Summary

Polyelektrolytkomplex för Heparin Binding Domain osteogent Growth Factor Leverans

Published: August 22, 2016
doi:

Summary

Self-assembled polyelectrolyte complexes (PEC) fabricated from heparin and protamine were deposited on alginate beads to entrap and regulate the release of osteogenic growth factors. This delivery strategy enables a 20-fold reduction of BMP-2 dose in spinal fusion applications. This article illustrates the benefits and fabrication of PECs.

Abstract

Under rekonstruktiv ben operationer, är suprafysiologiska mängder av tillväxtfaktorer empiriskt lastas på ställningar för att främja framgångsrika ben fusion. Stora doser av mycket potenta biologiska medel krävs på grund av tillväxtfaktor instabilitet till följd av snabb nedbrytning enzymatisk liksom bärare ineffektivitet i att lokalisera tillräckliga mängder av tillväxtfaktor på implantatställen. Därför strategier som förlänger stabiliteten av tillväxtfaktorer såsom BMP-2 / NELL-1, och kontrollera deras frigivning kan faktiskt sänka sina effektiva dos och därmed minska behovet av större doser under kommande benersättningsmaterial operationer. Detta i sin tur kommer att minska biverkningar och tillväxtfaktorkostnader. Själv monterade PEC har tillverkats för att ge bättre kontroll av BMP-2 / NELL-en leverans via heparinbindning och ytterligare GÖRA MÖJLIGT tillväxtfaktor bioaktivitet genom att öka in vivo-stabilitet. Här visar vi enkelheten PEC tillverkning som stöd i delivery av en mängd olika tillväxtfaktorer under rekonstruktiv ben operationer.

Introduction

Förekomsten av pseudoartros har rapporterats vara så hög som 10 till 45% i degenerativ ryggradsfusions och revisions spinal operationer 1. För att minska graden av pseudartros under ryggraden fusion och andra rekonstruktiv ben operationer, osteogena tillväxtfaktorer såsom BMP-2, Nell-1 1 och blodplättshärledd tillväxtfaktor (PDGF) har införts för att främja de novo osteogenes. Bland dessa är BMP-2 ett populärt val för ryggradsfusion 2. Även om styrkan av BMP-2 i att inducera och underlätta ny benbildning har varit väl etablerat 3; kliniskt signifikanta komplikationer såsom heterotopisk benbildning, serom och hematom, inflammatoriskt svar, radikulit, kotkroppen osteolys, och retrograd ejakulation fortsätter att vara angelägna frågor på grund av de suprafysiologiska mängder som används 4,5.

Därför att sänka dosen av BMP-2 är fortfarande en relevant strategi i åtminfrestar att minimera biverkningar. Dessutom är effektiva bärarsystem som krävs för att undertrycka den initiala utbrottet frisättning av BMP-2 observerades i samtida kollagensvamp bärarsystem och ytterligare stärka förlängd och lokal administrering av denna potenta cytokin. Den lager-för-lager självsammansättning av alternerande katjoniska och anjoniska polyelektrolyter kan användas som en avstämbar metod för att bygga upp polyelektrolytkomplex på ytan av byggnadsställnings matriser eller implanterbara material 6. I detta avseende, har heparin (känd för att ha den högsta negativa laddningstätheten för alla biologiska medel) varit känt att avidly binda med en mängd olika tillväxtfaktorer via elektrostatiska och heparinbindande domäner. I själva verket har heparin visats förlänga halveringstiden och därmed potentiera bioaktiviteten av flera tillväxtfaktorer.

