تحديد الجلوكوز الأيض حركية عن طريق<sup> 18</sup> F-FDG مايكرو-PET / CT
Summary
This study describes a protocol that uses 18F-FDG and positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) imaging, together with kinetic modelling, to quantify the in vivo, real-time uptake of 18F-FDG into tissues.
Abstract
This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). Impaired uptake and metabolism of glucose in multiple organ systems due to insulin resistance is a hallmark of type 2 diabetes. The ability of this technique to extract an image-derived input function from the vena cava using an iterative deconvolution method eliminates the requirement of the collection of arterial blood samples. Fitting of tissue and vena cava time activity curves to a two-tissue, three compartment model permits the estimation of kinetic micro-parameters related to the 18F-FDG uptake from the plasma to the intracellular space, the rate of transport from intracellular space to plasma and the rate of 18F-FDG phosphorylation. This methodology allows for multiple measures of glucose uptake and metabolism kinetics in the context of longitudinal studies and also provides insights into the efficacy of therapeutic interventions.
Introduction
وكان الغرض من هذه الدراسة هو تطوير التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي (PET / CT) منهجية تقوم على قياس في الجسم الحي، في الوقت الحقيقي امتصاص الجلوكوز من مجرى الدم إلى أنسجة معينة في الفئران. وقد تحقق ذلك باستخدام fluorodeoxyglucose المسمى F-18 (FDG) لقياس امتصاص الجلوكوز والنمذجة الحركي لتقدير معدلات 18 F-FDG امتصاص من البلازما إلى الفضاء داخل الخلايا، فإن معدل النقل من الفضاء بين الخلايا لالبلازما ومعدل 18 F-FDG الفسفرة.
في القوارض، وقد استخدمت 18 F-FDG في تقييم ما قبل السريرية العديد من علاجات السرطان 1، ودراسات تطور الورم (2) والورم الأيض 3 وكذلك التصوير من مخازن الدهون البني 4، 5 neuroinflamation والدماغ والتمثيل الغذائي 6 </سوب>.
الأساليب التقليدية المستخدمة لفحص امتصاص الأنسجة محددة من الجلوكوز في الفئران (والجرذان) تنطوي عادة على معالجة مع رديولبلد 2-deoxyglucose مع أي 3 H أو 14 C تليها القتل الرحيم، وجمع الأنسجة وقياس النشاط الإشعاعي في كل الأنسجة 7. استخدام PET / CT يسمح للتقرير موسع من امتصاص الجلوكوز واستقلاب في الأجهزة ومناطق متعددة في وقت واحد في الحيوانات الحية. بالإضافة إلى ذلك، كما قتل رحيم ليس شرطا، وهذا الأسلوب هو مناسبة للاستخدام في الدراسات الطولية.
يتميز داء السكري من النوع 2 السكري (T2DM) من خلال عملية التمثيل الغذائي تعطلت الجلوكوز وارتفاع السكر في الدم الثانوي إلى انخفاض استجابة الأنسجة للأنسولين (مقاومة الأنسولين) وعدم قدرة -cells البنكرياس لإنتاج كميات كافية من الأنسولين 8. التحليل الحركي من امتصاص الجلوكوز واستقلاب يمكن أن توفر نظرة ثاقبةآلية عمل وفعالية التدخلات العلاجية وكذلك تسمح لرصد متقدمة من تطور المرض.
Protocol
Representative Results
Discussion
بروتوكول صفها هنا يمثل، منهجية قوية غير الغازية لتحديد حركية امتصاص الجلوكوز من مجرى الدم إلى الأنسجة والتمثيل الغذائي لاحقا في الفئران.
الماوس ديسيبل / ديسيبل هو عبارة عن نموذج حيواني راسخة من نوع 2 من داء السكري 14 ا…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
This work was supported by a National Imaging Facility Subsidised Access Grant to BJC, a National Health and Medical Research Council of Australia program grant (482800) to KAR and PJB. The authors would like to thank Andrew Arthur, Hasar Hazme and Marie-Claude Gregoire for support in developing this method.
