Summary

Ekstern Eksitasjon av nerveceller ved hjelp av elektriske og magnetiske felt i en-og to-dimensjonale kulturer

Published: May 07, 2017
doi:

Summary

Nevrale kulturer er en god modell for å studere nye hjernestimuleringsteknikker via deres effekt på enkeltnerveceller eller en populasjon av nerveceller. Presenteres her er forskjellige metoder for stimulering av mønstrede neuronale kulturer av et elektrisk felt frembragt direkte ved badelektroder eller indusert av et tidsvarierende magnetfelt.

Abstract

En nevron vil avfyre ​​et aksjonspotensial når dens membranpotensialet overstiger en viss terskel. I typisk aktiviteten i hjernen, skjer dette som et resultat av kjemiske innganger til sine synapser. Imidlertid kan neuroner også bli eksitert av et pålagt elektrisk felt. Spesielt de siste kliniske applikasjoner aktivere nerveceller ved å skape et elektrisk felt eksternt. Det er derfor av interesse å undersøke hvordan nervecellen reagerer på ytre felt og hva som forårsaker handlingen potensial. Heldigvis er nøyaktig og kontrollert påføring av et eksternt elektrisk felt mulig for embryonale neuronale celler som er skåret ut, dissosierte og dyrket i kulturer. Dette gjør etterforskningen av disse spørsmålene i en svært reproduserbar system.

I dette papiret noen av de teknikker som brukes for styrt påføring av ytre elektrisk felt på neuronale kulturer blir gjennomgått. Nettverkene kan enten være endimensjonal, det vil si mønstret i linear former eller tillatt å vokse på hele planet til substratet, og således todimensjonale. Videre kan eksitasjon skapes ved direkte anvendelse av elektrisk felt via elektroder nedsenket i væsken (badelektroder), eller ved å indusere det elektriske feltet ved hjelp av fjern opprettelse av magnetiske pulser.

Introduction

Samspillet mellom nevroner og eksterne elektriske felt har fundamentale konsekvenser samt praktiske seg. Mens det er kjent siden tider av Volta som en ytre påført elektrisk felt kan eksitere vev, blir de mekanismer som er ansvarlig for produksjonen av en resulterende virkningspotensial i neuroner bare nylig begynt å bli avslørt 1, 2, 3, 4. Dette inkluderer å finne svar på spørsmål angående den mekanisme som forårsaker depolarisering av membranpotensialet, rollen av membranegenskaper og ione-kanaler, og til og med regionen i nervecelle som reagerer på det elektriske felt 2, 5. Terapeutisk nerve 6, 7, 8, 9, <supclass = "ekstern referanse"> 10 metoder er spesielt avhengig av denne informasjonen, noe som kan være avgjørende for å målrette de berørte områdene, og for å forstå utfallet av terapien. En slik forståelse kan også bidra i utviklingen av behandlingsprotokoller og nye tilnærminger for stimulering av ulike områder i hjernen.

Måling av vekselvirkning inne i hjernen in vivo gir en viktig komponent til denne forståelse, men er hemmet av den unøyaktighet og lav kontrollerbarhet av målinger i kraniet. I motsetning til dette, kan målinger i kulturer enkelt bli utført i høyt volum med høy presisjon, utmerket signal til støyforhold og en høy grad av reproduserbarhet og av kontroll. Ved bruk av kulturer et stort utvalg av nevronale egenskaper for kollektive forbindelsene oppførsel kan bli belyst 11, 12, 13, 14, </sup> 15, 16. Tilsvarende er det godt kontrollert system forventes være svært effektiv i å belyse mekanismen ved hvilken andre stimuleringsmetoder arbeide, for eksempel hvor kanalen åpner seg under optisk stimulering i optogenetically aktive neuroner 17, 18, 19 er ansvarlig for å opprette aksjonspotensial.

Her fokuseres det på å beskrive utvikling og forståelse av verktøy som effektivt kan opphisse nervecellen via en ekstern elektrisk felt. I denne beskrivelsen beskriver vi fremstilling av todimensjonale og endimensjonal mønstrede hippocampal kulturer, stimulering ved hjelp av forskjellige konfigurasjoner og orientering av en direkte påtrykt elektrisk felt av badelektroder, og endelig stimulering av to-dimensjonale og mønstrede endimensjonale kulturer ved en tidsvarierende magnetisk felt som induserer en elektrisk felt5, 20, 21.

