Summary

Analyse Effets bénéfiques des suppléments nutritionnels sur les fonctions épithéliales intestinales barrière Pendant Experimental Colite

Published: January 05, 2017
doi:

Summary

Les traitements actuels des maladies inflammatoires de l'intestin (MICI) visent à soulager les symptômes de la maladie, mais peuvent entraîner des effets secondaires graves. Ainsi, les stratégies alternatives sont à l'étude dans les modèles de colite animales. Ici, nous expliquons comment les effets bénéfiques de compléments alimentaires sur les signes cliniques MII sont analysés dans un tel modèle de colite.

Abstract

les maladies inflammatoires de l'intestin (MICI), y compris la maladie de Crohn et la rectocolite hémorragique, sont des troubles chroniques récidivantes de l'intestin. Ils causent des problèmes graves, tels que des crampes abdominales, une diarrhée sanglante, et la perte de poids, chez les personnes touchées. Malheureusement, il n'y a pas encore de traitement, et les traitements ne visent à soulager les symptômes. Les traitements actuels comprennent des médicaments anti-inflammatoires et immunosuppresseurs qui peuvent provoquer des effets secondaires graves. Ceci justifie la recherche d'autres options de traitement, tels que les suppléments nutritionnels, qui ne causent pas d'effets secondaires. Avant leur application dans des études cliniques, de tels composés doivent être rigoureusement testés pour l'efficacité et la sécurité dans les modèles animaux. Un modèle expérimental fiable est le sulfate de dextrane sodique (DSS), le modèle de colite chez des souris, qui reproduit un grand nombre de signes cliniques de la rectocolite hémorragique chez l'homme. Nous avons récemment appliqué ce modèle pour tester les effets bénéfiques d'un supplément nutritionnel contenantles vitamines C et E, L-arginine, et les acides gras poly-insaturés © 3 (PUFA). Nous avons analysé les différents paramètres de la maladie et a constaté que ce supplément a été en mesure d'améliorer la formation de l'œdème, des lésions tissulaires, l'infiltration leucocytaire, le stress oxydatif, et la production de cytokines pro-inflammatoires, conduisant à une amélioration globale de l'indice d'activité de la maladie. Dans cet article, nous expliquons en détail l'application correcte des suppléments nutritionnels en utilisant le modèle de la colite DSS C57BL / 6 souris, ainsi que la façon dont les paramètres de la maladie tels que l'histologie, le stress oxydatif et l'inflammation sont évalués. L'analyse des effets bénéfiques de différents compléments alimentaires peut alors éventuellement ouvrir de nouvelles voies pour le développement de stratégies alternatives de traitement qui atténuent les symptômes de MII et / ou qui prolongent les phases de rémission sans provoquer d'effets secondaires graves.

Introduction

Colite est une maladie inflammatoire du côlon qui peut causer de la diarrhée et des douleurs abdominales. Rectocolite peut être aiguë, en réponse à une infection ou à un stress, ou il peut se développer une maladie chronique, telle que la colite ulcéreuse (CU), qui appartient au groupe des maladies inflammatoires de l'intestin (MICI). Bien que les signes cliniques de l' UC ont été bien décrits, la pathogenèse est encore mal comprise 1. Il est admis parmi les experts que les communications unifiées est une maladie multifactorielle, avec des mutations génétiques et des réponses immunitaires aberrantes qui jouent un rôle majeur 2. Cependant, les facteurs environnementaux, tels que le style de vie et la nutrition, contribuent également au développement de la maladie et la progression 3.

Malheureusement, l'IBD est pas curable, mais il y a beaucoup d'options de traitement qui visent à atténuer les symptômes cliniques. Les traitements actuels comprennent des médicaments anti-inflammatoires, tels que la sulfasalazine et les corticostéroïdes; les immunosuppresseurs, tels que azathioprine; des anticorps monoclonaux qui capturent les cytokines pro-inflammatoires telles que le facteur onconécrosant-α (TNF-α) ou des molécules d'adhésion de blocs, telles que les intégrines, afin de réduire le recrutement leucocytaire excessif; et les inhibiteurs ciblant les kinases qui déclenchent des voies pro-inflammatoires, telles que la kinase Janus (JAK) 4. Pas tous les patients répondent à tous les traitements, de sorte que les stratégies thérapeutiques doivent être individualisées 5. En outre, la plupart de ces médicaments thérapeutiques interférer avec le métabolisme et les réponses immunitaires, ce qui provoque souvent des effets secondaires graves. Pour cette raison, les options de traitement alternatives ont été étudiées.