Materials
| PET/CT Scanner | Siemens | Inveon | |
| 18F-FDG | PETNET Solutions | ||
| Isoflurane | Pharmachem | ||
| 30 guage needle | BD | 305106 | |
| PMOD modelling software | PMOD Technologies | ||
| BKS.Cg-Dock7m +/+ Leprdb/J mice | Jackson Laboratory | 000642 | |
| Human insulin | Sigma-Aldrich |
References
- Jensen, M. M., Kjaer, A. Monitoring of anti-cancer treatment with (18)F-FDG and (18)F-FLT PET: a comprehensive review of pre-clinical studies. Am J Nucl Med Mol Imaging. 5, 431-456 (2015).
- Duncan, K., et al. (18)F-FDG-PET/CT imaging in an IL-6- and MYC-driven mouse model of human multiple myeloma affords objective evaluation of plasma cell tumor progression and therapeutic response to the proteasome inhibitor ixazomib. Blood Cancer J. 3, e165 (2013).
- Wang, Y., Kung, A. L. 18F-FDG-PET/CT imaging of drug-induced metabolic changes in genetically engineered mouse lung cancer models. Cold Spring Harb Protoc. 2015, 176-179 (2015).
- Wang, X., Minze, L. J., Shi, Z. Z. Functional imaging of brown fat in mice with 18F-FDG micro-PET/CT. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
- Radu, C. G., Shu, C. J., Shelly, S. M., Phelps, M. E., Witte, O. N. Positron emission tomography with computed tomography imaging of neuroinflammation in experimental autoimmune encephalomyelitis. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 1937-1942 (2007).
- Toba, S., et al. Post-natal treatment by a blood-brain-barrier permeable calpain inhibitor, SNJ1945 rescued defective function in lissencephaly. Sci Rep. 3, 1224 (2013).
- Halseth, A. E., Bracy, D. P., Wasserman, D. H. Overexpression of hexokinase II increases insulinand exercise-stimulated muscle glucose uptake in vivo. Am J Physiol. 276, E70-E77 (1999).
- Defronzo, R. A. Banting Lecture. From the triumvirate to the ominous octet: a new paradigm for the treatment of type 2 diabetes mellitus. Diabetes. 58, 773-795 (2009).
- Tohka, J., Reilhac, A. Deconvolution-based partial volume correction in Raclopride-PET and Monte Carlo comparison to MR-based method. NeuroImage. 39, 1570-1584 (2008).
- Wu, H. M., et al. et al. In vivo quantitation of glucose metabolism in mice using small-animal PET and a microfluidic device. J Nucl Med. 48, 837-845 (2007).
- Iida, H., et al. Error analysis of a quantitative cerebral blood flow measurement using H2(15)O autoradiography and positron emission tomography, with respect to the dispersion of the input function. J Cereb Blood Flow Metab. 6, 536-545 (1986).
- Cochran, B. J., et al. In vivo PET imaging with [18F]FDG to explain improved glucose uptake in an apolipoprotein A-I treated mouse model of diabetes. Diabetologia. 59, 1977-1984 (2016).
- Kobayashi, K., et al. The db/db mouse, a model for diabetic dyslipidemia: molecular characterization and effects of Western diet feeding. Metabolism. 49, 22-31 (2000).
- Yue, P., et al. Magnetic resonance imaging of progressive cardiomyopathic changes in the db/db mouse. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292, H2106-H2118 (2007).
- Hagberg, C. E., et al. Targeting VEGF-B as a novel treatment for insulin resistance and type 2 diabetes. Nature. 490, 426-430 (2012).
- Alf, M. F., et al. Quantification of brain glucose metabolism by 18F-FDG PET with real-time arterial and image-derived input function in mice. J Nucl Med. 54, 132-138 (2013).
- Tantawy, M. N., Peterson, T. E. Simplified [18F]FDG image-derived input function using the left ventricle, liver, and one venous blood sample. Molecular imaging. 9, 76-86 (2010).
- Thorn, S. L., et al. Repeatable noninvasive measurement of mouse myocardial glucose uptake with 18F-FDG: evaluation of tracer kinetics in a type 1 diabetes model. J Nucl Med. 54, 1637-1644 (2013).
- Wagner, R., Zimmer, G., Lacko, L. An interspecies approach to the investigation of the red cell membrane glucose transporter. Biochim Biophys Acta. 771, 99-102 (1984).
- Flores, J. E., McFarland, L. M., Vanderbilt, A., Ogasawara, A. K., Williams, S. P. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Mol Imaging Biol. 10, 192-200 (2008).
