taurine Sigma 86329
Butane dione monoxime (BDM) Sigma B0753
HEPES Fisher  BP310100
Glucose Sigma G-7021
Insulin Novo Nordisk 393153
EGTA Amresco 0732-288
Protease, type XIV Sigma P5147
Collagenase II Worthington LS004176
MEM Corning 15-010-CV
FBS, heat inactivated JRS 43613
Primocin Invitrogen NC9141851
Ethyl Carbamate Alfa Aesar AAA44804-18
215 micron mesh Component supply U-CMN-215-A
20 G blunt ended needle Becton Dickinson 305183
20 G beveled needle Becton Dickinson 305176
Lab tape VWR 89097-990
Surgical tape 3M 1527-0
Silk suture, 7-0 Teleflex 15B051000
Mouse anti-alpha-actinin antibody Sigma A7811
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG1 antibody Thermo Fisher A21121

Riferimenti

  1. Patel, A. K., Celiz, A. D., et al. A defined synthetic substrate for serum free culture of human stem cell derived cardiomyocytes with improved functional maturity identified using combinatorial materials microarrays. Biomaterials. 61, 257-265 (2015).
  2. Mathur, A., Loskill, P., et al. Human iPSC-based Cardiac Microphysiological System For Drug Screening Applications. Sci Rep. 5, 8883 (2015).
  3. Mahmoud, A. I., Kocabas, F., et al. Meis1 regulates postnatal cardiomyocyte cell cycle arrest. Nature. 497 (7448), 249-253 (2013).
  4. Baumgartner, S., Halbach, M., et al. Electrophysiological and morphological maturation of murine fetal cardiomyocytes during electrical stimulation in vitro. J Cardiovasc Pharmacol Ther. 20 (1), 104-112 (2015).
  5. Ieda, M., Tsuchihashi, T., et al. Cardiac fibroblasts regulate myocardial proliferation through beta1 integrin signaling. Dev Cell. 16 (2), 233-244 (2009).
  6. Zhang, Y., Li, T. S., et al. Dedifferentiation and proliferation of mammalian cardiomyocytes. PLoS One. 5 (9), e12559 (2010).
  7. Engel, F. B., Schebesta, M., et al. p38 MAP kinase inhibition enables proliferation of adult mammalian cardiomyocytes. Gene Dev. 19 (10), 1175-1187 (2005).
  8. Sakurai, T., Lanahan, A., Woolls, M. J., Li, N., Tirziu, D., Murakami, M. Live cell imaging of primary rat neonatal cardiomyocytes following adenoviral and lentiviral transduction using confocal spinning disk microscopy. J Vis Exp. (88), e51666 (2014).
  9. Ahuja, P., Perriard, E., Perriard, J. C., Ehler, E. Sequential myofibrillar breakdown accompanies mitotic division of mammalian cardiomyocytes. J Cell Sci. 117 (Pt 15), 3295-3306 (2004).
  10. Kikuchi, K., Holdway, J. E., et al. Primary contribution to zebrafish heart regeneration by gata4(+) cardiomyocytes. Nature. 464 (7288), 601-605 (2010).
  11. Jopling, C., Sleep, E., Raya, M., Martì, M., Raya, A., Izpisúa Belmonte, J. C. Zebrafish heart regeneration occurs by cardiomyocyte dedifferentiation and proliferation. Nature. 464 (7288), 606-609 (2010).
  12. Porrello, E. R., Mahmoud, A. I., et al. Transient Regenerative Potential of the Neonatal Mouse Heart. Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).
  13. Heallen, T., Morikawa, Y., et al. Hippo signaling impedes adult heart regeneration. Development. 140 (23), 4683-4690 (2013).
  14. Lin, Z., Zhou, P., et al. Pi3kcb links Hippo-YAP and PI3K-AKT signaling pathways to promote cardiomyocyte proliferation and survival. Circ Res. 116 (1), 35-45 (2015).