Baserat på detta, vår grupp anpassat ett skikt-vid-skikt självsammansättning protokoll för att tillverka en heparin-baserat polyelektrolytkomplex (PEC) som laster och bevarar bioaktiviteten av osteogena tillväxtfaktorer under immobilisering 7,8. Alginat mikrokorn kärna tillverkades genom tvärbindning av α-L-guluronat (G) rester av alginat med tvåvärd katjon kalcium- eller strontiumjoner. Alginat kärnan är en biologiskt nedbrytbar scaffold matris; som efter implantation, är det resorberas i fusions säng ger utrymme för benig inväxt. Poly-L-lysin (PLL) eller protamin användes som katjoniska skiktet till interlace med både byggnadsställningsmatrisen (i detta fall, alginat microbead bäraren kärna) och den negativt laddade heparin; medan de anjoniska heparinskiktet funktioner för att stabilisera och lokalisera laddade tillväxtfaktorer. Den tredubbla lager PEC har visat sig öka tillväxtfaktorlastförmåga på en grismodell 9. Nyligen har PEC bärare visats att framgångsrikt minska den effektiva dosen av BMP-2 med åtminstone 20-faldigt i råtta 10 och svin modeller av ryggradsfusion 8.

ntent "> Här rapporterar vi de metoder för att tillverka PEC för förbättrad tillväxtfaktor leverans i spinal fusion och andra rekonstruktiv ben operationer med hjälp av BMP-2 som en modell osteogen tillväxtfaktor.

Protocol

1. alginatlösningen Förberedelse Lös 200 mg natriumalginat (icke-bestrålade) eller 400 mg av 8 Mrad bestrålad natriumalginat i 10 ml dubbeldestillerat vatten och skaka i en timme för icke-utstrålade alginat och 15 minuter för bestrålat alginat. Lagra alginatlösningen vid 4 ° C över natten. Filtrera alginatlösningen med en steril 0,2 um sprutfilter innan alginat mikrokornet tillverkning. 2. Alginat mikrokorn Fabrication Desinficera elektro pärla gener…

Representative Results

I vår bärare, var protamin valts som ett substitut för poly-L-lysin som har liknande kemiska egenskaper och det är FDA godkänt som ett motgift av heparin. mikroskop resultat optiska visade att de icke-bestrålade mikropärlor var sfäriska till sin form med en diameter på 267 ± 14 ^ m. (0,35 mm munstycke, flödeshastighet av 5 ml / h & 5,8 kV). Majoriteten av de bestrålade mikropärlorna är av droppform. Diametern mäts på den runda delen av de bestrålade mikropärlorna va…

Discussion

Detta protokoll presenterar en metod för framställning av PEC genom skikt-vid-skikt självmontering. Den lager-för-lager struktur visualiseras med användning av fluorescerande analoger av protamin, heparin, BMP-2 och NELL-1 och konfokalmikroskopi. Upptag och släppa tester visar att heparin på PEC förmedlar osteogen tillväxtfaktor upptag och utsläpp. Upptagnings effektivitet PEC-metoden är: NELL-1: 86,7 ± 2,7%, BMP-2: 70,5 ± 3,1%. PEC bäraren har en bättre modulering av NELL-1 (20%) frisättning jämfört m…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

These studies were funded by National Medical Research Council Clinician Scientist – Individual Research Grant (CS-IRG) NMRC/CIRG/1372/2013 and NMRC EDG/0022/2008.

