Summary

生物発光イメージングを使用した多剤耐性アシネトバクターバウマニバーン感染症のための抗菌ブルーライトセラピーのインビボでの調査

Published: April 28, 2017
doi:

Summary

Infections caused by multidrug-resistant (MDR) bacterial strains have emerged as a serious threat to public health, necessitating the development of alternative therapeutics. We present a protocol to evaluate the effectiveness of antimicrobial blue light (aBL) therapy for MDR Acinetobacter baumannii infections in mouse burns by using bioluminescence imaging.

Abstract

感染症は、罹患率と死亡率の重要な原因であり続けて焼きます。多剤耐性(MDR)細菌の増加出現は、従来の抗生物質治療の頻繁な故障につながっています。代替治療薬が緊急MDR細菌に取り組むために必要とされています。

革新的な非抗生物質のアプローチは、抗菌青色光(ABL)は、MDR感染に対する有望な効果を示しました。 ABLの作用のメカニズムはまだよく理解されていません。一般的に( 例えば 、鉄を含まポルフィリン、フラビンなど順番に光化学プロセスを経て、細胞傷害性活性酸素種(ROS)を生成ABLによって励起されて自然に細菌における内因性光増感発色団を発生すると仮定されています。

別の光系抗菌アプローチとは異なり、抗菌光線力学療法(APDT)は、ABLの治療は、外因性photosensitizの関与を必要としませんえー。それを有効にする必要があるすべては、青色光の照射です。そのため、それが簡単で安価です。 ABL受容体は、細菌における内因性細胞増感ではなく、DNAです。したがって、ABLは、直接宿主細胞におけるDNA損傷を引き起こす紫外線C(UVC)照射、より宿主細胞にはるかに少ない遺伝毒性であると考えられています。

本稿では、火傷のマウスモデルにおけるMDR アシネトバクターバウマニ感染症のためのABL療法の有効性を評価するためのプロトコルを提示します。設計生物発光菌株を使用することにより、我々は、非侵襲的に生きている動物で、リアルタイムでの感染の程度をモニターすることができました。この技術はまた、動物における感染の空間分布を監視するための有効なツールです。

Introduction

頻繁にあるため、皮膚熱傷の報告されたバーン感染は、罹患率と死亡率1の重要な原因であり続けます。火傷感染症の管理はさらにによる抗生物質の大規模な使用に多剤耐性(MDR)菌株2の増加出現によって侵害されています。一つの重要なMDRグラム陰性菌の最近の戦いの傷と関連することが知られており、ほぼすべての利用可能な抗生物質に耐性3ですアシネトバクターバウマニ 、です。負傷病巣におけるバイオフィルムの存在は5,4報告されており、持続感染8,9引き起こし、抗生物質および宿主防御6,7に対する耐性を悪化させると考えられています。したがって、pressinがありますグラム代替治療の開発のために必要。 抗生物質耐性菌と闘うための最近発表された国家戦略では、抗生物質に代わる治療法の開発は、米国10の政府によるアクションとして注目されています。

光系抗菌アプローチ、名前によって示されるように、または他の薬剤なしで光照射を必要とします。これらのアプローチは、抗菌光線力学療法(APDT)、紫外線C(UVC)照射、および抗菌青色光(ABL)が挙げられます。以前の研究では、彼らはMDR菌株11、12、13殺すに有望な有効性を示しています。 3つの光ベースのアプローチの中で、ABLは、光増感剤14を使用せずにその固有の抗菌特性により近年注目を高め集めています。比較例でAPDT光と光増感剤の組み合わせを必要とするAPDTにISON、ABLのみ、光の使用を含みます。したがって、ABLは、簡単で14安価です。 UVCと比較して、ABLは、はるかに少ない細胞毒性および細胞15をホストする遺伝毒性であると考えられています。

