Summary

Ett syngent musmodell av metastaserad njurcellscancer för kvantitativ och Longitudinal Bedömning av Prekliniska terapier

Published: April 12, 2017
doi:

Summary

Genomförande av en ortotopisk modell av njurcellscancer i immunkompetenta möss ger utredaren en kliniskt relevanta system definieras av närvaron av en primär njurtumör och lungmetastaser i samma djur. Detta system kan användas för att prekliniskt testa en mängd olika behandlingar in vivo.

Abstract

Njurcellscancer (RCC) drabbar> 60.000 människor i USA varje år, och ~ 30% av RCC-patienter har flera metastaser vid tidpunkten för diagnos. Metastaserande RCC (mRCC) är obotlig, med en medianöverlevnadstid av endast 18 månader. Immunbaserade interventioner (t ex interferon (IFN) och interleukin (IL) -2) inducerar varaktiga responser i en fraktion av MRCC patienter och multikinashämmare (t.ex. sunitinib eller sorafenib) eller anti-VEGF-receptor monoklonala antikroppar (mAb) är till stor del palliativ som kompletta remission är sällsynta. Sådana brister i nuvarande terapier för MRCC patienter ger den logiska grunden för utveckling av nya behandlingsprotokoll. En nyckelkomponent i den prekliniska testning av nya terapier för mRCC är en lämplig djurmodell. Nyttiga funktioner som rekapitulera människans villkor inkluderar en primär njurtumör, njurtumörmetastaser, och ett intakt immunsystem för att undersöka någon terapi driven immun effector svar och bildningen av tumörframkallad immunosuppressiva faktorer. Denna rapport beskriver en orthotopic mRCC musmodell som har alla dessa egenskaper. Vi beskriver en intrarenal implanteringstekniken genom att använda musen renal adenokarcinom cellinje Renca, följt av bedömning av tumörtillväxt i njuren (primärt ställe) och lungorna (metastatisk språk).

Introduction

Njurcellskarcinom (RCC) står för huvuddelen av maligna njur neoplasmer och ungefär 3% av alla vuxna maligniteter världen över ett, två. Grund av brist på symptom, fel diagnos, och otillräckliga screening verktyg för RCC, kommer nästan 30% av patienterna presentera med metastaserad RCC (mRCC) vid tidpunkten för diagnos, med ytterligare 20-30% av patienterna som fortskrider till en metastatisk stadium två. Dessa fall resulterar i ~ 13.500 dödsfall årligen 1, 3. Även om tidigare upptäckt och behandling av primär RCC har förbättrats, hastigheten för RCC relaterat dödsfall fortsätter att öka, vilket antyder att metastatisk sjukdom är till stor del ansvarig för dödlighet 3. Terapi utveckling för RCC har utvecklats under det senaste decenniet med upptäckten och genomförande av riktade behandlingar och immunterapi. Tyvärr progressionsfri survival och total överlevnad av avancerade fall är fortfarande väl under 2 år för majoriteten av patienterna 4, 5, 6. Denna statistik motiverar behovet av ytterligare forskning om identifiering och utveckling av effektiva behandlingar för RCC. Att på lämpligt sätt föra terapeutiska ingrepp för MRCC först behövs translationellt relevanta prekliniska modeller av sjukdomen.

Utveckling av en relevant och konsekvent modell för att rekapitulera det mänskliga tillståndet av avancerad RCC bör ta itu med flera viktiga frågor: 1) är den modell anatomiskt relevant; 2) Har tumör framsteg på liknande sätt som den humana patologin; 3) Gör metastaser uppstår från den primära tumören; och 4) Kan primär och metastatisk tumörprogression följas över tid? Beroende på vilken typ av behandling som undersöks, mus RCC tumörcellinjer, humana RCC tumörcellinjer och humana RCC patienten härledda xenogflottar kan användas i immunkompetenta eller immundefekta möss. En värd med ett intakt och funktionellt immunsystem krävs för de studier som utvärderar någon aspekt av immunterapi, nödvändiggör användning av den väl beskrivna Renca cellinje härledd från en spontan renal adenokarcinom i Balb / c-möss 7. De flesta studier injicera RENCA-celler subkutant (sc), som bildar en enkel att mått lokal tumör eller intravenöst (iv) i Balb / c-möss för att producera experimentella lung "metastaser" 8, 9, 10, 11, 12. Användning av en sc-implanterat Renca tumör för att modellera humana RCC har ett antal begränsningar, inklusive felaktig innervation av vaskulatur 13, skillnader i mikromiljö 14, 15, och en brist av organ- / tumörcell Communication 13, 16. Dessutom är det många sc tumörer (särskilt Renca) inte metastasera till distala organ, hämmar studiet av en händelse som är ett vanligt kliniskt kännetecken 17. Att studera MRCC kan RENCA-celler injiceras iv att etablera tumörbördan i lungorna, den primära platsen för metastaser i RCC patienter. Iv-injektion metod att initiera metastatiska tumörer, dock inte tillåter undersökning av hur, när, eller varför cellerna har migrerat från den primära organet (dvs njure) till den avlägsna platsen. En modell med både primära och metastatisk sjukdom tydligt i samma djur är avgörande för att studera utvecklingen och behandling av framskriden sjukdom, särskilt med tanke på att metastaser är vanligen orsaken till dödlighet hos dessa patienter.

