Summary

ゼブラフィッシュにおける高血糖症の急性および慢性モデル:高血糖が神経新生および放射性標識分子の生体内分布に及ぼす影響を評価する方法

Published: June 26, 2017
doi:

Summary

この研究では、ゼブラフィッシュで急性および慢性の高血糖モデルを確立する方法について説明します。この目的は、構成的および傷害誘発性の神経発生のような生理学的過程に対する高血糖の影響を調べることである。この研究では、PET / CTを用いて放射標識分子(ここでは、[ 18 F] -FDG)を追跡するためのゼブラフィッシュの使用法が強調されています。

Abstract

高血糖は、心血管および大脳の機能不全をもたらす主要な健康問題である。例えば、脳卒中後の神経学的問題の増加に関連し、神経原性プロセスを損なうことが示されている。興味深いことに、成体ゼブラフィッシュは、高血糖症/糖尿病を模倣し、構成的および再生的な新形成を調べるために、関連性のある有用なモデルとして最近出現した。この研究は、恒常性および脳修復条件下での脳細胞増殖に対する高血糖の影響を調べるために、高血糖のゼブラフィッシュモデルを開発する方法を提供する。急性高血糖は、成人ゼブラフィッシュにD-グルコース(2.5g / kg体重)を腹腔内注射することにより確立される。慢性の高血糖は、成体ゼブラフィッシュを水を含むD-グルコース(111mM)に14日間浸漬することによって誘導される。これらの異なるアプローチについて、血糖値の測定値が記載されている。高血糖が構成的に及ぼす影響を調べる方法終脳の機械的傷害を記述し、脳を解剖し、パラフィン包埋し、ミクロトームで切片化し、免疫組織化学的手順を実施することによって再生神経発生を実証する。最後に、PET / CTを用いた放射標識分子(ここでは[ 18 F] -FDG)の生体内分布を研究するための関連モデルとしてゼブラフィッシュを使用する方法も記載されている。

Introduction

高血糖は、過剰な血糖値として定義される。急性ストレスの状況を反映することができるが、高血糖はまたしばしば糖尿病の診断、インスリン分泌および/または耐性の慢性障害につながる状態である。 2016年に糖尿病で暮らす成人の数は世界で4億2200万人に達し、毎年150万人がこの病気で死亡し、大きな健康問題となっています1 。実際、制御されていない糖尿病は、心臓血管系、腎臓、および末梢および中枢神経系に影響を及ぼすいくつかの生理学的障害を引き起こす。

興味深いことに、急性および慢性の高血糖は認知を変え、認知症およびうつ病の両方に寄与する可能性があります2,3,4,5,6。さらに、患者の入院高血圧症は、虚血性脳卒中後の機能的、神経学的、および生存の転帰に関連している7,8,9,10,11。高血糖症/糖尿病は、神経幹細胞の活動やニューロンの分化、移動、生存に影響を及ぼすことにより、成人の神経新生、新しいニューロンの生成につながる過程に影響を与えることも示された2,12。

哺乳動物とは対照的に、ゼブラフィッシュのようなテンポラリーフィッシュは、脳全体に強い神経性活動を示し、成人期の脳修復能力が13,14,15,16で顕著である。特に、このような能力は、neuの持続性のために可能であるラジアルグリアおよび神経芽細胞を含む幹/前駆細胞17,18,19。さらに、ゼブラフィッシュは、最近、肥満および高血糖症/糖尿病を含む代謝障害を研究するためのモデルとして出現した20,21,22。

ゼブラフィッシュは、高血糖および神経発生のよく知られたモデルであるが、脳恒常性および認知機能に対する高血糖の影響を研究している研究はほとんどない12,23。構成的および傷害誘発性の脳細胞増殖に対する高血糖の影響を決定するために、D-グルコースの腹腔内注射によって急性の高血糖モデルを作製した。さらに、魚を水に浸して慢性高血糖のモデルを再現したD-グルコース12 。ゼブラフィッシュは研究において多くの利点を示す。開発の最初の段階で安価で、持ちやすく、透明で、ゲノムの配列が決定されています。この研究の文脈において、それらはまた、いくつかのさらなる利点を示す:(1)それらは人間と同様の生理学的プロセスを共有し、それらを生物医学研究のための重要なツールにする。 (2)脳恒常性および神経新生に及ぼす高血糖の影響を迅速に調べることを可能にする。 (3)それらは代替モデルであり、研究に使用される哺乳類の数の減少を可能にする。最後に、ゼブラフィッシュは、PET / CTを用いた放射性標識分子および潜在的な治療薬の生体内分布を試験するためのモデルとして使用することができる。

