Summary

Aktivering Autophagy av Aerobic Exercise i Mus

Published: February 03, 2017
doi:

Summary

Autophagy aktivering er nyttig i forebygging av en rekke sykdommer. En av de fysiologiske fremgangsmåter for å indusere autophagy in vivo er fysisk trening. Her viser vi hvordan du kan aktivere autofagi av aerob trening og måle autofagi nivåer i mus.

Abstract

Autophagy is a lysosomal degradation pathway essential for cell homeostasis, function and differentiation. Under stress conditions, autophagy is induced and targets various cargos, such as bulk cytosol, damaged organelles and misfolded proteins, for degradation in lysosomes. Resulting nutrient molecules are recycled back to the cytosol for new protein synthesis and ATP production. Upregulation of autophagy has beneficial effects against the pathogenesis of many diseases, and pharmacological and physiological strategies to activate autophagy have been reported. Aerobic exercise is recently identified as an efficient autophagy inducer in multiple organs in mice, including muscle, liver, heart and brain. Here we show procedures to induce autophagy in vivo by either forced treadmill exercise or voluntary wheel running. We also demonstrate microscopic and biochemical methods to quantitatively analyze autophagy levels in mouse tissues, using the marker proteins LC3 and p62 that are transported to and degraded in lysosomes along with autophagosomes.

Introduction

Autophagy er en evolusjonært konservert degradering veien, som blir indusert i respons til forskjellige stressbetingelser som sult og hypoksi 1, 2. Under autofagi, dobbel-membran vesikler, kalt autophagosomes, innlemme unødvendige eller skadde subcellulære komponenter og transportere dem til lysosomer for degradering tre. Basal autofagi er viktig for cellulær funksjon og utvikling organisme, og svekket basal autophagy er innblandet i mange lidelser, inkludert nevrodegenerasjon, tumorigenese og type 2-diabetes 4, 5, 6.

Det mest kjente fysiologiske autofagi indus er sult. Den har imidlertid to store begrensninger. For det første tar sult lang tid til effektivt å indusere autophagy i dyr, for eksempel 48 timer med mat begrensning i musi de fleste organer. For det andre, sult knapt induserer hjerne autophagy, på grunn av en forholdsvis stabil næringstilførsel i hjernen. Faktisk er det også vanskelig å oppdage autofagi induksjon av små-molekyl induktorer, som mange medikamenter ikke kan passere blod-hjerne barrieren. Således, for bedre å analysere funksjonen av autophagy aktivering i patogenesen sykdom, vi nylig oppdaget at oppgaven er en mer potent fysiologisk metode for å indusere autophagy i løpet av kort tid 7, 8, 9. Sammenlignet med sult, er autofagi effektivt indusert av tredemølle å kjøre så fort som 30 min. Dermed er trening en praktisk og potent fysiologisk tilnærming for å studere mekanismen av autofagi i formidling helsemessige fordeler og forebygge sykdommer.

Det er flere protein markører for påvisning av autophagy aktivitet, blant annet LC3 og P62. LC3 (microtubule-assosiert protein 1A / 1B-light cHain 3) er et cytosolisk protein (LC3-I skjemaet), som er konjugert til PE (fosfatidyletanolamin) ved autophagy induksjon. PE-lipidert LC3 (LC3-II form) er rekruttert til autophagosomal membraner og kan brukes til å visualisere autophagosomes når merket med GFP. Dens trans fra cytosol til punktat strukturer av autophagosomes henhold mikroskopi er en indikasjon på autophagy induksjon. p62 er en last reseptor for Autophagy substrater (for eksempel ubiquitinering proteiner), og er inkorporert i autophagosomes også. Siden proteinet nedbrytes i lysosomer sammen med autophagosomes, kan nivåene brukes til å måle den autophagy fluksen. Her viser vi hvordan du bruker disse markørene for å kvantifisere autofagi i forskjellige muse vev forårsaket av aerob trening, herunder tvungen trening (tredemølle) og frivillig trening (løping hjul). De samme prosedyrer kan også bli brukt til in vivo måling av autophagy etter behandling av andre inducere.