Protocol

Etikk Uttalelse: Prosedyrer som involverer dyr behandling ble gjort i samsvar med retningslinjene i Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC) av Weizmann Institute of Science, og den aktuelle israelsk lov. Weizmann Institute er akkreditert av Association for Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC). Weizmann Institutional Animal Care og bruk komité godkjente denne studien, utført med hippocampalneuroner. 1. Fremstilling av to-dimensjonale (2D) o…

Representative Results

Protokollen present gir mulighet for enkel mønstring av neuronale kulturer. Når den kombineres med flere metoder vi utviklet for stimulering, gjør det mulig å foreta målinger av noen iboende neuron egenskaper som Chronaxie og Rheobase 5, for å sammenligne egenskapene av friske og syke neuroner 27, for å finne optimale måter å stimulere kulturer som en funksjon av sin struktur og mange flere nye tilnærminger. Noen eksempler e…

Discussion

1D mønster er et viktig verktøy som kan brukes for en rekke anvendelser. For eksempel har vi brukt 1D mønstring for å lage logiske porter fra neuronale kulturer 29 og mer nylig for å måle Chronaxie og Rheobase av rotte-hippokampale neuroner 5, og nedbremsing av signalforplantningshastigheten til avfyring aktivitet i Down syndrom hippocampalneuroner forhold til villtype (WT) hippocampalneuroner 27. Den foreslåtte protokoll for 1D mønster er r…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Ofer Feinerman, Fred Wolf, Menahem Segal, Andreas Neef og Eitan Reuveny for svært nyttige diskusjoner. Forfatterne takker Ilan Breskin og Jordi Soriano for utvikling av tidlige versjoner av teknologien. Forfatterne takker Tsvi Tlusty og Jean-Pierre Eckmann for hjelp med de teoretiske begreper. Denne forskningen ble støttet av Minerva Foundation, Ministry of Science and Technology, Israel, og Israel Science Foundation bevilgning 1320-1309 og Bi-National Science Foundation bevilgning 2.008.331.

Materials

APV Sigma-Aldrich A8054 Disconnect the network. Mentioned in Section 2.4.2
B27 supp Gibco 17504-044 Plating medium. Mentioned in Section 1.1.1
bicuculline Sigma-Aldrich 14343 Disconnect the network . Mentioned in Section 2.4.2
Borax (sodium tetraborate decahydrate) Sigma-Aldrich S9640 Borate buffer. Mentioned in Section 1.1.2
Boric acid Frutarom LTD 5550710 Borate buffer. Mentioned in Section 1.1.2
CaCl2 , 1M Fluka  21098 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
CNQX Sigma-Aldrich C239 Disconnect the network . Mentioned in Section 2.4.2
COMSOL COMSOL Inc Multiphysics 3.5 Numerical simulation. Mentioned in Section 3.5.2
D-(+)-Glucose, 1M Sigma-Aldrich 65146 Plating medium, Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.1.1    1.5.2
D-PBS Sigma-Aldrich D8537 Cell Cultures. Mentioned in Section 1.2.4    1.2.6
FCS(FBS) Gibco 12657-029 Plating medium. Mentioned in Section 1.1.1
Fibronectin Sigma-Aldrich F1141 Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.6
Fluo4, AM Life technologies F14201 Imaging of spontaneous or evoked activity . Mentioned in Section 1.5.1    1.5.3    1.5.5
FUDR Sigma-Aldrich F0503 Changing medium. Mentioned in Section 1.4.1
Gentamycin Sigma-Aldrich G1272 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1
GlutaMAX 100X Gibco 35050-038 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1
Hepes, 1M Sigma-Aldrich H0887 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
HI HS  BI 04-124-1A Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.1.1    1.4.1    1.4.2
KCl,  3M Merck 1049361000 Extracellular recording solution. Mentioned in Section 1.5.2
Laminin  Sigma-Aldrich L2020 Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.6
MEM x 1 Gibco 21090-022 Plating medium, Changing medium, Final medium. Mentioned in Section 1.4.1    1.4.2
MgCl2 , 1M Sigma-Aldrich M1028 Extracellular recording solution. Mentioned in Section 1.5.2
NaCl, 4M Bio-Lab 19030591 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
Octadecanethiol Sigma-Aldrich 01858 Cleaning Cr-Au coated coverslips (1D cultures). Mentioned in Section 1.2.3
Pluracare F108 NF Prill BASF Corparation  50475278 Bio-Rejection Coating, Bio Coating. Mentioned in Section 1.2.4    1.2.6
Poly-L-lysine 0.01% solution  Sigma-Aldrich  P47075 Promote cell division. Mentioned in Section 1.1.4
Sucrose, 1M Sigma-Aldrich S1888 Extracellular recording solution . Mentioned in Section 1.5.2
Thiol  Sigma-Aldrich 1858 Bio-Rejection Coating. Mentioned in Section 1.2.3
URIDINE Sigma-Aldrich U3750 Changing medium. Mentioned in Section 1.4.1
Sputtering machine AJA International, Inc ATC Orion-5Series  coating glass with thin layers of metal. Mentioned in Section 1.2.2
Pen plotter  Hewlett Packard  HP 7475A Etching of pattern to the coated coverslip. Mentioned in Section 1.2.5
Electrodes wires  A-M Systems, Carlsborg WA 767000 Electric stimulation of neuronal cultures. Mentioned in Section 2.1    2.2    2.3   2.4.5
Signal generator BKPrecision 4079 Shaping of the electric signal. Mentioned in Section 2.3
Amplifier Homemade Voltage amplification of the signal from the signal generator to the electrodes. Mentioned in Section 2.3
Power supply Matrix  MPS-3005 LK-3  Power supply to the sputtering machine. Mentioned in Section 1.2.2.3
Transcranial magnetic stimulation Magstim, Spring Gardens, UK Rapid 2 Magnetic stimulation of neuronal culture. Mentioned in Section 3.1   3.3   3.4
Epoxy Cognis Versamid 140 Casting of homemade coils. Mentioned in Section 3.4
Epoxy Shell EPON 815  Casting of homemade coils. Mentioned in Section 3.4
Platinum wires 0.005'' thick; A-M Systems,   Carlsborg WA  767000 Electric stimulation of neuronal cultures. Mentioned in Section 2.1
Circular magnetic coil Homemade Magnetic stimulation of neuronal culture. Mentioned in Section 3.3
WaveXpress SW B&K Precision  Waveform editing software. Mentioned in Section 2.1.32
Xion Ultra 897 Andor Sensitive EMCCD camera. Mentioned in Section 2.4.4