このプロトコルの目的は、マウスモデルにおいて、MDRのA.のバウマニによって引き起こされる熱傷感染症の治療のためのABLの有効性を検討することです。私たちは、リアルタイムで細菌負荷の非侵襲的な監視を可能火傷感染症の新しいマウスモデルを開発するために生物発光病原性細菌を使用しています。体液/組織サンプリング及びその後のメッキ及びコロニーが16カウントの従来の方法に比べて、この技術は、正確な結果を提供します。組織サンプリングのプロセスは、実験誤差の別のソースをもたらす可能性があります。細菌の発光強度はcorresに直線的に比例するので、細菌CFU 17滞水、我々が直接光照射の特定の投与後の細菌の生存率を測定することができます。リアルタイムで光治療を受けて生きている動物に細菌負荷を監視することにより、細菌殺害の動態は、マウスの大幅に削減された数を使用して特徴付けることができます。

Protocol

細菌培養物の調製ブレインハートインフュージョン(BHI)50mLの遠心管に培地7.5 mLを加え。シードのA.バウマンニの BHI培地中の細胞、その後は18時間オービタルインキュベーター(37℃)でのA.バウマンニ培養物をインキュベートします。 遠心機で5分間3,500×gでの細胞の培養、上清を除去し、そしてリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中でペレットを洗浄します。 新…

Representative Results

以前に12、17報告したように、我々は使用のA.バウマニ株は、MDR臨床分離株です。細菌株はluxCDABEオペラ 11のトランスフェクションによって生物発光を作りました。 図1Aは、代表的なマウスからの連続した細菌のルミネセンス画像が5×10 6 のA.バウマンニで感染燃焼お?…

Discussion

ABLは、感染症を治療するための新規な方法です。その作用機序は、化学療法とは全く異なっているので、それは理学療法の詳細です。抗菌効果を媒介する薬剤は、青色光照射(400から470 nm)です。青色LEDの開発により、我々は、MDR感染症のための効果的かつシンプルな光系抗菌アプローチへのアクセスを得ました。

このプロトコルでは、我々は、MDR、 のA.バウマニ</e…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the Center for Integration of Medicine and Innovative Technology (CIMIT) under the U.S. Army Medical Research Acquisition Activity Cooperative Agreement (CIMIT No. 14-1894 to TD) and the National Institutes of Health (1R21AI109172 to TD). YW was supported by an ASLMS Student Research Grant (BS.S02.15). We are grateful to Tayyaba Hasan, PhD at the Wellman Center for her co-mentorship for YW.

Materials

IVIS  PerkinElmer Inc, Waltham, MA IVIS Lumina Series III Pre-clinical in vivo imaging
Light-emitting diode LED VieLight Inc, Toronto, Canada  415 nm Light source for illumination
Power/energy meter Thorlabs, Inc., Newton, NJ PM100D Light irradiance detector
Mouse  Charles River Laboratories, Wilmington, MA BALB/c 7-8 weeks age, 17-19 g weight
Acinetobacter baumannii  Brooke Army Medical Center, Fort Sam Houston, TX Clinical isolate Engineered luminescent strain
Insulin Syringes Fisher Scientific 14-826-79 BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes for injection
Sodium Chloride Fisher Scientific 721016 0.9% Sodium Chloride
Phosphate Buffered Saline, 1X Solution Fisher Scientific BP24384  A standard phosphate buffer used in many biomolecular procedures
Brain Heart Infusion Fisher Scientific B11059 Bacterial culture medium
Falcon 15mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-70C For bacterial suspension centrifuge
Benchtop Incubated Orbital Shakers Laboratory Supply Network, Inc, Atkinson, NH  Incu-Shaker Mini For culturing of bacteria
Inoculating Loops Fisher Scientific 22-363-605   For smearing bacterial inoclum on burn surface of mice
Fisher Scientific Redi-Tip Pipet Tips, 1-200µL Fisher Scientific 02-707-502 Pipet Tips
Thermo Scientific Sorvall Legend X1 Centrifuge Fisher Scientific 75-004-220 For bacterial suspension seperation
Brass Block Small Parts, Inc., Miami, FL 10 mm by 10 mm  For creation of burns in mice
Extreme Dragon PBI/Kevlar High-Heat Gloves Superior Glove Works Ltd, Cheektowaga, NY PBI83514  Heat Resistant Gloves
Greiner dishes Sigma-Aldrich Co. LLC P5112-740EA 35 mm ×10 mm
Corning Digital Hot Plate Cole-Parmer Instrument Company, LLC UX-84301-65 10" x 10", 220 VAC, for boiling water 
Mouse/Rat Thin Line Water Heated Surgical Bed E-Z Systems EZ-211 Prevents heat loss and hypothermia during surgery