Protocol

Alle prosedyrer som involverer dyr ble utført i henhold til retningslinjer godkjent av Northwestern University Institutional Animal Care og bruk Committee (IACUC). 1. musemodeller Bruk 8-12 uker gamle mus i trening. For å oppdage utøves-induced autofagi in vivo, bruke GFP-LC3 transgene mus (C57BL / 6 bakgrunn) for bildediagnostikk og C57BL / 6 mus for biokjemiske analyser. 2. Anstrengelsesutløst Autophagy Setup tredemølle – tvungen tr…

Representative Results

Denne protokollen beskriver to ulike metoder for å indusere autofagi i mus vev ved aerob trening: totalt 90 min av tvungen trening på en flerfelts tredemølle satte etter to dager med akklimatisering; eller to uker med frivillig trening på en løpehjul brukt av enkelt-huset mus. I hver øvelse protokollen, kan vi måle autofagi flux av fluorescens mikroskopi og western blot analyse i ulike organer. Vi brukte en transgen mus…

Discussion

Autophagy er en katabolsk prosess som gir energi og reduserer cytotoksisitet av lysosomal degradering av cytoplasma komponenter eller skadede organeller. Studerer autofagi er viktig å forstå at reguleringen av cellulær homeostase og mekanismene for stressrespons. Nye modeller og metoder dukker opp i forskningsfeltet 15, for å studere hvordan nedsatt autofagi bidrar til en rekke patologiske prosesser 16, 17.

<p class="jove_content"…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank the Northwestern University Mouse Histology and Phenotyping Laboratoryfor technical support and assistance, and Noboru Mizushima (University of Tokyo) for providing GFP-LC3 transgenic mice. A. R. and C. H. were supported by the startup funds from Northwestern University and the grant from National Institutes of Health (DK094980).

Materials

Treadmill Columbus Instruments 150-RM Exer 3/6
Mouse running wheel Super Pet 100079365 diameter 11.4 cm
Odometer Bell DASHBOARD 100
Syringe pump KD Scientific KDS100
Fluorescence microscope Nikon Model: inverted microscope ECLIPSE
Cryostat Leica CM 1850UV
Homogenizer IKA 003737001 / Model: T10 Basic S1
Chloroquine CAYMAN CHEMICAL COMPANY 14194
Parafolmaldehye SIGMA-ALDRICH P6148 Personal protection equipment required. This product may release formaldehyde gas, a chemical known to cause cancer
Mounting media Vector Laboratories H-1200
p62 antibody BD Biosciences 610833
LC3 antibody Novus Biologicals NB100-2220
2X Laemmli Sample Buffer Bio-Rad Laboratories 161-0737
ImageJ NIH