次の手順の全体的な目標は、ゼブラフィッシュで急性および慢性の高血糖のモデルを設定する方法を視覚的に文書化し、zeb高血糖状態での脳のリモデリングを評価し、PET / CTを用いて放射能標識分子(ここでは[ 18 F] -FDG)をモニターすることができる。

Protocol

成体野生型ゼブラフィッシュ( Danio rerio )を標準光周期(14/10時間明/暗)および温度(28℃)条件下で維持した。すべての実験は、フランスとヨーロッパの研究における動物の使用に関するガイドライン(86/609 / EECおよび2010/63 / EU)に従って行われ、地域倫理委員会によって動物実験の承認を受けた。 1.ゼブラフィッシュにおける急性高血糖モデルの確立 …

Representative Results

この記事で説明した手順を使用して、成人ゼブラフィッシュでD-グルコース(2.5g / kg体重)の腹腔内注射を行い、注射1.5時間後に血糖値の有意な上昇をもたらした( 図1A )。 24時間後の注射では、血糖値はD-グルコースとPBS注射魚の間で類似していた12 。慢性的な治療のために、ゼブラフィッシュをD-グルコース水(111mM)に浸?…

Discussion

この研究は、ゼブラフィッシュにおける急性および慢性の高血糖モデルを確立するための様々な方法を記載している。これらの手順の主な利点は、(1)研究に使用する哺乳類の数を減らすこと、(2)設置が簡単で迅速に実施できること、(3)経済的であることである。したがって、このようなモデルは、アテローム血栓症、心臓血管機能不全、網膜症、血液脳関門漏出、および構成的およ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

私たちは、ビデオを編集するためのLa RUunion大学のDirection des Usages duNumérique(DUN)、ボイスオーバーのためのLynda-Rose Mottagan、校正のためのMary Osborne-Pellegrinに感謝します(特に、Jean-FrançoisFévrier、Eric Esnault、Sylvain Ducasse)ボイスオーバー、およびCYROIプラットフォームをサポートしています。この作品は、La RUunion大学(BonusQualitéRecherche、Dispositifs incitatifs)、ConseilRégionalde LaRéunion、欧州連合(CPER / FEDER)、およびPhilancia Associationからの助成金によって支えられました。 ACDは、ラ・レユニオン大学(コントラクト・ドクター)の国際学術院からのフェローシップ・グラントの受領者です。

Materials

1mL Luer-Lok Syringe BD, USA 309628
4',6'-diamidino-2-phenylindole (DAPI) Sigma-Aldrich, Germany D8417
7 mL bijou container plain lab Dutscher, France 080171
D-glucose Sigma-Aldrich, Germany 67021
Digital camera Life Sciences, Japan Hamamatsu ORCA-ER
Disposable base molds  Simport, Canada M475-2
Donkey anti-rabbit Alexa fluor 488 Life Technologies, USA A21206
Embedding center Thermo Scientific, USA Shandon Histocentre 3
Fluorescence microscope Nikon, Japan Eclipse 80i
Fluorodeoxyglucose (18F-FDG) Cyclotron, France
Glucometer test strip LifeScan, France One-Touch 143 Ultra
Goat anti-mouse Alexa fluor 594 Life Technologies, USA A11005
In-Vivo Imaging System TriFoil Imaging, Canada Triumph Trimodality 
Microtome Thermo Scientific, USA Microm HM 355 S
Monoclonal mouse anti-PCNA DAKO, USA clone PC10
Paraformaldehyde (PFA) Sigma-Aldrich, Germany P6148-500G
Polyclonal rabbit anti-GFAP DAKO, USA Z033429
Slide drying bench Electrothermal, USA MH6616
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium citrate trisodium salt dehydrate  Prolabo, France 27833.294
Sterile needle BD Microlance 3 30 G 1/2 ; 0.3 mm x 13 mm
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20
Student surgical scissors Fine Science Tools 91400-14
Superfros Plus Gold Slides Thermo Scientific, USA FT4981GLPLUS
Surgical microscope Leica, France M320-F12
Tissue embedding cassettes Simport, Canada M490-10
Tissue embedding medium LeicaBiosystems, USA 39602004
Toluene Sigma-Aldrich, Germany 244511
Tricaine MS-222 Sigma-Aldrich, Germany A5040
Triton X100 Sigma-Aldrich, Germany X100-500 mL
Vectashield medium  Vector Laboratories, USA H-1000
Xylene Sigma-Aldrich, Germany 534056
Fish Strain AB
Saline phosphate buffer (10X PBS) pH 7.4 (for 1 liter) For preparing 10X PBS, add the following  salts and complete to 1 liter with distilled water
Potassium chloride (MM : 74.55 g/mol): 2.00 g Sigma-Aldrich, Germany 746436
Potassium phosphate monobasic (MM: 136,09 g/mol): 2.40g Sigma-Aldrich, Germany 795488
Sodium chloride (MM : 58.44 g/mol): 80.00 g  Sigma-Aldrich, Germany S9888
Sodium phosphate dibasic (MM: 141,96 g): 14,40 g Sigma-Aldrich, Germany 795410