Riferimenti

  1. Nagarajan, S. S., Durand, D. M., Warman, E. N. Effects of induced electric fields on finite neuronal structures: a simulation study. IEEE Trans Biomed Eng. 40 (11), 1175-1188 (1993).
  2. Nowak, L. G., Bullier, J. Axons but not cell bodies, are activated by electrical stimulation in cortical gray matter. II. Evidence from selective inactivation of cell bodies and axon initial segments. Exp Brain Res. 118 (4), 489-500 (1998).
  3. Ranck, J. B. Which elements are excited in electrical stimulation of mammalian central nervous system: a review. Brain Res. 98 (3), 417-440 (1975).
  4. Rattay, F. The basic mechanism for the electrical stimulation of the nervous system. Neuroscienze. 89 (2), 335-346 (1999).
  5. Stern, S., Agudelo-Toro, A., Rotem, A., Moses, E., Neef, A. Chronaxie Measurements in Patterned Neuronal Cultures from Rat Hippocampus. PLoS One. 10 (7), e0132577 (2015).
  6. Brunelin, J., et al. Examining transcranial direct-current stimulation (tDCS) as a treatment for hallucinations in schizophrenia. Am J Psychiatry. 169 (7), 719-724 (2012).
  7. Cruccu, G., et al. EFNS guidelines on neurostimulation therapy for neuropathic pain. Eur J Neurol. 14 (9), 952-970 (2007).
  8. Kennedy, S. H., et al. Canadian Network for Mood and Anxiety Treatments (CANMAT) Clinical guidelines for the management of major depressive disorder in adults. IV. Neurostimulation therapies. J Affect Disord. 117, S44-S53 (2009).
  9. Minzenberg, M. J., Carter, C. S. Developing treatments for impaired cognition in schizophrenia. Trends Cogn Sci. 16 (1), 35-42 (2012).
  10. Vaidya, N. A., Mahableshwarkar, A. R., Shahid, R. Continuation and maintenance ECT in treatment-resistant bipolar disorder. J ECT. 19 (1), 10-16 (2003).
  11. Bartlett, W. P., Banker, G. A. An electron microscopic study of the development of axons and dendrites by hippocampal neurons in culture. II. Synaptic relationships. J Neurosci. 4 (8), 1954-1965 (1984).
  12. Bartlett, W. P., Banker, G. A. An electron microscopic study of the development of axons and dendrites by hippocampal neurons in culture. I. Cells which develop without intercellular contacts. J Neurosci. 4 (8), 1944-1953 (1984).
  13. Beggs, J. M., Plenz, D. Neuronal avalanches in neocortical circuits. J Neurosci. 23 (35), 11167-11177 (2003).
  14. Breskin, I., Soriano, J., Moses, E., Tlusty, T. Percolation in living neural networks. Phys Rev Lett. 97 (18), (2006).
  15. Feinerman, O., Moses, E. Transport of information along unidimensional layered networks of dissociated hippocampal neurons and implications for rate coding. J Neurosci. 26 (17), 4526-4534 (2006).
  16. Soriano, J., Rodriguez Martinez, ., Tlusty, M., T, E., Moses, Development of input connections in neural cultures. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (37), 13758-13763 (2008).
  17. Deisseroth, K. Optogenetics. Nat Methods. 8 (1), 26-29 (2011).