Vårt laboratorium har utvecklat en musmodell av mRCC som innehåller alla de funktioner som beskrivs ovan. Att etablera primary, ortotopiska tumörer, är Renca celler implanteras direkt i njuren hos djuret genom den genomskinliga bukhinnan. Ett litet snitt i den vänstra flanken möjliggör visualisering av mjälten (som ett landmärke) och den vänstra njuren. Med användning av en liten nål, är Renca-tumörceller injiceras direkt i njuren genom peritoneum för orthotopic implantation. Jämfört med andra metoder för implantering av RENCA-celler under njurkapseln 18, denna metod för implantering tillåter en högre genomströmning, eftersom det är ganska icke-invasiv, inte kräver suturering, är av en låg smärt klass, och är tidseffektivt när tränad.

Denna väl karaktäriserade modellresultat i reproducerbar primär tumörbörda (~ 99% utnyttjandegrad) i den injicerade njuren samt metastatisk tumörbelastning i lungorna. De stora fördelarna med denna modell inkluderar dess syngena natur, vilket möjliggör immunterapi undersökningar; dess spontana metastaser, att studera ettVANCERADE sjukdom; och dess orthotopic implantation, för att modellera den anatomiska inverkan på sjukdomsförloppet och behandling. Terapier som syftar till att rikta RCC skulle ha stor nytta av användningen av denna modell under preklinisk utveckling.

Protocol

Följande protokoll beskriver ett experimentellt förfarande för inducering och övervakning av tillväxten av experimentella ortotopiska njurtumörer och eventuella spontana metastaser. Alla följande procedurer görs i enlighet med institutionella riktlinjer och godkända förfaranden för human användning av försöksdjur. 1. Underhåll av cellinjer Upprätthålla murin renal adenokarcinom cellinje, Renca, i Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640-medium kompletterat med 10% fetalt kalvserum …

Representative Results

Den framgångsrika implantation av RENCA-celler resulterar i tumörutveckling i njuren och metastasering till lungorna hos möss. Efter excision av tumörbärande och de kontralaterala njurar, var våta vävnadsvikter (g) mättes för att demonstrera tumörbördan baserat på ökad vikt (Figur 1). Renca-tumörer kan identifieras genom immunhistokemi genom cytokeratin 8 och 18 färgning (figur 2). För longitudinella studier gjordes en luciferas-utt…

Discussion

Vi presenterar ett protokoll för en ortotopisk RCC musmodell. Implantation av mus renala adenokarcinom tumörceller i musens njure ger en kliniskt relevant modell av mRCC. Denna modell resulterar i en primärtumör i njuren och fjärrmetastaser i lungorna, som båda är kännetecken för avancerad RCC. Den beskrivning som presenteras häri är specifikt för Renca-cellinjen hos immunkompetenta Balb / c-möss. Med hjälp av denna ortotopisk modell har vi visat att Renca-tumörer är mottagliga för immunterapi, vilket v…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats med bidrag från National Cancer Institute (R15CA173657 till AW och R01CA109446 till GTS), Simmons Cancer Institute (till AW), och University of Minnestoa Klättra 4 Kidney Cancer Foundation (till GTS). Vi tackar Dr Kristin Anderson för att få hjälp med immunofluorescens.

Materials

Artificial tears ophthalmic ointment Akorn NDC 17478-162-35
Vetbond Tissue Adhesive 3M CBGBIW011019
Betadine Solution (Povidone-iodine, 5%) Purdue Products, L.P. NDC 67618-155-32
0.25% Marcaine (bupivavaine HCL injection) Hospira 0409-1587-50 
Heating pad Sunbeam
Syringes BD 309659
Gauze Venture 908291
Ketamine Phoenix Pharmaceuticals NDC 57319-609-02
Xylazine  Akorn NDC 59399-111
Hank’s Balanced Salts Sigma-Aldrich H2387
IVIS Caliper
D-Luciferin, Potassium Salt GoldBio LUCK-1G
India Ink Chartpak Inc 44201
Scissors
Forceps
Sleeping Beauty (SB) transposon system Neuromics SBT0200
Renca ATCC CRL-2947