Riferimenti

  1. Ho, N., Sommers, M. S., Lucki, I. Effects of diabetes on hippocampal neurogenesis: links to cognition and depression. Neurosci Biobehav Rev. 37 (8), 1346-1362 (2013).
  2. Cukierman, T., Gerstein, H. C., Williamson, J. D. Cognitive decline and dementia in diabetes–systematic overview of prospective observational studies. Diabetologia. 48 (12), 2460-2469 (2005).
  3. Gaudieri, P. A., Chen, R., Greer, T. F., Holmes, C. S. Cognitive function in children with type 1 diabetes: a meta-analysis. Diabetes Care. 31 (9), 1892-1897 (2008).
  4. Brismar, T., et al. Predictors of cognitive impairment in type 1 diabetes. Psychoneuroendocrinology. 32 (8-10), 1041-1051 (2007).
  5. Ojo, O., Brooke, J. Evaluating the Association between Diabetes, Cognitive Decline and Dementia. Int J Environ Res Public Health. 12 (7), 8281-8294 (2015).
  6. Capes, S. E., Hunt, D., Malmberg, K., Pathak, P., Gerstein, H. C. Stress hyperglycemia and prognosis of stroke in nondiabetic and diabetic patients: a systematic overview. Stroke. 32 (10), 2426-2432 (2001).
  7. Stead, L. G., et al. Hyperglycemia as an independent predictor of worse outcome in non-diabetic patients presenting with acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 10 (2), 181-186 (2009).
  8. Kagansky, N., Levy, S., Knobler, H. The role of hyperglycemia in acute stroke. Arch Neurol. 58 (8), 1209-1212 (2001).
  9. Gilmore, R. M., Stead, L. G. The role of hyperglycemia in acute ischemic stroke. Neurocrit Care. 5 (2), 153-158 (2006).
  10. Desilles, J. P., et al. Diabetes mellitus, admission glucose, and outcomes after stroke thrombolysis: a registry and systematic review. Stroke. 44 (7), 1915-1923 (2013).
  11. Dorsemans, A. C., et al. Impaired constitutive and regenerative neurogenesis in adult hyperglycemic zebrafish. J Comp Neurol. , (2016).
  12. Schmidt, R., Strähle, U., Scholpp, S. Neurogenesis in zebrafish – from embryo to adult. Neural Dev. 8, 3 (2013).
  13. Kizil, C., Kaslin, J., Kroehne, V., Brand, M. Adult neurogenesis and brain regeneration in zebrafish. Dev Neurobiol. 72 (3), 429-461 (2012).
  14. Grandel, H., Brand, M. Comparative aspects of adult neural stem cell activity in vertebrates. Dev Genes Evol. 223 (1-2), 131-147 (2013).
  15. Lindsey, B. W., Tropepe, V. A comparative framework for understanding the biological principles of adult neurogenesis. Prog Neurobiol. 80 (6), 281-307 (2006).
  16. März, M., et al. Heterogeneity in progenitor cell subtypes in the ventricular zone of the zebrafish adult telencephalon. Glia. 58 (7), 870-888 (2010).
  17. Chapouton, P., Jagasia, R., Bally-Cuif, L. Adult neurogenesis in non-mammalian vertebrates. Bioessays. 29 (8), 745-757 (2007).
  18. Lindsey, B. W., Darabie, A., Tropepe, V. The cellular composition of neurogenic periventricular zones in the adult zebrafish forebrain. J Comp Neurol. 520 (10), 2275-2316 (2012).
  19. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. Zebrafish. , 2611-2619 (2012).
  20. Oka, T., et al. Diet-induced obesity in zebrafish shares common pathophysiological pathways with mammalian obesity. BMC Physiol. 10, 21 (2010).