Riferimenti

  1. Mizushima, N., Yamamoto, A., Matsui, M., Yoshimori, T., Ohsumi, Y. In vivo analysis of autophagy in response to nutrient starvation using transgenic mice expressing a fluorescent autophagosome marker. Mol Biol Cell. 15, 1101-1111 (2004).
  2. Tracy, K., et al. BNIP3 is an RB/E2F target gene required for hypoxia-induced autophagy. Molecular and cellular biology. 27, 6229-6242 (2007).
  3. Mizushima, N., Komatsu, M. Autophagy: renovation of cells and tissues. Cell. 147, 728-741 (2011).
  4. Nikoletopoulou, V., Papandreou, M. E., Tavernarakis, N. Autophagy in the physiology and pathology of the central nervous system. Cell Death Differ. 22, 398-407 (2015).
  5. Rocchi, A., He, C. Emerging roles of autophagy in metabolism and metabolic disorders. Frontiers in biology. 10, 154-164 (2015).
  6. Mathew, R., Karantza-Wadsworth, V., White, E. Role of autophagy in cancer. Nature reviews. Cancer. 7, 961-967 (2007).
  7. He, C., et al. Exercise-induced BCL2-regulated autophagy is required for muscle glucose homeostasis. Nature. 481, 511-515 (2012).
  8. He, C., Sumpter, R. J., Levine, B. Exercise induces autophagy in peripheral tissues and in the brain. Autophagy. 8, 4 (2012).
  9. Kuramoto, K., et al. Autophagy activation by novel inducers prevents BECN2-mediated drug tolerance to cannabinoids. Autophagy. 12, 1460-1471 (2016).
  10. Dougherty, J. P., Springer, D. A., Gershengorn, M. C. The Treadmill Fatigue Test: A Simple, High-throughput Assay of Fatigue-like Behavior for the Mouse. JoVE. , (2016).
  11. Navone, S. E., et al. Isolation and expansion of human and mouse brain microvascular endothelial cells. Nature protocols. 8, 1680-1693 (2013).
  12. Liu, L., Cheung, T. H., Charville, G. W., Rando, T. A. Isolation of skeletal muscle stem cells by fluorescence-activated cell sorting. Nature protocols. 10, 1612-1624 (2015).
  13. Eslami, A., Lujan, J. Western blotting: sample preparation to detection. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2010).
  14. Bjørkøy, G., et al. Chapter 12 Monitoring Autophagic Degradation of p62/SQSTM1. Methods Enzymol. 452, 181-197 (2009).
  15. Klionsky, D. J., et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (3rd edition). Autophagy. 12, 1-222 (2016).
  16. Levine, B., Kroemer, G. Autophagy in the Pathogenesis of Disease. Cell. 132, 27-42 (2008).
  17. Mizushima, N., Levine, B., Cuervo, A. M., Klionsky, D. J. Autophagy fights disease through cellular self-digestion. Nature. 451, 1069-1075 (2008).
  18. Fang, Y., et al. Duration of rapamycin treatment has differential effects on metabolism in mice. Cell Metab. 17, 456-462 (2013).
  19. Thomson, A. W., Turnquist, H. R., Raimondi, G. Immunoregulatory functions of mTOR inhibition. Nature reviews. Immunology. 9, 324-337 (2009).
  20. Miller, R. A., et al. Rapamycin-mediated lifespan increase in mice is dose and sex dependent and metabolically distinct from dietary restriction. Aging Cell. 13, 10 (2014).
  21. Grumati, P., et al. Physical exercise stimulates autophagy in normal skeletal muscles but is detrimental for collagen VI-deficient muscles. Autophagy. 7, 1415-1423 (2011).
  22. Lira, V. A., et al. Autophagy is required for exercise training-induced skeletal muscle adaptation and improvement of physical performance. FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. 27, 4184-4193 (2013).
  23. Lo Verso, F., Carnio, S., Vainshtein, A., Sandri, M. Autophagy is not required to sustain exercise and PRKAA1/AMPK activity but is important to prevent mitochondrial damage during physical activity. Autophagy. 10, 1883-1894 (2014).
  24. Kregel, K. C., et al. Resource book for the design of animal exercise protocols. American Physiological Society. , 152 (2006).
  25. Lightfoot, J. T., Turner, M. J., Debated, K. S., Kleeberg, S. R. Interstrain variation in murine aerobic capacity. Med Sci Sports Exerc. 33, 5 (2001).
  26. Rezende, E. L., Chappell, M. A., Gomes, F. R., Malisch, J. L., Garland, T. Maximal metabolic rates during voluntary exercise, forced exercise, and cold exposure in house mice selectively bred for high wheel-running. The Journal of experimental biology. 208, 2447-2458 (2005).
  27. Kayatekin, B. M., Gonenc, S., Acikgoz, O., Uysal, N., Dayi, A. Effects of sprint exercise on oxidative stress in skeletal muscle and liver. European journal of applied physiology. 87, 141-144 (2002).
  28. Kawanaka, K., Tabata, I., Tanaka, A., Higuchi, M. Effects of high-intensity intermittent swimming on glucose transport in rat epitrochlearis muscle. J Appl Physiol. 84, 4 (1998).
  29. Fernando, P., Bonen, A., Hoffman-Goetz, L. Predicting submaximal oxygen consumption during treadmill running in mice. Can J Physiol Pharmacol. 71, 4 (1993).
check_url/it/55099?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Rocchi, A., He, C. Activating Autophagy by Aerobic Exercise in Mice. J. Vis. Exp. (120), e55099, doi:10.3791/55099 (2017).

View Video