Materials

Life Science Acrodisc 25mm Syring Filter w/0.2 µm Supor  Membrane PALL  PN4612 Sterile protamine,
 heparin solution by ultrafiltration
24 well plate Cell Star  662160
96 well plate Nuclon Delta Surface Thermo Fisher Scientific 167008
(3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-Diphenyltetrazolium Bromide), MTT Sigma Aldrich M5655 Measure cytotoxicity of PEC-NELL-1
Acetone Fisher Scientific A/0600/17 Precipitate CF-405
Labelled protamine 
Alamar Blue Invitrogen, Life Technologies DAL 1025 Measure cytotoxicity of PEC-BMP-2
Alkaline Phosphatase Assay (ALP) assay kit Anaspec AS-72146
Ammonium Chloride Merck Art 1145 Stop reagent in FITC labelling
Anhydrous Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Invitrogen, Life Technologies D12345 Solvent for fluorescent isothiocyanate I
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) Sigma Aldrich Dissolve  formazan 
Autoclave Hirayama HU-110 Sterilize alginate beads by steam
Beta-glycerophosphate Sigma Aldrich G9422
BMP-2 (Infuse Bone Graft Large II Kit)  Medtronic Sofarmor Danek, Memphis TN, USA 7510800 Osteogenic Growth  Factor,
 dialysis is needed to remove stabilizer component that interferes with FITC coupling
Carboxybenzoyl quinoline-2-Carboxaldehyde (CBQCA)  Thermo Fisher Scientific A-6222 To quantify NELL-1 protein
Cell Strainer (100µm) BD Science 352360 Hold PEC for ALP assay
Cell Scraper 290mm Bladewide 20mm SPL Life Science  90030 Detach the cell from 24 well plate 
CF 405S, Succinimidyl Ester Sigma Aldrich SCJ4600013 Blue fluorescent dye for protamine labelling
CF 594, Hydrazide Sigma Aldrich SCJ4600031 Deep red fluorescent dye for heparin labelling 
Centrifuge Beckman Coulter Microfuge 22R
Confocal Microscope Olympus  FV1000
Dexamethasone Sigma Aldrich D4902 Component of osteogenic growth medium
Dextran Desalting Columns Pierce (Thermo Scientific)  43230
DMEM Gibco  12320
BMP-2 Quantikine ELISA Kit R&D System DBP200 Determine BMP-2 release
Fetal Bovine Serum FBS Hyclone SV30160.03
Fluoescein Isothiocyananate, Isomer I Sigma Aldrich F7250 Green fluorescent dye for NELL-1 and BMP-2 labelling
ThinCert Cell Culture Inserts,
For 24 Well plates, Sterile
Greiner  662630 Prevents PEC wash out when
 changing osteogenic medium
Havard Appartus Syringe Pump (11 plus) Havard Apparatus 70-2208
n-Hexane (>99%) Sigma Aldrich 139386
Heparin Sigma Aldrich H3149 Binds with osteogenic
growth factor with heparin binding domain
Hydrochloric acid (37%) Merck 100317 Highly Corrosive
Incubator Binder C8150
MicroBCA Protein Assay kit Thermoscientific 23235
Microplate Reader Tecan Infinite M200 For ALP and microBCA assays
NELL-1 Aragen Bioscience Morgan Hill, CA, USA N/A Osteogenic growth factor, keep at -80˚C
Nisco cell encapsulator Nisco Engineering Inc Encapsulation unit VAR V1
Fluorescent Microscope Olympus IX71
mPCL-TCP Scaffold (Pore size is 1.3mm) Osteopore PCL-TCP 0/90 Hold PEC for in vivo study
Penicillin-Streptomycin 10,000 unit/ml, 100ml Hyclone Cell Culture SV30010 Antibiotic
10X Phosphate Buffered Saline (PBS)  Vivantis PB0344-1L 10x Solution, Ultra Pure Grade
Poly-L-Lysine MW 15,000-30,000 Sigma Aldrich P2568 Polycation
Protamine Sulfate salt, from Salmon Sigma Aldrich P4020 Polycation
Shaker Labnet S2025
Snakeskin Dialysis Tubing 3,500 MWCO 22mm x 35 feet Thermo Fisher Scientific 68035 Remove unreacted FITC by dialysis
Sodium Chloride Merck 1.06404.1000
Sodium Hydroxide Qrec S5158
Sodium Bicarbonate US Biological S4000 Buffer
Sodium carbonate Sigma Aldrich S7795-500G Buffer
Strontium Chloride Hexahydrate Sigma Aldrich 255521 Crosslinker for alginate
Spatula 3dia
5ml syringe Terumo 140425R Diameter of syringe
affects the flow rate 
75cm2 Cell Culture Flask Canted Neck Corning 730720
Toluidine Blue  Sigma Aldrich 52040 Heparin assay
Trypsin 1X Hyclone Cell Culture SH30042.01
Sodium alginate Novamatrix (FMC Biopolymer, Princeton, NJ) Pronova UPMVG Core material of microbeads