  21. Capiotti, K. M., et al. Persistent impaired glucose metabolism in a zebrafish hyperglycemia model. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. 171, 58-65 (2014).
  22. Capiotti, K. M., et al. Hyperglycemia induces memory impairment linked to increased acetylcholinesterase activity in zebrafish (Danio rerio). Behav Brain Res. 274, 319-325 (2014).
  23. Schmidt, R., Beil, T., Strähle, U., Rastegar, S. Stab wound injury of the zebrafish adult telencephalon: a method to investigate vertebrate brain neurogenesis and regeneration. J Vis Exp. (90), e51753 (2014).
  24. Diotel, N., et al. Effects of estradiol in adult neurogenesis and brain repair in zebrafish. Horm Behav. 63 (2), 193-207 (2013).
  25. Rodriguez Viales, R., et al. The helix-loop-helix protein id1 controls stem cell proliferation during regenerative neurogenesis in the adult zebrafish telencephalon. Stem Cells. 33 (3), 892-903 (2015).
  26. Kaslin, J., Ganz, J., Brand, M. Proliferation, neurogenesis and regeneration in the non-mammalian vertebrate brain. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 363 (1489), 101-122 (2008).
  27. Kroehne, V., Freudenreich, D., Hans, S., Kaslin, J., Brand, M. Regeneration of the adult zebrafish brain from neurogenic radial glia-type progenitors. Development. 138 (22), 4831-4841 (2011).
  28. Alunni, A., Bally-Cuif, L. A comparative view of regenerative neurogenesis in vertebrates. Development. 143 (5), 741-753 (2016).
  29. März, M., Schmidt, R., Rastegar, S., Strähle, U. Regenerative response following stab injury in the adult zebrafish telencephalon. Dev Dyn. 240 (9), 2221-2231 (2011).
  30. Wullimann, M., Rupp, B., Reichert, H. . Neuroanatomy of the zebrafish brain: A topological atlas. , 1-144 (1996).
  31. Pellegrini, E., et al. Identification of aromatase-positive radial glial cells as progenitor cells in the ventricular layer of the forebrain in zebrafish. J Comp Neurol. 501 (1), 150-167 (2007).
  32. Zupanc, G. K., Hinsch, K., Gage, F. H. Proliferation, migration, neuronal differentiation, and long-term survival of new cells in the adult zebrafish brain. J Comp Neurol. 488 (3), 290-319 (2005).
  33. Sarras, M. P., Intine, R. V. Use of Zebrafish as a Disease Model Provides a Unique Window For Understanding the Molecular Basis of Diabetic Metabolic Memory. iConcept Press. , 2611-2619 (2013).
  34. Connaughton, V. P., Baker, C., Fonde, L., Gerardi, E., Slack, C. Alternate Immersion in an External Glucose Solution Differentially Affects Blood Sugar Values in Older Versus Younger Zebrafish Adults. Zebrafish. , (2016).
  35. Prasad, S., Sajja, R. K., Naik, P., Cucullo, L. Diabetes Mellitus and Blood-Brain Barrier Dysfunction: An Overview. J Pharmacovigil. 2 (2), 125 (2014).
check_url/it/55203?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Dorsemans, A., Lefebvre d’Hellencourt, C., Ait-Arsa, I., Jestin, E., Meilhac, O., Diotel, N. Acute and Chronic Models of Hyperglycemia in Zebrafish: A Method to Assess the Impact of Hyperglycemia on Neurogenesis and the Biodistribution of Radiolabeled Molecules. J. Vis. Exp. (124), e55203, doi:10.3791/55203 (2017).

View Video