Les traitements alternatifs comprennent les probiotiques et les suppléments nutritionnels, qui ont été appliquées dans des modèles animaux et des essais cliniques avec des niveaux variables de succès 6,7. Nous avons récemment découvert que l'application de différents suppléments nutritionnels uniques, tels que les vitamines antioxydantes ou les acides gras ω3-poly-insaturés (PENM), est inférieure à l'application d'une combinaison de tels suppléments pour soulager les symptômes de colite et de maladies cardiovasculaires 8,9. Ces études ont été réalisées chez la souris, de sorte que les études cliniques doivent être effectuées chez les humains afin de déterminer si ces résultats seront également applicables à l'homme. Avant les études cliniques sont lancées, l'efficacité et la sécurité des nouvelles options de traitement doivent être évalués dans des modèles animaux.

Pour les MII, le (DSS) modèle du sulfate de dextran de sodium a été largement utilisé pour étudier les mécanismes de développement de la maladie et les effets bénéfiques des médicaments et des suppléments nutritionnels 6,10. Dans la plupart des études, seule une maladie aiguë au cours d'une période de sept jours est induite; néanmoins, les signes cliniques observés chez ces animaux ressemblent étroitement à celles observées chez les patients MICI (c. -à- diarrhée sanglante, la perte de poids, dysfonction épithéliale, et l' infiltration des cellules immunitaires) 10. DSS induit des érosions dans la muqueuse,entraînant un dysfonctionnement de la barrière et une augmentation de la perméabilité épithéliale intestinale 11. Le mécanisme exact reste inconnu. Cependant, une étude suggère que le MAS interagit avec des acides à chaîne moyenne longueur gras pour former des nano-lipocomplexes qui sont capables de pénétrer dans les cellules épithéliales et pour induire la signalisation inflammatoire pathways 12. Dans cet article, nous décrivons en détail comment colite est induite et analysé chez la souris, comment les suppléments nutritionnels sont appliqués par gavage pour assurer un dosage constant dans chaque animal, et comment les effets de ces suppléments sur divers symptômes de colite sont examinés.

Protocol

Toutes les expériences sur les animaux ont été approuvés par le soin et l'utilisation des animaux Commission institutionnelle du Cinvestav. 1. Préparation du DSS eau potable et de l'induction de la colite Préparer un 3,5% p / v de sulfate de dextrane sodique (DSS) dans de l'eau potable autoclavée. DSS se dissout facilement et il n'a pas été nécessaire de filtrer la solution finale. NOTE: 7 jours de traitement DSS induit une colite sévère. Si l'induction de colite…

Representative Results

Diet suppléments peuvent protéger du DSS Colite des suppléments diététiques anti-inflammatoires et anti-oxydants tels que la vitamine C, la vitamine E, l'oxyde nitrique (NO) -source L-arginine, et les acides gras co3 poly-insaturés (co3-PUFA), ont été utilisés avec un succès variable dans l'animal modèles pour atténuer les signes de maladies inflammatoires 3,6,15. La malnutrition, le stress oxydatif…

Discussion

Afin d'utiliser des suppléments nutritionnels dans les études cliniques, les avantages et la sécurité de ces suppléments doivent être soigneusement évalués in vivo dans des études animales. Dans le cas de colite, plusieurs modèles animaux appropriés qui ressemblent aux signes cliniques de MII ont été établis, y compris les modèles chimiques à l'aide de DSS, TNBS, ou l'acide acétique; knock-out (KO) des modèles tels que IL10-KO; et la colite immunitaire à médiation cellulaire en u…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par des subventions du Conseil mexicain pour la science et la technologie (Conacyt, 207268 et 233395 à Michael Schnoor). KFCO est récipiendaire d'une bourse Conacyt (396,260) pour obtenir un diplôme MSc.