Riferimenti

  1. Yuan, W., et al. NELL-1 based demineralized bone graft promotes rat spine fusion as compared to commercially available BMP-2 product. Orthop Sci. 18, 646-657 (2013).
  2. Anderson, C. L., Whitaker, M. C. Heterotopic ossification associated with recombinant human bone morphogenetic protein-2 (infuse) in posterolateral lumbar spine fusion: a case report. Spine. 37, 502-506 (2012).
  3. Glassman, S. D., et al. RhBMP-2 versus iliac crest bone graft for lumbar spine fusion: a randomized, controlled trial in patients over sixty years of age. Spine. 33, 2843-2849 (2008).
  4. Tannoury, C. A., An, H. S. Complications with the use of bone morphogenetic protein 2 (BMP-2) in spine surgery. Spine J. 14, 552-559 (2014).
  5. Carragee, E. J., Hurwitz, E. L., Weiner, B. K. A critical review of recombinant human bone morphogenetic protein-2 trials in spinal surgery: emerging safety concerns and lessons learned. Spine J. 11, 471-491 (2011).
  6. Abbah, S. A., Lam, C. X., Hutmacher, D. W., Goh, J. C., Wong, H. K. Biological performance of a polycaprolactone-based scaffold used as fusion cage device in a large animal model of spinal reconstructive surgery. Biomaterials. 30, 5086-5093 (2009).
  7. Abbah, S. A., Liu, J., Lam, R. W., Goh, J. C., Wong, H. K. In vivo bioactivity of rhBMP-2 delivered with novel polyelectrolyte complexation shells assembled on an alginate microbead core template. J. Control. Release. 162, 364-372 (2012).
  8. Wang, M., et al. Polyelectrolyte Complex Carrier Enhances Therapeutic Efficiency and Safety Profile of Bone Morphogenetic Protein-2 in Porcine Lumbar Interbody Fusion Model. Spine. 40, 964-973 (2015).
  9. Abbah, S. A., Lam, W. M., Hu, T., Goh, J., Wong, H. K. Sequestration of rhBMP-2 into self-assembled polyelectrolyte complexes promotes anatomic localization of new bone in a porcine model of spinal reconstructive surgery. Tissue Eng. Part A. 20, 1679-1688 (2014).
  10. Hu, T., et al. Novel Protamine-Based Polyelectrolyte Carrier Enhances Low-Dose rhBMP-2 in Posterolateral Spinal Fusion. Spine. 40, 613-621 (2015).
  11. Hu, J., Hou, Y., Park, H., Lee, M. Beta-tricalcium phosphate particles as a controlled release carrier of osteogenic proteins for bone tissue engineering. J Biomed Mater Res A. 100, 1680-1686 (2012).
  12. Darrabie, M. D., Kendall, W. F., Opara, E. C. Characteristics of Poly-L-Ornithine-coated alginate microcapsules. Biomaterials. 26, 6846-6852 (2005).
  13. Li, X., Min, S., Zhao, X., Lu, Z., Jin, A. Optimization of entrapping conditions to improve the release of BMP-2 from PELA carriers by response surface methodology. Biomed Mater. 10, 015002 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Wing Moon Lam, R., Abbah, S. A., Ming, W., Naidu, M., Ng, F., Tao, H., Goh Cho Hong, J., Ting, K., Hee Kit, W. Polyelectrolyte Complex for Heparin Binding Domain Osteogenic Growth Factor Delivery. J. Vis. Exp. (114), e54202, doi:10.3791/54202 (2016).

View Video