  18. Fenno, L., Yizhar, O., Deisseroth, K. The development and application of optogenetics. Annu Rev Neurosci. 34, 389-412 (2011).
  19. Williams, S. C., Deisseroth, K. Optogenetics. Proc Natl Acad Sci U S A. 110 (41), 16287 (2013).
  20. Rotem, A., Moses, E. Magnetic stimulation of curved nerves. IEEE Trans Biomed Eng. 53 (3), 414-420 (2006).
  21. Rotem, A., Moses, E. Magnetic stimulation of one-dimensional neuronal cultures. Biophys J. 94 (12), 5065-5078 (2008).
  22. Feinerman, O., Moses, E. A picoliter ‘fountain-pen’ using co-axial dual pipettes. J Neurosci Methods. 127 (1), 75-84 (2003).
  23. Feinerman, O., Segal, M., Moses, E. Signal propagation along unidimensional neuronal networks. J Neurophysiol. 94 (5), 3406-3416 (2005).
  24. Papa, M., Bundman, M. C., Greenberger, V., Segal, M. Morphological analysis of dendritic spine development in primary cultures of hippocampal neurons. J Neurosci. 15 (1 Pt 1), 1-11 (1995).
  25. Bikson, M., et al. Effects of uniform extracellular DC electric fields on excitability in rat hippocampal slices in vitro. J Physiol. 557 (1), 175-190 (2004).
  26. Rahman, A., et al. Cellular effects of acute direct current stimulation: somatic and synaptic terminal effects. J Physiol. 591 (10), 2563-2578 (2013).
  27. Stern, S., Segal, M., Moses, E. Involvement of Potassium and Cation Channels in Hippocampal Abnormalities of Embryonic Ts65Dn and Tc1 Trisomic Mice. EBioMedicine. 2 (9), 1048-1062 (2015).
  28. Rotem, A., et al. Solving the orientation specific constraints in transcranial magnetic stimulation by rotating fields. PLoS One. 9 (2), e86794 (2014).
  29. Feinerman, O., Rotem, A., Moses, E. Reliable neuronal logic devices from patterned hippocampal cultures. Nat Phys. 4 (12), 967-973 (2008).
  30. Kleinfeld, D., Kahler, K. H., Hockberger, P. E. Controlled outgrowth of dissociated neurons on patterned substrates. J Neurosci. 8 (11), 4098-4120 (1988).
  31. Bugnicourt, G., Brocard, J., Nicolas, A., Villard, C. Nanoscale surface topography reshapes neuronal growth in culture. Langmuir. 30 (15), 4441-4449 (2014).
  32. Roth, S., et al. Neuronal architectures with axo-dendritic polarity above silicon nanowires. Small. 8 (5), 671-675 (2012).
  33. Peyrin, J. M., et al. Axon diodes for the reconstruction of oriented neuronal networks in microfluidic chambers. Lab Chip. 11 (21), 3663-3673 (2011).
  34. Renault, R., et al. Combining microfluidics, optogenetics and calcium imaging to study neuronal communication in vitro. PLoS One. 10 (4), e0120680 (2015).
  35. Roth, B. J., Basser, P. J. A model of the stimulation of a nerve fiber by electromagnetic induction. IEEE Trans Biomed Eng. 37 (6), 588-597 (1990).
check_url/it/54357?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Stern, S., Rotem, A., Burnishev, Y., Weinreb, E., Moses, E. External Excitation of Neurons Using Electric and Magnetic Fields in One- and Two-dimensional Cultures. J. Vis. Exp. (123), e54357, doi:10.3791/54357 (2017).

View Video