Riferimenti

  1. Gibran, N. S. Summary of the 2012 ABA Burn Quality Consensus conference. J Burn Care Res. 34 (4), 361-385 (2013).
  2. Sommer, R., Joachim, I., Wagner, S., Titz, A. New approaches to control infections: anti-biofilm strategies against gram-negative bacteria. Chimia (Aarau). 67 (4), 286-290 (2013).
  3. Peleg, A. Y., Seifert, H., Paterson, D. L. Acinetobacter baumannii: emergence of a successful pathogen. Clin Microbiol Rev. 21 (3), 538-582 (2008).
  4. Uppu, D. S. Amide side chain amphiphilic polymers disrupt surface established bacterial bio-films and protect mice from chronic Acinetobacter baumannii infection. Biomaterials. 74, 131-143 (2016).
  5. Schaber, J. A. Pseudomonas aeruginosa forms biofilms in acute infection independent of cell-to-cell signaling. Infect Immun. 75 (8), 3715-3721 (2007).
  6. Hoiby, N., Bjarnsholt, T., Givskov, M., Molin, S., Ciofu, O. Antibiotic resistance of bacterial biofilms. Int J Antimicrob Agents. 35 (4), 322-332 (2010).
  7. Lebeaux, D., Ghigo, J. M., Beloin, C. Biofilm-related infections: bridging the gap between clinical management and fundamental aspects of recalcitrance toward antibiotics. Microbiol Mol Biol Rev. 78 (3), 510-543 (2014).
  8. Akers, K. S. Biofilms and persistent wound infections in United States military trauma patients: a case-control analysis. BMC Infect Dis. 14, 190 (2014).
  9. Burmolle, M., et al. Biofilms in chronic infections – a matter of opportunity – monospecies biofilms in multispecies infections. FEMS Immunol Med Microbiol. 59 (3), 324-336 (2010).
  10. . National strategy on combating antibiotic-resistant bacteria Available from: https://www.whitehouse.gov/sites/default/files/docs/carb_national_strategy.pdf (2014)
  11. Dai, T. Photodynamic therapy for Acinetobacter baumannii burn infections in mice. Antimicrob Agents Chemother. 53 (9), 3929-3934 (2009).
  12. Zhang, Y. Antimicrobial blue light therapy for multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infection in a mouse burn model: implications for prophylaxis and treatment of combat-related wound infections. J Infect Dis. 209 (12), 1963-1971 (2014).
  13. Dai, T., et al. Ultraviolet C light for Acinetobacter baumannii wound infections in mice: potential use for battlefield wound decontamination?. J Trauma Acute Care Surg. 73 (3), 661-667 (2012).
  14. Dai, T. Blue light for infectious diseases: Propionibacterium acnes, Helicobacter pylori, and beyond?. Drug Resist Updat. 15 (4), 223-236 (2012).
  15. Yin, R. Light based anti-infectives: ultraviolet C irradiation, photodynamic therapy, blue light, and beyond. Curr Opin Pharmacol. 13 (5), 731-762 (2013).
  16. Haisma, E. M. Inflammatory and antimicrobial responses to methicillin-resistant Staphylococcus aureus in an in vitro wound infection model. PLoS One. 8 (12), e82800 (2013).
  17. Wang, Y. Antimicrobial Blue Light Inactivation of Gram-Negative Pathogens in Biofilms: In Vitro and In Vivo Studies. J Infect Dis. 213 (9), 1380-1387 (2016).
  18. Chen, D., Shen, Y., Huang, Z., Li, B., Xie, S. Light-Emitting Diode-Based Illumination System for In Vitro Photodynamic Therapy. Int J Photoenergy. 2012 (2), (2012).
  19. Demidova, T. N., Gad, F., Zahra, T., Francis, K. P., Hamblin, M. R. Monitoring photodynamic therapy of localized infections by bioluminescence imaging of genetically engineered bacteria. J Photochem Photobiol B. 81 (1), 15-25 (2005).
