Summary

Mus Mikro Infusion Teknik för riktad substanstillförsel i CNS<i> via</i> Den inre Carotid Artery

Published: January 31, 2017
doi:

Summary

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

Abstract

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

Introduction

In vivo-modeller i centrala nervsystemet (CNS) sjukdomar kräver en effektiv leverans av exogena substanser, såsom läkemedel, patogener eller exosomes, in i hjärnan. Därför bör en ideal leveransmetod orsakar minimal skada på djuret, bevara integriteten av neuronala nätverk och uppnå höga substanskoncentrationer i hjärnan en.

Flera kirurgiska metoder för lokal substanstillförsel har beskrivits, bland annat inom mantel, intracerebral, och intraventrikulära injektioner eller implantat 2, 3, 4, 5. Dessa tillvägagångssätt är emellertid anses traumatisk för CNS, och tillåta administration av endast låga volymer av substansen av intresse. Vidare har det föreslagits att exogena ämnen kan snabbt avlägsnas genom cerebrospinalvätskan 6 </supp>, och en låg penetrationsområdet till det hjärnparenkymet har observerats 7 när de ovan nämnda teknikerna används. Systemiska administreringsmetoder, såsom oral, pulmonell, subkutan och intravenös väg, är mer vanligt förekommande i djurmodeller, även om de uppvisar låg effektivitet i att leverera ämnen till CNS på grund av upptag av andra organ 8, 9. Därför är dessa sträckor för leveranser kräver förhöjda doser av de administrerade substanserna, vilket ökar risken för biverkningar och toxicitet 10, 11.

Här beskriver vi en mus infusionsmikrokirurgi teknik, som effektivt levererar ämnen direkt in i hjärnan via den interna karotisartären. Förutom att rikta leveransen till CNS, gör denna teknik inte kringgå normala fysiologiska barriärer och är därför i högsta grad relevant för Biological processerna i avsnitten i terapeutiska eller patogener in i hjärnan.

Protocol

De förfaranden som är involverade i följande protokoll har godkänts av University of Miami Institutional Animal Care och användning kommittén (IACUC). Dessutom är alla förfaranden genomförs i anläggningar som godkänts av Föreningen för bedömning och ackreditering av Laboratory Animal Care International (AAALAC). 1. Beredning av möss för kirurgi Söva musen med isofluran blandat med syre, med hjälp av en laboratorieanestesisystemet. Använd isofluran vid inställni…

Representative Results

Musen infusionsmikrokirurgi teknik som beskrivs här är mycket mångsidig och har använts för att leverera olika substanser direkt in i hjärnan, inklusive leverans av tumörceller i en representativ modell av hjärn metastasbildning 1, 12. Denna teknik är också lämplig för att bedöma de patologiska aspekterna av olika patogener i CNS. I en musmodell av HIV-inf…

Discussion

Infusionsmikro beskrivs här har visat sig vara mycket framgångsrik i att leverera exogena ämnen i olika biologiska funktioner i CNS, förhindra oönskad spridning i hela kroppen en 12. Störning av blod-hjärnbarriären är en patologisk kännetecken för flera CNS-relaterade sjukdomar; därför att bedöma förhållandet mellan exogena ämnen med blod-hjärnbarriären är av stor betydelse och intresse.

Denna operation modell som…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Dr. Lei Chen (Icahn School of Medicine at Mount Sinai, NY) who first established the use of this model in our laboratory, and to Dr. Gretchen Wolff (German Cancer Research Center, Heidelberg, Germany) for disseminating the technique in our laboratory. Supported in part by HL126559, DA039576, MH098891, MH63022, MH072567, DA027569, and NSC 2015/17/B/NZ7/02985.

Materials

Anesthesia instrument Vetequip 901806
Surgical scissors Fine Science Tool 14558-09
Surgical forceps straight tip Fine Science Tool 00108-11
Surgical forceps angled tip Fine Science Tool 00109-11
Spring scissors Fine Science Tool 15000-08
Nylon suture Braintree Scientific SUT-S 104
Capillary tubing (Micro-Renathane 0.010” x 0.005” per ft.)  Braintree Scientific MRE01050
Closing suture VWR 95057-036
Isoflurane Piramal
2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride FisherScientific 50-121-8005

Riferimenti

  1. Chen, L., Swartz, K. R., Toborek, M. Vessel microport technique for applications in cerebrovascular research. J Neurosci Res. 87 (7), 1718-1727 (2009).
  2. Frisella, W. A., et al. Intracranial injection of recombinant adeno-associated virus improves cognitive function in a murine model of mucopolysaccharidosis type VII. Mol Ther. 3 (3), 351-358 (2001).
  3. Wei, L., Erinjeri, J. P., Rovainen, C. M., Woolsey, T. A. Collateral growth and angiogenesis around cortical stroke. Stroke. 32 (9), 2179-2184 (2001).
  4. Wu, G., et al. Targeted delivery of methotrexate to epidermal growth factor receptor-positive brain tumors by means of cetuximab (IMC-C225) dendrimer bioconjugates. Mol Cancer Ther. 5 (1), 52-59 (2006).
  5. Pignataro, G., Studer, F. E., Wilz, A., Simon, R. P., Boison, D. Neuroprotection in ischemic mouse brain induced by stem cell-derived brain implants. J Cereb Blood Flow Metab. 27 (5), 919-927 (2007).
  6. Sugiyama, Y., Kusuhara, H., Suzuki, H. Kinetic and biochemical analysis of carrier-mediated efflux of drugs through the blood-brain and blood-cerebrospinal fluid barriers: importance in the drug delivery to the brain. J Control Release. 62 (1-2), 179-186 (1999).
  7. Pardridge, W. M. Drug and gene delivery to the brain: the vascular route. Neuron. 36 (4), 555-558 (2002).
  8. Vantyghem, S. A., Postenka, C. O., Chambers, A. F. Estrous cycle influences organ-specific metastasis of B16F10 melanoma cells. Cancer Res. 63 (16), 4763-4765 (2003).
  9. Huang, R. Q., et al. Efficient gene delivery targeted to the brain using a transferrin-conjugated polyethyleneglycol-modified polyamidoamine dendrimer. FASEB J. 21 (4), 1117-1125 (2007).
  10. Liu, R., Martuza, R. L., Rabkin, S. D. Intracarotid delivery of oncolytic HSV vector G47Delta to metastatic breast cancer in the brain. Gene Ther. 12 (8), 647-654 (2005).
  11. Kumar, P., et al. Transvascular delivery of small interfering RNA to the central nervous system. Nature. 448 (7149), 39-43 (2007).
  12. Wrobel, J. K., Wolff, G., Xiao, R., Power, R. F., Toborek, M. Dietary Selenium Supplementation Modulates Growth of Brain Metastatic Tumors and Changes the Expression of Adhesion Molecules in Brain Microvessels. Biol Trace Elem Res. , (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Leda, A. R., Dygert, L., Bertrand, L., Toborek, M. Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery. J. Vis. Exp. (119), e54804, doi:10.3791/54804 (2017).

View Video