Materials

0.3% of gelatin  Bioxon 158
10% formaldehyde J.T. Baker 2106-03
96-well plate with flat bottom Corning 3368
Absolute ethanol  J.T. Baker 9000-03
Absolute xylene J.T. Baker 9490-03
ABTS Sigma Aldrich H5882
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich 9048-46-8
ColoScreen Helena Laboratories 5072
Corabion (Kindly provided by Merck, Naucalpan, Mexico) Merck
Dextran Sulfate Sodium Salt Affymetrix 9011-18-1 (M.W. 40,000-50,000)
Dihydroethidium Life Technology D11347
Eosin-Y  J.T. Baker L087-03
Evans blue Sigma-Aldrich 314-13-6
Feeding  needle Cadence Science Inc. 9921
Glass slide rack with handle Electron Microscopy 70312-16
Glass Slides Corning 2947
Harris hematoxylin  Sigma-Aldrich H3136
Hexadecyltrimethyammonium (HTAB) Sigma Aldrich H6269
Histosette (Embedding cassette) Simport M498.2
Hydrochloric acid 1 M J.T. Baker 9535-62
Hydrogen peroxide Sigma Aldrich H3410
Ketamine PiSA Agropecuaria Q-7833-028
Liquid paraffin  Paraplast 39501-006
Lithium carbonate  Sigma-Aldrich 2362
N,N-dimethylformamide J.T. Baker 68-12-2
N-acetylcysteine Sigma-Aldrich A9165
Plastic cubes Electron Microscopy 70181
Poly-L-Lysine Solution Sigma-Aldrich 25988-63-0
Prism 5 statistical software GraphPad Software Prism 5
Saline Solution 0.9% NaCl CS PiSA Q-7833-009
Sodium citrate Sigma-Aldrich W302600
Synthetic resin  Poly Mont 7987
Taq DNA polymerase Invitrogen 11615-010
Tissue-tek. O.C.T Compound Sakura Finetek 4583
Tuberculine Syringe BD Plastipak 305945
Tween 20 Sigma-Aldrich 9005-64-5
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPI Vector Laboratories H-1200
Xylazine PiSA Agropecuaria Q-7833-099