Riferimenti

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics. CA Cancer J. Clin. 66, 7-30 (2016).
  2. Chow, W. H., Dong, L. M., Devesa, S. S. Epidemiology and risk factors for kidney cancer. Nat. Rev. Urol. 7, 245-257 (2010).
  3. Hollingsworth, J. M., Miller, D. C., Daignault, S., Hollenbeck, B. K. Rising incidence of small renal masses: a need to reassess treatment effect. J. Natl. Cancer Inst. 98, 1331-1334 (2006).
  4. Lee-Ying, R., Lester, R., Heng, D. Current management and future perspectives of metastatic renal cell carcinoma. Int. J. Urol. 21, 847-855 (2014).
  5. Rini, B. I. New strategies in kidney cancer: therapeutic advances through understanding the molecular basis of response and resistance. Clin. Cancer Res. 16, 1348-1354 (2010).
  6. Acquavella, N., Fojo, T. Renal cell carcinoma: trying but failing to improve the only curative therapy. J. Immunother. 36, 459-461 (2013).
  7. Salup, R. R., Wiltrout, R. H. Adjuvant immunotherapy of established murine renal cancer by interleukin 2-stimulated cytotoxic lymphocytes. Cancer Res. 46, 3358-3363 (1986).
  8. Ko, J. S., et al. Direct and differential suppression of myeloid-derived suppressor cell subsets by sunitinib is compartmentally constrained. Cancer Res. 70, 3526-3536 (2010).
  9. Kusmartsev, S., et al. Oxidative stress regulates expression of VEGFR1 in myeloid cells: link to tumor-induced immune suppression in renal cell carcinoma. J. Immunol. 181, 346-353 (2008).
  10. Rocha, F. G., et al. Endostatin gene therapy enhances the efficacy of IL-2 in suppressing metastatic renal cell carcinoma in mice. Cancer Immunol. Immunother. 59, 1357-1365 (2010).
  11. Shanker, A., et al. Treating metastatic solid tumors with bortezomib and a tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand receptor agonist antibody. J. Natl. Cancer Inst. 100, 649-662 (2008).
  12. VanOosten, R. L., Griffith, T. S. Activation of tumor-specific CD8+ T Cells after intratumoral Ad5-TRAIL/CpG oligodeoxynucleotide combination therapy. Cancer Res. 67, 11980-11990 (2007).
  13. Bibby, M. C. Orthotopic models of cancer for preclinical drug evaluation: advantages and disadvantages. Eur. J. Cancer. 40, 852-857 (2004).
  14. Devaud, C., et al. Tissues in different anatomical sites can sculpt and vary the tumor microenvironment to affect responses to therapy. Mol. Ther. 22, 18-27 (2014).
  15. Devaud, C., et al. Differential potency of regulatory T cell-mediated immunosuppression in kidney tumors compared to subcutaneous tumors. Oncoimmunology. 3, 963395 (2014).
  16. Devaud, C., et al. Cross-talk between tumors can affect responses to therapy. Oncoimmunology. 4, 975572 (2015).
  17. Norian, L. A., et al. Eradication of metastatic renal cell carcinoma after adenovirus-encoded TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL)/CpG immunotherapy. PLoS One. 7, 31085 (2012).
  18. Matin, S. F., et al. Immunological response to renal cryoablation in an in vivo orthotopic renal cell carcinoma murine model. J. Urol. 183, 333-338 (2010).
  19. Wilber, A., et al. RNA as a source of transposase for Sleeping Beauty-mediated gene insertion and expression in somatic cells and tissues. Mol. Ther. 13, 625-630 (2006).
  20. Lim, E., Modi, K. D., Kim, J. In vivo bioluminescent imaging of mammary tumors using IVIS spectrum. J. Vis. Exp. , (2009).
  21. Skrypnyk, N. I., Harris, R. C., de Caestecker, M. P. Ischemia-reperfusion model of acute kidney injury and post injury fibrosis in mice. J Vis Exp. , (2013).
  22. Zimmerman, M., Hu, X., Liu, K. Experimental metastasis and CTL adoptive transfer immunotherapy mouse. J. Vis. Exp. , (2010).
  23. Wexler, H. Accurate identification of experimental pulmonary metastases. J. Natl. Cancer Inst. 36, 641-645 (1966).
  24. James, B. R., et al. CpG-mediated modulation of MDSC contributes to the efficacy of Ad5-TRAIL therapy against renal cell carcinoma. Cancer Immunol. Immunother. 63, 1213-1227 (2014).
  25. James, B. R., Brincks, E. L., Kucaba, T. A., Boon, L., Griffith, T. S. Effective TRAIL-based immunotherapy requires both plasmacytoid and CD8a DC. Cancer Immunol. Immunother. 63, 685-697 (2014).
  26. James, B. R., et al. Diet-induced obesity alters dendritic cell function in the presence and absence of tumor growth. J. Immunol. 189, 1311-1321 (2012).
  27. Brincks, E. L., et al. Triptolide enhances the tumoricidal activity of TRAIL against renal cell carcinoma. FEBS J. 282, 4747-4765 (2015).
  28. Anderson, K. G., et al. Cutting edge: intravascular staining redefines lung CD8 T cell responses. J. Immunol. 189, 2702-2706 (2012).
  29. Anderson, K. G., et al. Intravascular staining for discrimination of vascular and tissue leukocytes. Nat. Protocols. 9, 209-222 (2014).
check_url/it/55080?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Murphy, K. A., James, B. R., Wilber, A., Griffith, T. S. A Syngeneic Mouse Model of Metastatic Renal Cell Carcinoma for Quantitative and Longitudinal Assessment of Preclinical Therapies. J. Vis. Exp. (122), e55080, doi:10.3791/55080 (2017).

View Video