  15. Zebrowski, D. C., Vergarajauregui, S., et al. Developmental alterations in centrosome integrity contribute to the post-mitotic state of mammalian cardiomyocytes. eLife. 4, e05563 (2015).
  16. Schluter, K. D., Piper, H. M. . Practical Methods in Cardiovascular Research. , (2005).
  17. Zhou, Y. Y., Wang, S. Q., et al. Culture and adenoviral infection of adult mouse cardiac myocytes: methods for cellular genetic physiology. Am J Physiol Heart Circ Phys. 279 (1), H429-H436 (2000).
  18. Kruppenbacher, J. P., May, T., Eggers, H. J., Piper, H. M. Cardiomyocytes of adult mice in long-term culture. Naturwissenschaften. 80 (3), 132-134 (1993).
  19. Fredj, S., Bescond, J., Louault, C., Potreau, D. Interactions between cardiac cells enhance cardiomyocyte hypertrophy and increase fibroblast proliferation. Journal of Cellular Physiology. 202 (3), 891-899 (2005).
  20. Li, Z., Sharma, R. V., Duan, D., Davisson, R. L. Adenovirus-mediated gene transfer to adult mouse cardiomyocytes is selectively influenced by culture medium. J Gene Med. 5 (9), 765-772 (2003).
  21. Luo, J., Deng, Z. L., et al. A protocol for rapid generation of recombinant adenoviruses using the AdEasy system. Nat Protoc. 2 (5), 1236-1247 (2007).
  22. Shioya, T. A simple technique for isolating healthy heart cells from mouse models. J Physiol Sci. 57 (6), 327-335 (2007).
  23. Li, D., Wu, J., Bai, Y., Zhao, X., Liu, L. Isolation and culture of adult mouse cardiomyocytes for cell signaling and in vitro cardiac hypertrophy. J Vis Exp. (87), e51357 (2014).
  24. Wolska, B. M., Solaro, R. J. Method for isolation of adult mouse cardiac myocytes for studies of contraction and microfluorimetry. Am J Physiol Heart Circ Phys. 271 (3), H1250-H1255 (1996).
  25. Pinz, I., Zhu, M., Mende, U., Ingwall, J. S. An improved isolation procedure for adult mouse cardiomyocytes. Cell Biochem Biophys. 61 (1), 93-101 (2011).
  26. Di Stefano, V., Giacca, M., Capogrossi, M. C., Crescenzi, M., Martelli, F. Knockdown of cyclin-dependent kinase inhibitors induces cardiomyocyte re-entry in the cell cycle. J Biol Chem. 286 (10), 8644-8654 (2011).
  27. Malouf, N. N., McMahon, D., Oakeley, A. E., Anderson, P. A. A cardiac troponin T epitope conserved across phyla. J Biol Chem. 267 (13), 9269-9274 (1992).
  28. Ehler, E., Moore-Morris, T., Lange, S. Isolation and culture of neonatal mouse cardiomyocytes. J Vis Exp. (79), e50154 (2013).
  29. Daly, M. J., Elz, J. S., Nayler, W. G. Contracture and the calcium paradox in the rat heart. Circ Res. 61 (4), 560-569 (1987).
  30. Piper, H. Culturing of calcium stable adult cardiac myocytes. J Mol Cell Cardiol. 14 (7), 397-412 (1982).
  31. Ashraf, M. Correlative studies on sarcolemmal ultrastructure, permeability, and loss of intracellular enzymes in the isolated heart perfused with calcium-free medium. Am J Pathol. 97 (2), 411-432 (1979).
  32. Piper, H. The calcium paradox revisited An artefact of great heuristic value. Cardiovasc Res. 45 (1), 123-127 (2000).
  33. Higuchi, H., Takemori, S. Butanedione monoxime suppresses contraction and ATPase activity of rabbit skeletal muscle. J Biochem. 105 (4), 638-643 (1989).
  34. Rother, J., Richter, C., et al. Crosstalk of cardiomyocytes and fibroblasts in co-cultures. Open biology. 5 (6), 150038 (2015).