Riferimenti

  1. Souza, H. S., Fiocchi, C. Immunopathogenesis of IBD: current state of the art. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13, 13-27 (2016).
  2. Xavier, R. J., Podolsky, D. K. Unravelling the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature. 448, 427-434 (2007).
  3. Neuman, M. G., Nanau, R. M. Inflammatory bowel disease: role of diet, microbiota, life style. Transl Res. 160, 29-44 (2011).
  4. Lowenberg, M., D’Haens, G. Next-Generation Therapeutics for IBD. Current Gastroenterol Rep. 17, 21 (2015).
  5. Bernstein, C. N. Does everyone with inflammatory bowel disease need to be treated with combination therapy. Curr Opin Gastroenterol. , (2016).
  6. Nanau, R. M., Neuman, M. G. Nutritional and probiotic supplementation in colitis models. Dig Dis Sci. 57, 2786-2810 (2012).
  7. Yamamoto, T. Nutrition and diet in inflammatory bowel disease. Curr Opin Gastroenterol. 29, 216-221 (2013).
  8. Vargas Robles, H., et al. Experimental Colitis Is Attenuated by Cardioprotective Diet Supplementation That Reduces Oxidative Stress, Inflammation, and Mucosal Damage. Ox Med Cell Longev. , 8473242 (2016).
  9. Vargas-Robles, H., Rios, A., Arellano-Mendoza, M., Escalante, B. A., Schnoor, M. Antioxidative diet supplementation reverses high-fat diet-induced increases of cardiovascular risk factors in mice. Ox Med Cell Longev. 2015, 467471 (2015).
  10. Perse, M., Cerar, A. Dextran sodium sulphate colitis mouse model: traps and tricks. J Biomed Biotechnol. 2012, 718617 (2012).
  11. Chassaing, B., Aitken, J. D., Malleshappa, M., Vijay-Kumar, M. Dextran sulfate sodium (DSS)-induced colitis in mice. Curr. Protoc. Immunol. 104, 25 (2014).
  12. Laroui, H., et al. Dextran sodium sulfate (DSS) induces colitis in mice by forming nano-lipocomplexes with medium-chain-length fatty acids in the colon. PLoS One. 7, 32084 (2009).
  13. Mennigen, R., et al. Probiotic mixture VSL#3 protects the epithelial barrier by maintaining tight junction protein expression and preventing apoptosis in a murine model of colitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296, 1140-1149 (2009).
  14. Park, C. M., Reid, P. E., Walker, D. C., MacPherson, B. R. A simple, practical ‘swiss roll’ method of preparing tissues for paraffin or methacrylate embedding. J Microsc. 145, 115-120 (1987).
  15. Shen, W., Gaskins, H. R., McIntosh, M. K. Influence of dietary fat on intestinal microbes, inflammation, barrier function and metabolic outcomes. J Nutr Biochem. , (2013).
  16. Bruewer, M., et al. Interferon-gamma induces internalization of epithelial tight junction proteins via a macropinocytosis-like process. FASEB J. 19, 923-933 (2005).
  17. Fournier, B. M., Parkos, C. A. The role of neutrophils during intestinal inflammation. Muc Immunol. 5, 354-366 (2012).
  18. Yan, Y., et al. Temporal and spatial analysis of clinical and molecular parameters in dextran sodium sulfate induced colitis. PLoS One. 4, 6073 (2009).
  19. Maxwell, J. R., Viney, J. L. Overview of mouse models of inflammatory bowel disease and their use in drug discovery. Curr Prot Pharmacol, S.J. Enna. , (2009).
  20. Ostanin, D. V., et al. T cell transfer model of chronic colitis: concepts, considerations, and tricks of the trade. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 296, 135-146 (2009).
  21. Randhawa, P. K., Singh, K., Singh, N., Jaggi, A. S. A review on chemical-induced inflammatory bowel disease models in rodents. Kor J Physiol Pharmacol. 18, 279-288 (2014).
  22. Whittem, C. G., Williams, A. D., Williams, C. S. Murine Colitis modeling using Dextran Sulfate Sodium (DSS). JoVE. , (2010).
  23. Wirtz, S., Neufert, C., Weigmann, B., Neurath, M. F. Chemically induced mouse models of intestinal inflammation. Nat Prot. 2, 541-546 (2007).
  24. Naydenov, N. G., et al. Nonmuscle Myosin IIA Regulates Intestinal Epithelial Barrier in vivo and Plays a Protective Role During Experimental Colitis. Sci Rep. 6, 24161 (2016).
  25. Sumagin, R., Robin, A. Z., Nusrat, A., Parkos, C. A. Transmigrated neutrophils in the intestinal lumen engage ICAM-1 to regulate the epithelial barrier and neutrophil recruitment. Muc Immunol. 7, 905-915 (2014).
  26. Laukoetter, M. G., et al. JAM-A regulates permeability and inflammation in the intestine in vivo. J Exp Med. 204, 3067-3076 (2007).
  27. Viennois, E., Chen, F., Laroui, H., Baker, M. T., Merlin, D. Dextran sodium sulfate inhibits the activities of both polymerase and reverse transcriptase: lithium chloride purification, a rapid and efficient technique to purify RNA. BMC Res Notes. 6, 360 (2013).
check_url/it/55095?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Vargas Robles, H., Castro Ochoa, K. F., Nava, P., Silva Olivares, A., Shibayama, M., Schnoor, M. Analyzing Beneficial Effects of Nutritional Supplements on Intestinal Epithelial Barrier Functions During Experimental Colitis. J. Vis. Exp. (119), e55095, doi:10.3791/55095 (2017).

View Video