Il gating dei canali ionici è un'orchestrazione guidata dallo stimolo dei movimenti delle proteine che porta a transizioni tra stati chiusi, aperti e desensibilizzati. Fondamentale per queste transizioni è la flessibilità intrinseca della proteina, che è modulata in modo critico dalla composizione lipidica di membrana. Per comprendere meglio le basi strutturali della funzione dei canali, è necessario studiare la dinamica delle proteine in un ambiente fisiologico di membrana. La spettroscopia di risonanza paramagnetica elettronica (EPR) è uno strumento importante per caratterizzare le transizioni conformazionali tra gli stati funzionali. Rispetto alla NMR e alla cristallografia a raggi X, le informazioni ottenute dall'EPR sono intrinsecamente di risoluzione inferiore. Tuttavia, a differenza di altre tecniche, nell'EPR non esiste un limite superiore al peso molecolare della proteina, i requisiti del campione sono significativamente inferiori e, cosa più importante, la proteina non è vincolata dalle forze del reticolo cristallino. Pertanto, l'EPR è particolarmente adatta per lo studio di grandi complessi proteici e proteine in sistemi ricostituiti. In questo articolo, discuteremo i protocolli generali per la marcatura dello spin sito-diretto e la ricostituzione della membrana utilizzando come esempio un canale ionico ligando-gated ligando-gated (pLGIC) da Gloeobacter violaceus (GLIC). Verrà descritta una combinazione di approcci EPR a onda continua (CW) e pulsata (Double Electron Electron Resonance-DEER) che consentiranno una caratterizzazione quantitativa completa della dinamica dei canali.