  35. Fujio, Y., Nguyen, T., Wencker, D., Kitsis, R. N., Walsh, K. Akt Promotes Survival of Cardiomyocytes In Vitro and Protects Against Ischemia-Reperfusion Injury in Mouse Heart. Circulation. 101 (6), 660-667 (2000).
  36. Dambrot, C., Braam, S. R., Tertoolen, L. G. J., Birket, M., Atsma, D. E., Mummery, C. L. Serum supplemented culture medium masks hypertrophic phenotypes in human pluripotent stem cell derived cardiomyocytes. Journal of cellular and molecular medicine. 18 (8), 1509-1518 (2014).
  37. Karliner, J. S., Simpson, P. C., Taylor, J. E., Honbo, N., Woloszyn, W. Adrenergic receptor characteristics of cardiac myocytes cultured in serum-free medium: Comparison with serum-supplemented medium. Biochemical and Biophysical Research Communications. 128 (1), 376-382 (1985).
  38. Zheng, X., Baker, H., Hancock, W. S., Fawaz, F., McCaman, M., Pungor, E. Proteomic analysis for the assessment of different lots of fetal bovine serum as a raw material for cell culture. Part IV. Application of proteomics to the manufacture of biological drugs. Biotechnology progress. 22 (5), 1294-1300 (2006).
  39. Soonpaa, M. H., Kim, K. K., Pajak, L., Franklin, M., Field, L. J. Cardiomyocyte DNA synthesis and binucleation during murine development. Am J Physiol. 271 (5 Pt 2), H2183-H2189 (1996).
  40. Engel, F. B., Hsieh, P. C. H., Lee, R. T., Keating, M. T. FGF1/p38 MAP kinase inhibitor therapy induces cardiomyocyte mitosis, reduces scarring, and rescues function after myocardial infarction. P Natl Acad Sci USA. 103 (42), 15546-15551 (2006).
  41. Tian, Y., Liu, Y., et al. A microRNA-Hippo pathway that promotes cardiomyocyte proliferation and cardiac regeneration in mice. Sci Transl Med. 7 (279), 279ra38 (2015).
  42. Soonpaa, M. H., Koh, G. Y., et al. Cyclin D1 overexpression promotes cardiomyocyte DNA synthesis and multinucleation in transgenic mice. J Clin Invest. 99 (11), 2644-2654 (1997).
  43. Stewart, S., Stankunas, K. Limited dedifferentiation provides replacement tissue during zebrafish fin regeneration. Dev Biol. 365 (2), 339-349 (2012).
  44. Wu, C. H., Huang, T. Y., Chen, B. S., Chiou, L. L., Lee, H. S. Long-Duration Muscle Dedifferentiation during Limb Regeneration in Axolotls. PLoS One. 10 (2), e0116068 (2015).
  45. Nag, A. C., Lee, M. L., Kosiur, J. R. Adult cardiac muscle cells in long-term serum-free culture: myofibrillar organization and expression of myosin heavy chain isoforms. In vitro cellular & developmental biology journal of the Tissue Culture Association. 26 (5), 464-470 (1990).
  46. Lian, X., Hsiao, C., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. P Natl Acad Sci USA. 109 (27), E1848-E1857 (2012).
  47. Sohal, D. S., Nghiem, M., et al. Temporally Regulated and Tissue-Specific Gene Manipulations in the Adult and Embryonic Heart Using a Tamoxifen-Inducible Cre Protein. Circ Res. 89 (1), 20-25 (2001).
  48. Hsieh, P. C. H., Segers, V. F. M., et al. Evidence from a genetic fate-mapping study that stem cells refresh adult mammalian cardiomyocytes after injury. Nat Med. 13 (8), 970-974 (2007).
check_url/it/54012?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Judd, J., Lovas, J., Huang, G. N. Isolation, Culture and Transduction of Adult Mouse Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (114), e54012, doi:10.3791/54012 (2016).

View Video