  20. Hamblin, M. R., Zahra, T., Contag, C. H., McManus, A. T., Hasan, T. Optical monitoring and treatment of potentially lethal wound infections in vivo. J Infect Dis. 187 (11), 1717-1725 (2003).
  21. Rowan, M. P. Burn wound healing and treatment: review and advancements. Critical Care. 19, 243 (2015).
  22. Marx, D. E., Barillo, D. J. Silver in medicine: The basic science. Burns. 40 (Supplement 1), S9-S18 (2014).
  23. Heyneman, A., Hoeksema, H., Vandekerckhove, D., Pirayesh, A., Monstrey, S. The role of silver sulphadiazine in the conservative treatment of partial thickness burn wounds: A systematic review. Burns. 42 (7), 1377-1386 (2016).
  24. Roberts, J. A. Individualised antibiotic dosing for patients who are critically ill: challenges and potential solutions. Lancet Infect Dis. 14 (6), 498-509 (2014).
  25. Dai, T. Blue light eliminates community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus in infected mouse skin abrasions. Photomed Laser Surg. 31 (11), 531-538 (2013).
  26. Uppu, D. S. Amide side chain amphiphilic polymers disrupt surface established bacterial bio-films and protect mice from chronic Acinetobacter baumannii infection. Biomaterials. 74, 131-143 (2016).
  27. Donlan, R. M., Costerton, J. W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin Microbiol Rev. 15 (2), 167-193 (2002).
  28. Olsen, I. Biofilm-specific antibiotic tolerance and resistance. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. , (2015).
  29. Song, H. H. Phototoxic effect of blue light on the planktonic and biofilm state of anaerobic periodontal pathogens. J Periodontal Implant Sci. 43 (2), 72-78 (2013).
  30. Rosa, L. P., da Silva, F. C., Viana, M. S., Meira, G. A. In vitro effectiveness of 455-nm blue LED to reduce the load of Staphylococcus aureus and Candida albicans biofilms in compact bone tissue. Lasers Med Sci. 31 (1), 27-32 (2015).
  31. Guffey, J. S., Wilborn, J. In vitro bactericidal effects of 405-nm and 470-nm blue light. Photomed Laser Surg. 24 (6), 684-688 (2006).
  32. Enwemeka, C. S., Williams, D., Enwemeka, S. K., Hollosi, S., Yens, D. Blue 470-nm light kills methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in vitro. Photomed Laser Surg. 27 (2), 221-226 (2009).
  33. Bumah, V. V., Masson-Meyers, D. S., Cashin, S. E., Enwemeka, C. S. Wavelength and bacterial density influence the bactericidal effect of blue light on methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Photomed Laser Surg. 31 (11), 547-553 (2013).
  34. Maclean, M., MacGregor, S. J., Anderson, J. G., Woolsey, G. Inactivation of bacterial pathogens following exposure to light from a 405-nanometer light-emitting diode array. Appl Environ Microbiol. 75 (7), 1932-1937 (2009).
  35. Kim, M. Optical lens-microneedle array for percutaneous light delivery. Biomedical Optics Express. 7 (1o), 4220-4227 (2016).
check_url/it/54997?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wang, Y., Harrington, O. D., Wang, Y., Murray, C. K., Hamblin, M. R., Dai, T. In Vivo Investigation of Antimicrobial Blue Light Therapy for Multidrug-resistant Acinetobacter baumannii Burn Infections Using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (122), e54997, doi:10.3791/54997 (2017).

View Video